Reducing $[Mg^{2+}]_o$ to 0.1 mM can evoke repetitive $[Ca^{2+}]_i$ spikes and seizure activity, which induces neuronal cell death in a process called excitotoxicity. We examined the issue of whether cultured rat hippocampal neurons preconditioned by a brief exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ are rendered resistant to excitotoxicity induced by a subsequent prolonged exposure and whether $Ca^{2+}$ spikes are involved in this process. Preconditioning by an exposure to 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$ for 5 min inhibited significantly subsequent 24 h exposure-induced cell death 24 h later (tolerance). Such tolerance was prevented by both the NMDA receptor antagonist D-AP5 and the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine, which blocked 0.1 mM $[Mg^{2+}]_o$-induced $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The AMPA receptor antagonist NBQX significantly inhibited both the tolerance and the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. The intracellular $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM significantly prevented the tolerance. The nonspecific PKC inhibitor staurosporin inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. While $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of $PKC{\alpha}$ had no effect on the tolerance, both the $PKC{\varepsilon}$ translocation inhibitor and the $PKC{\zeta}$ pseudosubstrate inhibitor significantly inhibited the tolerance without affecting the $[Ca^{2+}]_i$ spikes. Furthermore, JAK-2 inhibitor AG490, MAPK kinase inhibitor PD98059, and CaMKII inhibitor KN-62 inhibited the tolerance, but PI-3 kinase inhibitor LY294,002 did not. The protein synthesis inhibitor cycloheximide significantly inhibited the tolerance. Collectively, these results suggest that low $[Mg^{2+}]_o$ preconditioning induced excitotoxic tolerance was directly or indirectly mediated through the $[Ca^{2+}]_i$ spike-induced activation of $PKC{\varepsilon}$ and $PKC{\xi}$, JAK-2, MAPK kinase, CaMKII and the de novo synthesis of proteins.
알루미나와 하소된 귤껍질의 소결반응에 의해 A $I_{2}$$O_{3}$-CaO내화물이 제조되었다. 치밀화과정에서의 CaO의 영향과 A $I_{2}$$O_{3}$-CaO 소결체의 특성을 고찰하였다. 소결체의 미세구조와 EDS 결과로 A $I_{2}$$O_{3}$-CaO화합물을 확인하였다. 145$0^{\circ}C$에서 열처리한 소결체는 2.87/㎤의 부피비중과 12.03%의 겉보기 기공율을 가지며 압축강도는 312kg/$\textrm{cm}^2$이였다. 140$0^{\circ}C$에서 서결체의 열팽창 계수는 6.55Kx10$_{-6}$$K_{-1}$이였다.
The hyperpolarization-activated current ($I_h$) is an inward cation current activated by hyperpolarization of the membrane potential and plays a role as an important modulator of action potential firing frequency in many excitable cells. In the present study we investigated the effects of extracellular divalent cations on $I_h$ in dorsal root ganglion (DRG) neurons using whole-cell voltage clamp technique. $I_h$ was slightly increased in $Ca^{2+}$-free bath solution. BAPTA-AM did not change the amplitudes of $I_h$. Amplitudes of $I_h$ were decreased by $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ and $Ba^{2+}$ dose-dependently and voltage-independently. Inhibition magnitudes of $I_h$ by external divalent cations were partly reversed by the concomitant increase of extracellular $K^+$ concentration. Reversal potential of $I_h$ was significantly shifted by $Ba^{2+}$ and $V_{1/2}$ was significantly affected by the changes of extracellular $Ca^{2+}$ concentrations. These results suggest that $I_h$ is inhibited by extracellular divalent cations ($Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$ and $Ba^{2+}$) by interfering ion influxes in cultured rat DRG neurons.
These studies were designed to examine the differential effect of nitric oxide (NO) and cGMP on glutamate neurotransmission. In primary cultures of rat cerebellar granule cells, the glutamate receptor agonist N-methyl-D-aspartate (NMDA) stimulates the elevation of intracellular calcium concentration ($[Ca^{2+}]_i$), the release of glutamate, the synthesis of NO and an increase of cGMP. Although NO has been shown to stimulate guanylyl cyclase, it is unclear yet whether NO alters the NMDA-induced glutamate release and ${[Ca^{2+}]}_i$ elevation. We showed that the NO synthase inhibitor, NG-monomethyl-L-arginine (NMMA), partially prevented the NMDA-induced release of glutamate and elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ and completely blocked the elevation of cGMP. These effects of NO on glutamate release and [Ca2+]i elevation were unlikely to be secondary to cGMP as the cGMP analogue, dibutyryl cGMP (dBcGMP), did not suppress the effects of NMDA. Rather, dBcGMP slightly augmented the NMDA-induced elevation of ${[Ca^{2+}]}_i$ with no change in the basal level of glutamate or ${[Ca^{2+}]}_i$. The extracellular NO scavenger hydroxocobalamine prevented the NMDA-induced release of glutamate providing indirect evidence that the effect of NO may act on the NMDA receptor. These results suggest that low concentration of NO has a role in maintaining the NMDA receptor activation in a cGMP-independent manner.
We investigated the effect of the oxygne partial pressure on the phase stability of B $i_{2}$S $r_{2}$Ca C $u_{2}$$O_{8+x}$ and B $i_{2}$S $r_{2}$C $a_{2}$C $u_{3}$$O_{10+x}$ at 82$0^{\circ}C$. As the oxygen pressure decreased, B $i_{2}$Sr/sb 2/CaC $u_{2}$$O_{8+x}$ melted at 2.2$\times$10$^{-3}$ atm $O_{2}$. In the case of the B $i_{1.7}$P $b_{0.4}$S $r_{2}$C $a_{2}$$O_{10+x}$, it started to decompose into theree phases of B $i_{2}$S $r_{2}$Cu $O_{6+y}$, $Ca_{2}$Cu $O_{3}$ and C $u_{4}$$O_{3}$ and C $u_{4}$$O_{3}$ at 8.0$\times$10$^{-3}$ atm $O_{2}$ and was completely decomposed at 4.3$\times$10$^{-3}$ atm $O_{2}$ B $i_{2}$S $r_{2}$C $a_{2}$C $u_{3}$$O_{10+x}$ phase was not formed by the solid state reaction from the mixutre of $i_{2}$S $r_{2}$CaCu.sub 2/ $O_{8+x}$, $Ca_{2}$Cu $O_{3}$ and CuO down to 2.2$\times$10.sub -3/ atm O.sub 2/ but formed by the solidifciation of the formed from the mixture of the intermediate compounds in the Bi-Sr-Ca-Cu-O system and the fromation temperature of Bi.sub 2/S $r_{2}$C $a_{2}$Cu.$_{3}$$O_{10+x}$ can be lowered by reducing oxygen partial pressure.e.e.ure.e.e.
Eupafolin, a constituent of the aerial parts of Phyla nodiflora, has neuroprotective property. Because reducing the synaptic release of glutamate is crucial to achieving pharmacotherapeutic effects of neuroprotectants, we investigated the effect of eupafolin on glutamate release in rat cerebrocortical synaptosomes and explored the possible mechanism. We discovered that eupafolin depressed 4-aminopyridine (4-AP)-induced glutamate release, and this phenomenon was prevented in the absence of extracellular calcium. Eupafolin inhibition of glutamate release from synaptic vesicles was confirmed through measurement of the release of the fluorescent dye FM 1-43. Eupafolin decreased 4-AP-induced [Ca2+]i elevation and had no effect on synaptosomal membrane potential. The inhibition of P/Q-type Ca2+ channels reduced the decrease in glutamate release that was caused by eupafolin, and docking data revealed that eupafolin interacted with P/Q-type Ca2+ channels. Additionally, the inhibition of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II (CaMKII) prevented the effect of eupafolin on evoked glutamate release. Eupafolin also reduced the 4-AP-induced activation of CaMK II and the subsequent phosphorylation of synapsin I, which is the main presynaptic target of CaMKII. Therefore, eupafolin suppresses P/Q-type Ca2+ channels and thereby inhibits CaMKII/synapsin I pathways and the release of glutamate from rat cerebrocortical synaptosomes.
Park, Su-Jung;Choi, Won-Woo;Kwon, Oh-Sang;Chung, Jin-Ho;Eun, Hee-Chul;Earm, Young-E;Kim, Sung-Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제12권4호
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pp.177-183
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2008
The layers of keratinocytes form an acid mantle on the surface of the skin. Herein, we investigated the effects of acidic pH on the membrane current and $[Ca^{2+}]_c$ of human primary keratinocytes from foreskins and human keratinocyte cell line (HaCaT). Acidic extracellular pH ($pH_e{\leq}5.5$) activated outwardly rectifying $Cl^-$ current ($I_{Cl,pH}$) with slow kinetics of voltage-dependent activation. $I_{Cl,pH}$ was potently inhibited by an anion channel blocker 4,4'-diisothiocyanostilbene-2,2'-disulphonic acid (DIDS, 73.5% inhibition at 1${\mu}$M). $I_{Cl,pH}$ became more sensitive to $pH_e$ by raising temperature from $24^{circ}C$ to $37^{circ}C$. HaCaT cells also expressed $Ca^{2+}$-activated $Cl^-$ current ($I_{Cl,Ca}$), and the amplitude of $I_{Cl,Ca}$ was increased by relatively weak acidic $pH_e$ (7.0 and 6.8). Interestingly, the acidic $pH_e$ (5.0) also induced a sharp increase in the intracellular [$Ca^{2+}$] (${\triangle}[Ca^{2+}]_{acid}$) of HaCaT cells. The ${\triangle}[Ca^{2+}]_{acid}$ was independent of extracellular $Ca^{2+}$, and was abolished by the pretreatment with PLC inhibitor, U73122. In primary human keratinocytes, 5 out of 28 tested cells showed ${\triangle}[Ca^{2+}]_{acid}$. In summary, we found $I_{Cl,pH}$ and ${\triangle}[Ca^{2+}]_{acid}$ in human keratinocytes, and these ionic signals might have implication in pathophysiological responses and differentiation of epidermal keratinocytes.
Using BHK cells with stable expression of cardiac $Na^+/Ca^{2+}$ exchanger(BHK-NCX1), reverse mode(i.e. $Ca^{2+}$ influx mode) of NCX1 current was recorded by whole-cell patch clamp. Repeated stimulation of reverse NCX1 produced a cytosolic $Ca^{2+}$-dependent long-term inactivation of the exchanger activity. The degrees of inactivation correlated with NCX1 densities of the cells and were attenuated by reduced $Ca^{2+}$ influx via the reverse exchanger. The inactivation of NCX1 was attenuated by(i) inhibition of $Ca^{2+}$ influx with reduced extracellular $Ca^{2+}$, (ii) treatment with NCX1 blocker($Na^{2+}$), and (iii) increase of cytoplasmic $Ca^{2+}$ buffer(EGTA). In BHK-NCX1 cells transiently expressing TRPV1 channels, $Ca^{2+}$ influx elicited by capsaicin produced a marked inactivation of NCX1. We suggest that cytoplasmic $Ca^{2+}$ has a dual effect on NCX1 activities, and that allosteric $Ca^{2+}$ activation of NCX1 can be opposed by the $Ca^{2+}$-dependent long-term inactivation in intact cells.
Human annexin I is a member of annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins, which have been implicated in various physiological roles including phospholipase A$_2$ (PLA$_2$) inhibition, membrane fusion and calcium channel activity. In this work, the structure of N-terminally truncated human annexin I (Δ-annexin I) and its interactions with Ca$\^$2+/, ATP and cAMP were studied at atomic level by using $^1$H, $\^$15/N, $\^$l3/C NMR (nuclear magnetic resonance) spectroscopy. The effect of Ca$\^$2+/ binding on the structure of Δ-annexin I was investigated, and compared with that of Mg$\^$2+/ binding. The addition of Ca$\^$2+/ to Δ-annexin I caused some changes in the high field and low field regions of $^1$H NMR spectra. Whereas, upon addition of Mg$\^$2+/ to Δ-annexin I, almost no change could be observed. Also we found that the binding ratio of ATP to Δ-annexin I is 1. Because Δ-annexin I is a large protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (carbonyl-$\^$l3/C, amide-$\^$15/N) labeling technique was used to determine the interaction sites of Δ-annexin I with Ca$\^$2+/ and ATP. Assignments of all the histidinyl carbonyl carbon resonances have been completed by using Δ-annexin I along with its specific 1,2-subdomain. The carbonyl carbon resonances originating from His52 and His246 of Δ-annexin I were significantly affected by Ca$\^$2+/ binding, and some Tyr and Phe resonances were also affected. The carbonyl carbon resonances originating from His52 is significantly affected by ATP binding, therefore His52 seems to be involved in the ATP binding site of Δ-annexin I.
Saturated fatty acids contribute to β-cell dysfunction in the onset of type 2 diabetes mellitus. Cellular responses to lipotoxicity include oxidative stress, endoplasmic reticulum (ER) stress, and blockage of autophagy. Palmitate induces ER Ca2+ depletion followed by notable store-operated Ca2+ entry. Subsequent elevation of cytosolic Ca2+ can activate undesirable signaling pathways culminating in cell death. Mitochondrial Ca2+ uniporter (MCU) is the major route for Ca2+ uptake into the matrix and couples metabolism with insulin secretion. However, it has been unclear whether mitochondrial Ca2+ uptake plays a protective role or contributes to lipotoxicity. Here, we observed palmitate upregulated MCU protein expression in a mouse clonal β-cell, MIN6, under normal glucose, but not high glucose medium. Palmitate elevated baseline cytosolic Ca2+ concentration ([Ca2+]i) and reduced depolarization-triggered Ca2+ influx likely due to the inactivation of voltage-gated Ca2+ channels (VGCCs). Targeted reduction of MCU expression using RNA interference abolished mitochondrial superoxide production but exacerbated palmitate-induced [Ca2+]i overload. Consequently, MCU knockdown aggravated blockage of autophagic degradation. In contrast, co-treatment with verapamil, a VGCC inhibitor, prevented palmitate-induced basal [Ca2+]i elevation and defective [Ca2+]i transients. Extracellular Ca2+ chelation as well as VGCC inhibitors effectively rescued autophagy defects and cytotoxicity. These observations suggest enhanced mitochondrial Ca2+ uptake via MCU upregulation is a mechanism by which pancreatic β-cells are able to alleviate cytosolic Ca2+ overload and its detrimental consequences.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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