The hrp gene cluster in the plant pathogen Pseudomonas syringae is a key determinant of pathogenicity. Recent studies have demonstrated that specific host cell induction of the Ralstonia solanacearum hrp gene cluster is controlled by the PrhA (plant regulator of hrp) receptor. To characterize the role that P. syringae PrhA plays in the virulence of plant cells, a prhA homolog was isolated from P. syringae pv. tabaci and a $\Delta$prhA mutant was constructed by allelic exchange. The $\Delta$prhA mutant had reduced virulence in the host plant, and co-culture of P. syringae pv. tabaci and plant cell suspensions induced a much higher level of hrpA gene transcription than culture in hrp-inducing minimal medium. These results indicate that PrhA of P. syringae is a putative pathogen-plant cell contact sensor, therefore, we used a hrpA-gfp reporter fusion to monitor the in situ expression of PrhA. The results of this study demonstrated that PrhA induces hrp gene expression in P. syringae pv. tabaci in the presence of plant cells.
Shiga toxins (Stxs) are the main virulence factors expressed by the pathogenic Stx-producing bacteria, namely, Shigella dysenteriae serotype 1 and certain Escherichia coli strains. These bacteria cause widespread outbreaks of bloody diarrhea (hemorrhagic colitis) that in severe cases can progress to life-threatening systemic complications, including hemolytic uremic syndrome (HUS) characterized by the acute onset of microangiopathic hemolytic anemia and kidney dysfunction. Shiga toxicosis has a distinct pathogenesis and animal models of Stx-associated HUS have allowed us to investigate this. Since these models will also be useful for developing effective countermeasures to Stx-associated HUS, it is important to have clinically relevant animal models of this disease. Multiple studies over the last few decades have shown that mice injected with purified Stxs develop some of the pathophysiological features seen in HUS patients infected with the Stx-producing bacteria. These features are also efficiently recapitulated in a non-human primate model (baboons). In addition, rats, calves, chicks, piglets, and rabbits have been used as models to study symptoms of HUS that are characteristic of each animal. These models have been very useful for testing hypotheses about how Stx induces HUS and its neurological sequelae. In this review, we describe in detail the current knowledge about the most well-studied in vivo models of Stx-induced HUS; namely, those in mice, piglets, non-human primates, and rabbits. The aim of this review is to show how each human clinical outcome-mimicking animal model can serve as an experimental tool to promote our understanding of Stx-induced pathogenesis.
Bacteria of the genus Enterococcus are of importance in food fermentations as well as their use as probiotics in humans and livestock. However, they are also important nosocomial pathogens that cause infections. Some strains are resistant to multiple antibiotics and possess virulence factors. The role of Enterococcus species in disease has raised issues on their safety for use in foods or as probiotics. First, this review summarized the positive and negative traits of Enterococcus spp. to illustrate the controversial nature of this bacterial genus and discussed the current genomic approaches can eliminate pathogenic strains. Then, this review examined the current status of starter development for traditional food fermentations and the regulation on the approval of novel food microorganisms in Korea to point out problems in the regulation. Based on the conclusions from the studies on Enterococcus spp., we suggested the direction of safety assessment of novel food microorganisms in Korea.
Kim, In-Hwang;Shim, Jung-Im;Lee, Ko-Eun;Hwang, Won;Kim, Ik-Jung;Choi, Sang-Ho;Kim, Kun-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.1
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pp.35-42
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2008
Vibrio vulnificus produces siderophores, low-molecular-weight iron-chelating compounds, to obtain iron under conditions of iron deprivation. To identify genes associated with the biosynthesis of siderophore in V. vulnificus MO6-24/O, we screened clones with mini-Tn5 random insertions for those showing decreased production of siderophore. Among 6,000 clones screened, nine such clones were selected. These clones contain the transposon inserted in VV2_0830 (GenBank accession number) that is a homolog of a nonribosomal peptide synthase (NRPS). There is an another NRPS module, VV2_0831, 49-bp upstream to VV2_0830. We named these two genes vvs (Vibrio vulnificus siderophore synthase) A and B, respectively. Mutation of either vvsA or vvsB showed a decreased production of siderophore. The expression of an NRPS-lux fusion was negatively modulated by the presence of iron, and the regulation was dependent on Fur (ferric uptake regulator). However, the expression of the NRPS genes was still not fully derepressed in the iron-rich condition, even in furnull mutant cells, suggesting that some other unknown factors are involved in the regulation of the genes. We also demonstrated that the NRPS genes are important for virulence of the pathogen in a mice model.
Background: The valuable medicinal plant Panax ginseng has high pharmaceutical efficacy because it produces ginsenosides. However, its yields decline because of a root-rot disease caused by Ilyonectria mors-panacis. Because species within Ilyonectria showed variable aggressiveness by altering ginsenoside concentrations in inoculated plants, we investigated how such infections might regulate the biosynthesis of ginsenosides and their related signaling molecules. Methods: Two-year-old ginseng seedlings were treated with I. mors-panacis and I. robusta. Roots from infected and pathogen-free plants were harvested at 4 and 16 days after inoculation. We then examined levels or/and expression of genes of ginsenosides, salicylic acid (SA), jasmonic acid (JA), and reactive oxygen species (ROS). We also checked the susceptibility of those pathogens to ROS. Results: Ginsenoside biosynthesis was significantly suppressed and increased in response to infection by I. mors-panacis and I. robusta, respectively. Regulation of JA was significantly higher in I. robusta-infected roots, while levels of SA and ROS were significantly higher in I. mors-panacis-infected roots. Catalase activity was significantly higher in I. robusta-infected roots followed in order by mock roots and those infected by I. mors-panacis. Moreover, I. mors-panacis was resistant to ROS compared with I. robusta. Conclusion: Infection by the weakly aggressive I. robusta led to the upregulation of ginsenoside production and biosynthesis, probably because only a low level of ROS was induced. In contrast, the more aggressive I. mors-panacis suppressed ginsenoside biosynthesis, probably because of higher ROS levels and subsequent induction of programmed cell death pathways. Furthermore, I. mors-panacis may have increased its virulence by resisting the cytotoxicity of ROS.
Pseudomonas aeruginosa and Vibrio vulnificus are Gram-negative human pathogens, which exert their virulence through quorum sensing (QS) regulation. The infection of these pathogens have been known to be mediated by biofilm formation in many cases and this study carried out the time-course analysis of biofilm formation depending on the QS regulation in P. aeruginosa and V. vulnificus. In P. aeruginosa, our results demonstrated that QS-deficient mutant better attached to surface at initial stage of biofilm formation, but poorly proceeded to the maturation of the biofilm structure, while wild type less attached at initial stage but developed highly structured biofilm at late stage. Because of this, the quantitative comparison of biofilm formation between wild type and the QS mutant showed the reversion; the QS mutant formed more biofilm until 10 h after inoculation than wild type, but wild type formed much more biofilm after 10 h than QS mutant. V. vulnificus has been reported to form more biofilm with the mutation on QS system. When we performed the same time-course analysis of the V. vulnificus biofilm formation, the reversion was not detected even with prolonged culture for 108 h and the QS mutant always forms more biofilm than wild type. These results indicate that the QS regulation negatively affects the attachment at early stage but positively facilitates the biofilm maturation at late stage in P. aeruginosa, while the QS regulation has a negative effect on the biofilm formation throughout the biofilm development in V. vulnificus. Based on our results, we suggest that the developmental stage of biofilm and bacterial species should be considered when the QS system is targeted for biofilm control.
In vivo expression technology (IVET) has been developed to study bacterial gene expression in Salmonella typhimurium during host infection. The expression of selected genes by IVET has been elevated in vivo but not in vitro. The selected genes turned out to be important for bacterial virulence and/or pathogenicity. IVET depends on a synthetic operon with a promoterless transcriptional fusion between a selection marker gene and a reporter gene. The IVET approach has been successfully adapted in other bacterial pathogens and plant-associated bacteria using different selection markers. Pseudomonas putida suppresses citrus root rot caused by Phytophthora parasitica and enhances citrus seedling growth. The WET strategy was adapted based on a transcriptional fusion, pyrBC'-lacZ, in P. putida to study the bacterial traits important far biocontrol activities. Several genes appeared to be induced on P. parasitica hyphae and were found to be related with metabolism and regulation of gene expression. It is likely that the biocontrol strain took a metabolic advantage from the plant pathogenic fungus and then suppressed citrus root rot effectively. The result was parallel with those from the adaptation of IVET in P. fluorescens, a plant growth promoting rhizobacteria (PGPR). Interestingly, genes encoding components for type III secretion system have been identified as rhizosphere-induced genes in the PGPR strain. The type III secretion system may play a certain role during interaction with its counterpart plants. Application of IVET has been demonstrated in a wide range of bacteria. It is an important strategy to genetically understand complicated bacterial traits in the environment.
Lee, Moo-Seung;Kwon, Haenaem;Nguyen, Loi T.;Lee, Eun-Young;Lee, Chan Yong;Choi, Sang Ho;Kim, Myung Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.2
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pp.432-439
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2016
Shiga toxins (Stxs) produced by Shiga toxin-producing Escherichia coli (STEC) strains are major virulence factors that cause fatal systemic complications, such as hemolytic uremic syndrome and disruption of the central nervous system. Although numerous studies report proinflammatory responses to Stx type 1 (Stx1) or Stx type 2 (Stx2) both in vivo and in vitro, none have examined dynamic immune regulation involving cytokines and/or unknown inflammatory mediators during intoxication. Here, we showed that enzymatically active Stxs trigger the dissociation of lysyl-tRNA synthetase (KRS) from the multi-aminoacyl-tRNA synthetase complex in human macrophage-like differentiated THP-1 cells and its subsequent secretion. The secreted KRS acted to increase the production of proinflammatory cytokines and chemokines. Thus, KRS may be one of the key factors that mediate transduction of inflammatory signals in the STEC-infected host.
Activating transcription factor-3 (ATF3) acts as a negative regulator of cytokine production during Gram-negative bacterial infection. A recent study reported that ATF3 provides protection from Streptococcus pneumoniae infection by activating cytokines. However, the mechanism by which S. pneumoniae induces ATF3 after infection is still unknown. In this study, we show that ATF3 was upregulated via Toll-like receptor (TLR) pathways in response to S. pneumoniae infection in vitro. Induction was mediated by TLR4 and TLR2, which are in the TLR family. The expression of ATF3 was induced by pneumolysin (PLY), a potent pneumococcal virulence factor, via the TLR4 pathway. Furthermore, ATF3 induction is mediated by p38 mitogen-activated protein kinase (MAPK) and c-Jun N-terminal kinase (JNK). Thus, this study reveals a potential role of PLY in modulating ATF3 expression, which is required for the regulation of immune responses against pneumococcal infection in macrophages.
Erwinia amylovora causes a devastating disease called fire blight in rosaceous trees and shrubs such as apple, pear, and raspberry. To successfully infect its hosts, the pathogen requires a set of clustered genes termed hrp. Studies on the hrp system of E. amylovora indicated that it consists of three functional classes of genes. Regulation genes including hrpS, hrpS, hrpXY, and hrpL produce proteins that control the expression of other genes in the cluster. Secretion genes, many of which named hrc, encode proteins that may form a transmembrane complex, which is devoted to type III protein secretion. Finally, several genes encode the proteins that are delivered by the protein secretion apparatus. They include harpins, DspE, and other potential effector proteins that may contribute to proliferation of E. amylovora inside the hosts. Harpins are glycine-rich heat-stable elicitors of the hypersensitive response, and induce systemic acquired resistance. The pathogenicity protein DseE is homologous and functionally similar to an avirulence protein of Pseudomonas syringae. The region encompassing the hrpldsp gene cluster of E. amylovora shows features characteristic of a genomic island : a cryptic recombinase/integrase gene and a tRNA gene are present at one end and genes corresponding to those of the Escherichia coli K-12 chromosome are found beyond the region. This island, designated the Hrp pathogenicity island, is more than 60 kilobases in size and carries as many as 60 genes.
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