In addition to the five well-characterized genes of Tobacco mosaic virus (TMV), this virus contains a sixth open reading frame (ORF6) that encodes a 4.8 kDa protein. TMV ORF6 overlaps the ORFs encoding the 30 kDa movement protein and the adjacent 17.5 kDa capsid protein. Although the 4.8 kDa protein could not be detected in vivo, alteration of the AUG codons of this ORF resulted in a mutant virus that attenuated the virulence of the mutated TMV in Nicotiana benthamiana, but not N. tabacum (tobacco). These sequence changes did not affect either the replication or movement of the mutated TMV. Expression of TMV ORF6 from the virus expression vector Potato virus X (PVX) intensified the virulence of this virus in N. benthmiana, but not tobacco, while expression of TMV ORF6 from the virus expression vector Tobacco rattle virus enhanced the pathogenicity observed in both N. benthamima and tobacco. Thus, the TMV ORF6 is a host- and virus-specific. virulence factor. However, two separate assays indicated that the TMV 4.8 kDa protein was not a suppression of RNA silencing. A fusion protein formed between the TMV 4.8 kDa protein and the green fluorescent protein was expressed from the PVX vector and localized to plasmodesmata. Possible roles of the 4.8 kDa protein in pathogenicity will be discussed
Identification of the genes responsible for the recovery of virulence in brain-passaged Acanthamoeba culbertsoni was attempted via mRNA differential display polymerase chain reaction (mRNA DD-PCR) analysis. In order to identify the regulatory changes in transcription of the virulence related genes by the brain passages, mRNA DD-PCR was performed which enabled the display of differentially transcribed mRNAs after the brain passages. Through mRNA DD-PCR analysis. 96 brain-passaged amoeba specific amplicons were observed and were screened to identify the amplicons that failed to amplify in the non-brain-passaged amoeba mRNAs. Out of the 96 brain-passaged amoeba specific amplicons, 12 turned out to be amplified only from the brain-passaged amoeba mRNAs by DNA slot blot hybridization. The clone, A289C, amplified with an arbitrary primer of UBC #289 and the oligo dT$_{11}$-C primer, revealed the highest homology (49.8%) to the amino acid sequences of UPD-galactose lipid transferase of Erwinia amylovora, which is known to act as an important virulence factor. The deduced amino acid sequences of an insert DNA in clone A289C were also revealed to be similar to cpsD, which is the essential gene for the expression of type III capsule in group B streptococcus. Upregulated expression of clone A289C was verified by RNA slot blot hybridization. Similar hydrophobicity values were also observed between A289C (at residues 47-66) and the AmsG gene of E. amylovora (at residues 286-305: transmembrane domains). This result suggested that the insert of clone A289C might play the same function as galactosyl transferase controlled by the AmsG gene in E. amylovora.a.
Cyclic AMP receptor-like protein (Clp), is known to be a global transcriptional regulator for the expression of virulence factors in Xanthomonas campestris pv. campestris (Xcc). Sequence analysis showed that Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) contains a gene that is strongly homologous to the Xcc clp. In order to determine the role of the Clp homolog in Xoo, a marker exchange mutant of $clp_{xoo4158}$ was generated. Virulence and virulence factors, such as the production of cellulase, xylanase, and extracellular polysaccharides (EPS) and swarming motility were significantly decreased in the $clp_{xoo4158}$ mutant. Moreover, the mutation caused the strain to be more sensitive to hydrogen peroxide and to over-produce siderophores. Complementation of the mutant restored the mutation-related phenotypes. Expression of $clp_{xoo4158}$, assessed by reverse-transcription realtime PCR and clp promoter activity, was significantly reduced in the rpfB, rpfF, rpfC, and rpfG mutants. These results suggest that the clp homolog, $clp_{xoo4158}$, is involved in the control of virulence and resistance against oxidative stress, and that expression of the gene is controlled by RpfC and RpfG through a diffusible signal factor (DSF) signal in Xanthomonas oryzae pv. oryzae KACC10859.
The rpf genes and $colS_{XOO1207}/colR_{XOO1208}$ were known to require for virulence of Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo). In Xoo KACC10331 genome, two more colS/colR genes, $colS_{XOO3534}$ (raxH)/$colR_{XOO3535}$ (raxR) and $colS_{XOO3762}/colR_{XOO3763}$ were annotated. The $colS_{XOO3534}/colR_{XOO3535}$ were known to control AvrXa21 activity and functions of $colS_{XOO3762}/colR_{XOO3763}$ were unknown in Xoo. To characterize the relationship between rpf and colS/colR genes, expression of colS/colR genes in Rpf mutants of Xoo were analyzed with quantitative reverse transcription PCR (qRT-PCR). Expressions of all three colS/colR genes increased in the rpfF mutant in which DSF synthesis is defective. Expression of $colS_{XOO1207}/col-R_{XOO1208}$, $colS_{XOO3534}/colR_{XOO3535}$ and $colS_{XOO3762}/colR_{XOO3763}$ increased 2, 2-7, 3-13 folds respectively. Expression of $colS_{XOO3534}$ and $colS_{XOO3762}$ also increased 2-4 folds in the rpfG mutant in which the signal from DSF is no longer transferred to down-stream. Expression of the other colS/colR genes was not significantly changed in the rpfG mutant compared to the wild type. Since RpfF and RpfG are responsible for DSF synthesis and signal transfer from DSF to down-stream to regulate virulence gene expression, these results suggest that the DSF and DSF-mediated signal regulate negatively three colS/colR genes in Xoo.
Bacterial traits for virulence of Ralstonia solanacearum causing lethal wilt in plants were extensively studied but are not yet fully understood. Other than the known virulence factors of Ralstonia solanacearum, this study aimed to identify the novel gene(s) contributing to bacterial virulence of R. solanacearum. Among the transposon-inserted mutants that were previously generated, we selected mutant SL341F12 strain produced exopolysaccharide equivalent to wild type strain but showed reduced virulence compared to wild type. In this mutant, a transposon was found to disrupt the murI gene encoding glutamate racemase which converts L-glutamate to D-glutamate. SL341F12 lost its motility, and its virulence in the tomato plant was markedly diminished compared to that of the wild type. The altered phenotypes of SL341F12 were restored by introducing a full-length murI gene. The expression of genes required for flagella assembly was significantly reduced in SL341F12 compared to that of the wild type or complemented strain, indicating that the loss of bacterial motility in the mutant was due to reduced flagella assembly. A dramatic reduction of the mutant population compared to its wild type was apparent in planta (i.e., root) than its wild type but not in soil and rhizosphere. This may contribute to the impaired virulence in the mutant strain. Accordingly, we concluded that murI in R. solanacearum may be involved in controlling flagella assembly and consequently, the mutation affects bacterial motility and virulence.
본 연구에서는 vir유전자의 발현에 있어서 페놀화합물, Ti 플라스미드들의 종류(cctopine, nopaline), A. tumefaciens 들의 영향에 대해서 조사하였다. 9종류의 페놀화합물들을 3종류의 A. tumefaciens들과 3종류의 Ti 플라스미드들을 대상으로 조사하였다. Nopaline Ti 플라스미드를 포함하는 A. tumefaciens MW107에 존재하는 vir유전자는 4-hydroxyacetophenone, phenol, catechol, resorcinol, acetosyringone과 vanillin등 6종류의 페놀화합물들에 의해서 상대적으로 높게 발현되었다. Octopine Ti 플라스미드들을 포함하는 A. tumefaciens MW105와 MW108의 vir유전자들은 acetosyringone에서만 발현되었다. 따라서 vir유전자의 발현을 유도시키는 요인들은 Ti 플라스미드 종류, A. tumefaciens와 페놀화합물들의 종류에 따라서 서로 다르다는 결과를 얻었다.
Two hundred and eighty nine strains of Yersinia enterocolitica isolated from healthy pigs were tested for the presence of 40~50 Megadalton virulence-associated plasmids and plasmidmediated in vitro virulence-associated properties, i.e., congo red uptake, calcium dependency, autoagglutination, CRMOX reaction, crystal violet binding and pyrazinamidase reaction. The correlationships between in vitro virulence-associated properties and the presence of 220 Kdalton outer membrane protein(OMP) were examined in strains with or without virulence-associated plasmids. The correlationships between the presence of plasmids on the production of the OMP and the expression of in vitro virulence-associated properties were studied with $CRMOX^+$ strains and acridine orangecured $CRMOX^-$ mutants. The results were as follows : 1. Of the in vitro virulence-associated tests with 289 strains of Y enterocolitica, 275 strains (95.2%) were positive for pyrazinamidase test, and followed by in order of crystal violet binding test, 226 (79.2% ) ; CRMOX test, 190 (65.7%) ; autoagglutination test, 1.85(64.0%) : calcium dependency test, 86 (29.8%) and congo red uptake test, 47(16.3%). 2. The correlationship between autoagglutination and CRMOX test(r=0.90) was highly significant (p<0.01). 3. In 190 strains(65.7%) bearing the virulence-associated plasmids(MW 40~50 Mdalton), the correlation between the presence of plasmids and their in vitro virulence-associated properties were highest with CRMOX test(r=0.93) and followed by in orders of AAG test(0.81), CV test(0.46), PYZ test(0.37) and CD test(0.18), but no correlationship between the presence of plasmids and CR test(-0.11). 4. The $CRMOX^+$ strains produced the 220 Kdalton OMP when they were cultured at $37^{\circ}C$, but not at $26^{\circ}C$. The presence of 220 Kdalton OMP was correlated significantly with in vitro virulence properties and the presence of virulence-associated plasmid, respectively. 5. In the isogenic $CRMOX^-$ mutant strains, of which plasmid were cured by treatment with acridine orange not only in vitro virulence-associated properties(CR 100%, CD 100%, AAG 82.6%, CV 58.3%) disappeared but also 220 Kdalton OMP(100%) was not produced. These results indicate that the positive CRMOX reaction is plasmid-mediated and the CRMOX test is potential as an in vitro virulence tests with Y enterocolitica.
Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) causes bacterial leaf blight (BLB) in rice (Oryza sativa L.). In this study, we investigated the effect of a mutation in opsX (XOO1056), which encodes a saccharide biosynthesis regulatory protein, on the virulence and bacterial chemotaxis of Xoo. We performed DNA micro-array analysis, which showed that 63 of 2,678 genes, including genes related to bacterial motility (flagellar and chemotaxis proteins) were significantly downregulated ($<\;-2\;log_2$ fold changes) by the mutation in opsX. Indeed, motility assays showed that the mutant strain was nonmotile on semisolid agar swarm plates. In addition, a mutant strain (opsX::Tn5) showed decreased virulence against the susceptible rice cultivar, IR24. Quantitative real-time RT-PCR reaction was performed to confirm the expression levels of these genes, including those related to flagella and chemotaxis, in the opsX mutant. Our findings revealed that mutation of opsX affects both virulence and bacterial motility. These results will help to improve our understanding of Xoo and provide insight into Xoo-rice interactions.
Hybrid histidine kinase is a part of two-component system that is required for various stress responses and pathogenesis of pathogenic fungi. In the present study, Tco1, a homologue of human pathogen Cryptococcus neoformans Tco1 encoding a hybrid histidine kinase, was identified in corn smut pathogen Ustilago maydis by bioinformatic analysis. To explore the role of Tco1 in the virulence of U. maydis, mutants in which the tco1 gene was partially deleted were constructed by allelic exchange. The U. maydis tco1 mutants did show unaltered growth rate on axenic medium but were unable to produce conjugation tubes and develop fuzzy filaments, resulting in impaired mating of compatible strains. The expression levels of prf1, pra1, and mfa1 which are involved in the pheromone pathway significantly decreased in the tco1 mutants. In inoculation tests to host, the tco1 mutants showed significantly reduced ability in the production of anthocyanin pigments and tumor development on maize leaves. Overall, the combined results indicated that Tco1 plays important roles in sexual development and virulence of U. maydis by regulating the expression of the genes involved in the pheromone pathway.
Several upstream activators required for proper activation of brlA are involved in the development, vegetative growth, toxin production, and pathogenesis of Aspergillus fumigatus. In this study, we characterized the roles of two upstream developmental regulators, A. fumigatus flbB (AfuflbB) and flbE (AfuflbE), in toxin production and virulence. The deletion of AfuflbB and AfuflbE resulted in reduction of the expression of AfulaeA. Moreover, only about 8% to 10% of fumagillin was produced in the two mutants compared with that of wild type, and ${\Delta}AfuflbB$ strain produced 85% of gliotoxin compared with wild type, whereas none was produced by ${\Delta}AfuflbB$. Flow-cytometric analysis revealed decreased necrotic and apoptotic polymorphonuclear leukocytes cell death after exposure to supernatants from ${\Delta}AfuflbB$ and ${\Delta}AfuflbB$ strains compared with the wild type. These results indicate that FlbB and FlbE are necessary for the proper laeA expression, toxin production, and virulence of A. fumigatus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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