Kim, Byoung-Suk;Cho, Jin-Kook;Song, Jin-Ook;Lee, Hak-Kyo;Hwang, Seong-Gu
Journal of Animal Science and Technology
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v.51
no.5
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pp.427-432
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2009
This study was undertaken to screen a high xylanase and mannanase producing microbes. In the first experiment, screening was undertaken against 50 samples of microorganisms having xylanase and mannanase activities from soil and fallen leaves. The screening process has focused on picking out fungi having high xylanase and mannanase activities under the solid-state fermentation. The xylanase and mannanase activities of 6 screened microbes were 0.9~1.6 unit/mL and 0.2~0.4 unit/mL, respectively, under the submerged fermentation condition. However, under the solid-state fermentation, xylanase and mannanase activities were 103.7~220.0 unit/g and 20.1~40.3 unit/g, respectively. Finally one microbe (E-3) was selected and its xylanase and mannanase activities were 197.3 unit/g and 39.9 unit/g, respectively. The morphological and molecular biological classification of E-3 showed 99% homology with the Aspergillus niger.
A strain YB914 was isolated from soil as a producer of the extracellular xylanase, which catalyzes the hydrolysis of oat spelt xylan. The strain YB914 was identified as Streptomyces sp. on the basis of its morphological, cultural and biochemical properties. The xylanase of culture filtrate was the most active at $55^{\circ}C$ and pH 5.5, and retained 80% of its maximum activity at the range of pH 4.5~7.0. In order to optimize the culture medium for xylanase production, ingredients of G.S.S medium were replaced by several carbohydrates. The carbohydrates such as oat spelt xylan, corn cob xylan, wheat bran and lactose increased the xylanase productivity of Streptomyces sp. YB914. However, xylanase production was greatly repressed by galactose or arabinose. The maximum xylanase productivity was reached to 48 U/mL in the modified medium containing 1% oat spelt xylan and 1.5% lactose.
A strain of Bacillus sp. DSNC 101, isolated from soil, produced up to 305.0 units/ml of xylanase when grown on te medium containing 2.0% xylan, 2.0% yeast extract and 0.4% K2HPO4. The strain produced xylanase in the presence of xylan, soluble starch, rice straw, Avicel, maltose, and lactose as a sole carbon source, but the enzyme was not synthesized in the presence of xylose, glucose or arabinose. The crude xylanase preparation did not show hydrolytic activity towards cellulosic substrates and PNPX, a chromogenic substrate for $\beta$-xylosidase. The temperature and pH optima for the xylanase production were 4$0^{\circ}C$ and 8.0, respectively. Xylanase synthesis was repressed by glucose, but not by xylose. The hydrolysis products of xylan catalyzed with the culture filtrate were xylooligosaccharides such as xylobiose and xylotriose but xylose was not detected by tin layer chromatography.
Among the new yeast strains which were isolated from soils by incubating in the xylan containing minimal medium at 3$0^{\circ}C$, one strain(XB-33) was finally selected by the results of extracellular xylanase production test. The characteristics of XB-33 was almost consistent with those of the Cryptococcus ater. The formation of xylanase activity was induced by xylan and repressed by xylose or glucose. The xylanase was partially purified from the culture supernatant with DEAE-Sephadex A5O chromatography. The enzyme had a pH optimum for activity at 5.0 and its stability range was pH 5-7. The temperature optimum was at 5$0^{\circ}C$, but the enzyme activity was greatly lost by heating at 7$0^{\circ}C$ for 60 minutes. The hydrolysis products from xylan by crude enzyme detected by TLC, were xylose and n series of higher oligosaccharides. The Km value of xylanase was 20 (mg/ml).
A gene coding for xylanase from thermo-tolerant Bacillus pumilus TX703 was cloned into Escherichia coli DH5 $\alpha$ using pUC19. Among 7,400 transformants, four transformants showed clear zones on the detection agar plates containing oat-spells xylan. One of them which showed highest xylanase activity was selected and its recombinant plasmid, named pXES106, was found to carry 2.24 kb insert DNA fragment. When the nucleotide sequence of the cloned xylanase gene (xynK) was determined, xynK gene was found to consist of 1,227 base-pair open reading frame coding for a polypeptide of 409 amino acids with a deduced molecular weight of 48 kDa. The coding sequence was preceded by a putative ribosome binding site, the transcription initiation signals, and cia-acting catabolite responsive element. The deduced amino acids sequence of xylanase is similar to those of the xylanases from Hordeum vulgare (barley) and Clostridium thermocellum, with 39 and 31% identical residues, respectively. The amino acids sequence of this xylanase was quite different from those of the xylanases from other Bacillus species.
To increase the efficency of utilizing cellulosic biomass, a potent xylanase producing bacteria was isolated and identified as Bacillus sp. N-25. Extracellular xylanase from Bacillus sp. N-25 was partially purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephadex A-25 and Sephadex G-IOO column chromatographies. The xylanase was single fraction on chromatography and was true xylanase without cellulase activity. The enzyme was stable at pH 6-8 and 80% activity was remained at $50^{\circ}C$ for 30 min, but was inhibited by $Hg^{2+}$, $Ag^{2+}$, and $Mn^{2+}$. From the fact that the major end product was xylose, we suggested that the enzyme is an exo-xylanase which may be a prime candidate for industrial use.
The culture filtrate of thermophilic alkalophilic Bacillus K17 strain contained two types of xylanases were purified by ammonium sulfate fractionation, DEAD-Sephadex A-50 column chromatography, CM-Sephadex C-50 column chromatography and Sephadex G-100 gel filtration. The purified enzymes were found to be homogeneous by sodium dodecyl sulfate and disc polyacrylamide gel electrophoresis. Xylanase I and II were characterized with respect to molecular weight, optimal temperature and pH, thermal and pH stability, and Michaelis constant. Xylanase II was more active and stable, and showed greater substrate affinity and molecular weight than xylanase I. The activities of xylanases I and II were inhibited by Cu$^{++}$, Ag$^+$, Hg$^{++}$ and Fe$^{++}$. Xylanase I hydrolyzed xylan to yield xylobiose and higher amount of xylooligosaccharides, but xylanase II produced xylose other than xylobiose and xylooligosacchrides.
A 1, 4-.betha.-D-xylanase, designated as xylanase II, was purified from the culture filtrate of Trichoderma koningii ATCC 251131 by column chromatography on Sephadex G-75, SP-Sephadex C-50, DEAE-Sephadex A-50 and Sephadex G-50 with an overall yield of 6.97%. It has a molecular weight of 21.000 and an isoelectric point of 9.4. The enzyme activity is optimal at pH 5.0 and at a temperature of 50.deg.C. Xylanase II is stable up to 50.deg.C, while 40 and 90% of its activity are lost after the incubation for 30 and 60 min at 60.deg.C. The enzyme degrades xylan with relatively high activity, as well as carboxymethylcellulose and Avicel. Its $K_{m}$ values for oat-spelt xylan, larchwood xylan and Avicel are 7.48, 1.98 and 13.33 mg/ml, respectively. The hydrolysis products of oat-spelt xylan by xylanase II are xylose, xylobiose, xylotriose and arabinoxylotriose, while the reaction products of larchwood xylan are xylose, xylobiose, xylotriose and small amount of higher oligomers. The action paterns of the enzyme demonstrate that xylanase II is endo-enzyme.
Extracellular enzymes from Lentinus edodes M290 on normal woods (Quercus mongolica) and waste logs from oak mushroom production were comparatively investigated. Endoglucanase, cellobiohydrolase, ${\beta}$-glucosidase, and xylanase activities were higher on waste mushroom logs than on normal woods after 1. edodes M290 inoculation. Xylanase activity was especially different, with a three times higher activity on waste mushroom logs. When the waste mushroom logs were used as a carbon source, a new 35 kDa protein appeared. After the purification, the optimal pH and temperature for xylanase activity were determined to be 4.0 and $50^{\circ}C$, respectively. More than 50% of the optimal xylanase activity was retained when the temperature was increased from 20 to $60^{\circ}C$, after a 240 min reaction. At $40^{\circ}C$, the xylanase maintained 93% of the optimal activity, after a 240 min reaction. The purified xylanase showed a very high homology to the xylanase family 10 from Aspergillus terreus by LC/MS-MS analysis. The highest Xcorr (1.737) was obtained from the peptide KWI SQGIPIDGIG SQTHLGSGGS WTVK originated from Aspergillus terreus, indicating that the 35 kDa protein was xylanase. This protein showed low homology to a previously reported L. edodes xylanase sequence.
The study was conducted to investigate the effects of different levels of xylanase on performance, blood parameters, intestinal morphology, microflora and digestive enzyme activities of broilers. The wheat-based diets were supplemented with 0, 500, 1,000, 5,000 U/kg xylanase. Xylanase supplementation significantly (p<0.05) improved the feed:gain ratio of broilers from 1 to 21 d and 1 to 42 d. Supplementing 500 U/kg and 1,000 U/kg xylanase improved (p<0.05) the villus height and the ratio of villus height to crypt depth in the small intestine. Excess supplementation of xylanase (5,000 U/kg) increased the villus height in the ileum (p<0.01) and the ratio of villus height to crypt depth in the duodenum and ileum (p<0.05). The microflora in the ileum and caecum, digestive enzyme activities in the small intestine and the concentrations of serum glucose, uric acid, insulin and IGF-I were not affected by the supplementation of xylanase. Excess level of xylanase (5,000 U/kg) had a tendency to induce the multiplication of E. coli and total aerobes. The results suggested that supplementing 500 U/kg and 1,000 U/kg xylanase was beneficial for broilers and excess xylanase supplementation resulted in no further improvement or negative effects.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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