Kim, Yun-Sook;Ha, Kwon-Soo;Kim, Young-Ho;Bae, Young-Seuk
BMB Reports
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v.35
no.6
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pp.629-636
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2002
Protein kinase CKII (CKII) is required for progression through the cell division cycle. We recently reported that the $\beta$ subunit of protein kinase CKII ($CKII{\beta}$) associates with CKBBP1 that contains the Ring-H2 finger motif in the yeast two-hybrid system. We demonstrate here that the Ring-H2 finger-disrupted mutant of CKBBP1 does not interact with purified $CKII{\beta}$ in vitro, which shows that the Ring-H2 finger motif is critical for direct interaction with $CKII{\beta}$. The CKII holoenzyme is efficiently co-precipitated with the wild-type CKBBP1, but not with the Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1, from whole cell extracts when epitope-tagged CKBBP1 is transiently expressed in HeLa cells. Disruption of the Ring-H2 finger motif does not affect the cellular localization of CKBBP1 in HeLa cells. The increased expression of either the wild-type CKBBP1 or Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1 does not modulate the protein or the activity levels of CKII in HeLa cells. However, the stable expression of Ring-H2 finger-disrupted CKBBP1 in HeLa cells suppresses cell proliferation and causes the accumulation of the G1/G0 peak of the cell cycle. The Ring-H2 finger motif is required for maximal CKBBP1 phosphorylation by CKII, suggesting that the stable binding of CKBBP1 to CKII is necessary for its efficient phosphorylation. Taken together, these results suggest that the complex formation of $CKII{\beta}$ with CKBBP1 and/or CKII-mediated CKBBP1 phosphorylation is important for the G1/S phase transition of the cell cycle.
Kim, Yun Hee;Song, Hyun-Ok;Ko, Kyung Min;Singaravelu, Gunasekaran;Jee, Changhoon;Kang, Junsu;Ahnn, Joohong
Molecules and Cells
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v.25
no.4
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pp.566-571
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2008
Calcineurin (Cn) is a calcium/calmodulin-dependent serine/threonine protein phosphatase that has diverse functions in different cell types and organisms. We screened proteins interacting with the C. elegans CnA homolog, TAX-6, by the yeast two-hybrid system. CNP-3 (Calcineurin interacting protein-3) is a novel protein that physically interacts with the catalytic domain of TAX-6. It is strongly expressed in the nuclei of intestine, hypodermis, dorsal uterine regions and spermatheca. Expression begins around the 60-cell stage and proceeds during all larval stages and the adult. To elucidate the biological function of cnp-3 we isolated a cnp-3 deletion mutant. Since CNP-3 binds CnA, we looked at factors associated with calcineurin loss-of-function mutants, such as brood size, body size, serotonin- and levamisole-mediated egg-laying behavior. The cnp-3(jh145) single mutant had no gross defects compared to wild-type animal. However, the phenotypes of the double mutants, tax-6(p675);cnp-3(jh145) and cnb-1(jh103);cnp-3(jh145), were more severe in terms of brood size, body size and serotonin-mediated egg-laying defects than tax-6(p675) and cnb-1(jh103), respectively. These results suggest that dysfunction of cnp-3 enhances certain calcineurin loss-of-function phenotypes in C. elegans.
Tazarotene-induced gene 1 (TIG1) is a retinoic acid-inducible protein that is considered a putative tumor suppressor. The expression of TIG1 is decreased in malignant prostate carcinoma or poorly differentiated colorectal adenocarcinoma, but TIG1 is present in benign or well-differentiated tumors. Ectopic TIG1 expression led to suppression of growth in cancer cells. However, the function of TIG1 in cell differentiation is still unknown. Using a yeast two-hybrid system, we found that transmembrane protein 192 (TMEM192) interacted with TIG1. We also found that both TIG1A and TIG1B isoforms interacted and co-localized with TMEM192 in HtTA cervical cancer cells. The expression of TIG1 induced the expression of autophagy-related proteins, including Beclin-1 and LC-3B. The silencing of TMEM192 reduced the TIG1-mediated upregulation of autophagic activity. Furthermore, silencing of either TIG1 or TMEM192 led to alleviation of the upregulation of autophagy induced by all-trans retinoic acid. Our results demonstrate that the expression of TIG1 leads to cell autophagy through TMEM192. Our study also suggests that TIG1 and TMEM192 play an important role in the all-trans retinoic acid-mediated upregulation of autophagic activity.
Van, Kyu-Jung;Ha, Bo-Keun;Hwang, Eun-Young;Kim, Moon-Young;Heu, Sung-Gi;Lee, Suk-Ha
The Plant Pathology Journal
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v.19
no.1
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pp.24-29
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2003
SS2-2, a hypernodulating soybean mutant was isolated by EMS mutagenesis from Sinpaldalkong 2. This auto-regulation mutant showed greater number of nodules and smaller plant size than its wild type Sinpaldalkong 2. SSR markers were used to identify DNA variation at SSR loci from different soybean LG. The only SSR marker that detected a length polymorphism between SS2-2 and its wild type ancestor was Satt294 on LG C1 instead of LG H, locating a hypernodulating gene. Sequencing data of flanking Satt294 indicated that the size variation was due to extra stretch of TTA repeats of the SSR motif in SS2-2, along with $A\longrightarrow$G transversion. In spite of phenotypic differences between the wild type and its hypernodulating mutants, genomic DNA poly-morphisms at microsatellite loci could not control regulation of nodule formation. The cDNA-AFLP method was applied to compare differential display of cDNA between Sinpaldalkong 2 and SS2-2. After isolation and sequence comparison with many AELP fragments, several interesting genes were identified. Northern blot analysis, immunolocalization and/or the yeast two-hybrid system with these genes might provide information on regulation of nodule development in SS2-2.
TTYH2 is a calcium-activated, inwardly rectifying anion channel that has been shown to be related to renal cancer and colon cancer. Based on the topological prediction, TTYH2 protein has five transmembrane domains with the extracellular N-terminus and the cytoplasmic C-terminus. In the present study, we identified a vesicle transport protein, ${\beta}$-COP, as a novel specific binding partner of TTYH2 by yeast two-hybrid screening using a human brain cDNA library with the C-terminal region of TTYH2 (TTYH2-C) as a bait. Using in vitro and in vivo binding assays, we confirmed the protein-protein interactions between TTYH2 and ${\beta}$-COP. We also found that the surface expression and activity of TTYH2 were decreased by co-expression with ${\beta}$-COP in the heterologous expression system. In addition, ${\beta}$-COP associated with TTYH2 in a native condition at a human colon cancer cell line, LoVo cells. The over-expression of ${\beta}$-COP in the LoVo cells led to a dramatic decrease in the surface expression and activity of endogenous TTYH2. Collectively, these data suggested that ${\beta}$-COP plays a critical role in the trafficking of the TTYH2 channel to the plasma membrane.
Jeong, Young Joo;Park, Sung Woo;Kim, Sang-Jin;Lee, Won Hee;Kim, Mooseong;Urm, Sang-Hwa;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.29
no.3
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pp.369-375
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2019
Microtubules form through the polymerization of ${\alpha}-$ and ${\beta}-tubulin$, and tubulin transport plays an important role in defining the rate of microtubule growth inside cellular appendages, such as the cilia and flagella. Heterotrimeric kinesin 2 is a molecular motor member of the kinesin superfamily (KIF) that moves along the microtubules to transport multiple cargoes. It consists of two motor subunits (KIF3A and KIF3B) and a kinesin-associated protein 3 (KAP3), forming a heterotrimeric complex. Heterotrimeric kinesin 2 interacts with many different binding proteins through the cargo-binding domains of the KIF3s, but these binding proteins have not yet been specified. To identify these proteins for KIF3A, we performed yeast two-hybrid (Y2H) screening and found a specific interaction with ${\beta}2-tubulin$ (Tubb2), a microtubule component. Tubb2 was found to bind to the cargo-binding domain of KIF3A but did not interact with KIF3B, KIF5B, or kinesin light chain 1 in the Y2H assay. The carboxyl-terminal region of Tubb2 is essential for interaction with KIF3A. Other Tubb isoforms, including Tubb1, Tubb3, Tubb4, and Tubb5, also interacted with KIF3A in the Y2H screening. However, ${\alpha}1-tubulin$ (Tuba1) did not interact with KIF3A. In addition, an antibody to KIF3A specifically co-immunoprecipitated the KIF3B and KAP3 associated with Tubb2 from mouse brain extracts. In combination, these results suggest that a heterotrimeric kinesin 2 motor protein is capable of binding to tubulin and may transport it in cells.
Kim, Mooseong;Jeong, Young Joo;Park, Sung Woo;Seo, Mi Kyoung;Kim, Sang Jin;Lee, Won Hee;Urm, Sang-Hwa;Lee, Jung Goo;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.32
no.3
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pp.189-195
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2022
Kinesin-2 comprises two subfamilies of the heterotrimeric or homodimeric motors found in mammalian cells. Heterotrimeric kinesin-2 consists of kinesin superfamily proteins (KIFs) 3A and 3B and kinesin-associated protein 3 (KAP3), which is a molecular motor protein that moves along microtubules. It plays diverse roles in cargo transport, including anterograde trafficking in cilia, and interacts with many different cargoes and proteins, but their binding proteins have not yet been fully identified. In this study, the yeast two-hybrid assay was used to identify the proteins that interact with the cargo-binding domain (CBD) of KIF3A, and an interaction between KIF3A and brain expressed X-linked 2 (Bex2) was found. Bex2 bound to the CBD-containing C-terminal tail region of KIF3A but did not interact with the same region of KIF3B or KIF5A (a motor protein of kinesin-1). KIF3A interacted with another isoform, Bex1, but did not interact with Bex3. In addition, glutathione S-transferase (GST) pull-downs showed that KIF3A specifically interacts with GST-Bex1 and GST-Bex2 but not with GST alone. When co-expressed in HEK-293T cells, Bex2 co-localized with KIF3A and co-immunoprecipitated with KIF3A and KIF3B but not KIF5B. In combination, these results suggest that Bex2 is capable of binding to heterotrimeric kinesin-2 and may serve as an adaptor protein that links heterotrimeric kinesin-2 with cargo.
Participates in actin remodeling through Rac and receptor endocytosis via Rab5. Here, we used yeast two-hybrid system with Eps8 as bait to screen a human brain cDNA library. ITSN2 was identified as the novel binding factor of Eps8. The interaction between ITSN2 and Eps8 was demonstrated by the in vivo co-immunoprecipitation and colocalization assays and the in vitro GST pull-down assays. Furthermore, we mapped the interaction domains to the region between amino acids 260-306 of Eps8 and the coiled-coil domain of ITSN2. In addition, protein stability assays and immunofluorescence analysis showed ITSN2 overexpression induced the degradation of Eps8 proteins, which was markedly alleviated with the lysosome inhibitor NH4Cl treatment. Taken together, our results suggested ITSN2 interacts with Eps8 and stimulates the degradation of Eps8 proteins.
Plants protect against viruses through passive and active resistance mechanisms, and in most cases characterized thus far, natural recessive resistance to potyviruses has been mapped to mutations in the eukaryotic initiation factor eIF4E or eIF(iso)4E genes. Five eIF4E copies and three eIF(iso)4E copies were detected in Brassica rapa. The eIF4E and eIF(iso)4E genes could interact with turnip mosaic virus (TuMV) viral protein linked to the genome (VPg) to initiate virus translation. From the yeast two-hybrid system (Y2H) and bimolecular fluorescence complementation (BiFC) assays, the TuMV-CHN2/CHN3 VPgs could not interact with BraA.eIF4E.a/c or BraA.eIF(iso)4E.c, but they could interact with BraA.eIF(iso)4E.a in B. rapa. Further analysis indicated that the amino acid substitution L186F (nt T556C) in TuMV-UK1 VPg was important for the interaction networks between the TuMV VPg and eIF(iso)4E proteins. An interaction model of the BraA. eIF(iso)4E protein with TuMV VPg was constructed to infer the effect of the significant amino acids on the interaction of TuMV VPgs-eIF(iso)4Es, particularly whether the L186F in TuMV-UK1 VPg could change the structure of the TuMV-UK1 VPg protein, which may terminate the interaction of the BraA.eIF(iso)4E and TuMV VPg protein. This study provides new insights into the interactions between plant viruses and translation initiation factors to reveal the working of key amino acids.
Se Young Pyo;Young Joo Jeong;Sung Woo Park;Mi Kyoung Seo;Won Hee Lee;Sang-Hwa Urm;Sang Jin Kim;Mooseong Kim;Jung Goo Lee;Dae-Hyun Seog
Journal of Life Science
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v.33
no.1
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pp.1-7
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2023
Intracellular cargo transport is mediated by molecular motor proteins, such as kinesin and cytoplasmic dynein. Kinesins make up a large subfamily of molecular motors. Kinesin-1 is a plus-end-directed molecular motor protein that moves various cargoes, such as organelles, protein complexes, and mRNAs, along a microtubule track. It consists of the kinesin superfamily protein (KIF) 5A, 5B, and 5C (also called kinesin heavy chains) and kinesin light chains (KLCs). Kinesin-1 interacts with many different binding proteins through its carboxyl (C)-terminal region of KIF5s and KLCs, but their binding proteins have not yet been fully identified. In this study, a yeast two-hybrid assay was used to identify the proteins that interact with the KIF5A specific C-terminal region. The assay revealed an interaction between KIF5A and glutamate-rich 4 (ERICH4). ERICH4 bound to the KIF5A specific the C-terminal region but did not interact with the C-terminal region of KIF5B or KIF3A (a motor protein of kinesin-2). In addition, KIF5A did not interact with another isoform, ERICH1. Glutathione S-transferase (GST) pull-downs showed that KIF5A interacts with GST-ERICH4 and GST-ERICH4-amino (N)-terminal but not with GST-ERICH4-C or GST alone. When co-expressed in HEK-293T cells, ERICH4 co-localized with KIF5A and co-immunoprecipitated with KIF5A and KLC but not KIF3B. Together, our findings suggest that ERICH4 is capable of binding to KIF5A and that it may serve as an adaptor protein that links kinesin-1 with cargo.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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