To enhance the growth of cryopreserved cells of transgenic Nicotiana tabacum, Pluronic F-68 was supplemented in a recovery medium during post-thaw period. As cryoprotective agents, 1 M sucrose, 0.5 M glycerol and 0.5 M dimethyl sulfoxide (DMSO) were added before freezing steps. The post-thaw growth of the cells was improved with Pluronic F-68, ranged from 0.1 to 10 g/L. The interactions of Pluronic F-68 with the cells were confirmed by the changes of hydrophobicity or permeability of the cells. Pluronic F-68 did not show any effect on the activity of $\beta$-glucuronidase (GUS) in all treatments. Therefore, the addition of Pluronic F-68 in a recovery medium was found to be beneficial to enhance the post-thaw growth of cryopreserved transgenic tobacco cells without affecting the production of recombinant protein.
Glutathione and ascorbic acid have been shown to fulfill many essential functions in animal and plant growth, development, defence and protection against oxidative damage. Effects of glutathione and ascorbic acid were examined in transgenic N. tabacum cells producing hGM-CSF to determine the effects of the vitamins on growth and cell viability. In lag phase, cell viability was preserved by glutathione and ascorbic acid. Therefore, recombinant protein productivity was increased. The purpose of present study is to investigate the role of antioxidants in cold stress-induced apoptosis in plant suspension cells. Cold stress lowered cell viability and increased total genomic DNA fragmentation. Supplementing the cell cultures with glutathione and ascorbic acid inhibited cold stress-induced decrease in cell viability and increase in total genomic DNA fragmentation.
Transgenic rice cells using RAmy3D promoter can provide high productivity, and the production of recombinant protein is induced by sugar starvation. In this system, productivity was reduced during the scale-up processes. To ensure the influences of shear stress and oxygen transfer rate, working volume and mixing performances were investigated under various agitation speeds and working volumes. In addition, inoculation methods including suspended cells and filtered cells were compared. Working volumes and shaking speeds were 300, 450 mL and 80, 120 rpm, respectively. Hydrodynamic environment of each condition was measured numerically like mixing time and $k_La$. Good mixing performance and high shear stress were measured at high agitation speed and low volume. The highest level of hCTLA4Ig was 30.7 mg/L at 120 rpm, 300 mL. When conditioned medium was used for inoculation, increased cell growth was noticed during the day 0~4 and decreased slower than filtered cells. Compared with filtered cells, the maximum hCTLA4Ig level reached 37.8 mg/L at 120 rpm, 300 mL and lower protease activity level was observed. In conclusion mixing performance is critical factor for productivity and conditioned medium can have a positive effect on damaged cells caused by hydrodynamic shear stress.
Cho Mi-Ae;Song Yun-Mi;Park Yun-Ok;Ko Suck-Min;Min Sung-Ran;Liu Jang-Ryol;Lee Jun-Haeng;Choi Pil-Son
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.4
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pp.257-262
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2005
Agrobacterium tumefaciens-mediated cotyledonary-node explants transformation was used to produce transgenic melon. Cotyledonary-node explants of melon (Cucumis melo L. cv. Super VIP) were co-cultivated with Agrobacterium strains (LBA4404, GV3101, EHA101) containing the binary vector (pPTN289) carrying with CaMV 35S promoter-gus gene as reporter gene and NOS promoter-bar gene conferring resistance to glufosinate (herbicide Basta) as selective agent, and the binary vector (pPTN290) carrying with Ubiquitin promoter-GUS gene and NOS promoter-nptll gene conferring resistance to paromomycin as selective agent, respectively. The maximum transformation efficiency (0.12%) was only obtained from the cotyledonary-node explants co-cultivated with EHA101 strain (pPTN289) on selection medium with 5 mg/L glufosinate and not produced a transgenic melon from the cotyledon or cotyledonary-node co-cultivated with other strains. Finally, five plants transformed showed the resistance in glufosinate antibiotic and the GUS positive response in leaf ($T_0$), flower ($T_0$), seeds ($T_1$) and plantlet ($T_1$). Southern blot analysis revealed that the gus gene integrated into each genome of transgenic melon.
Proceedings of the Korean Society of Life Science Conference
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2002.12a
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pp.48-60
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2002
Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) is a cytokine that stimulates the production of granulocytes, macrophages, and white blood cells. The effects of osmotic pressure on secretion of human GM-CSF into the culture medium were investigated in suspension cultures of transgenic tobacco cells. An increase in osmotic pressure caused by the addition of mannitol decreased the cell size index, with the effect being more pronounced when cells were measured wet rather than dry. Increased osmotic pressure enhanced the secretion of hGM-CSF. At 90 g/L mannitol, the maximum concentration tested, hGM-CSF was present in the culture medium at 980 ug/L. As the concentration of mannitol increased, the total amount of protein secreted also increased, but was disproportionately enriched in GM-CSF NaCl, another osmoticum, had very similar effects on cell growth and hGM-CSF production, but did not cause enrichment for hGM-CSF Additionally, protein-stabilizing polymer was added to culture broth to enhance stability of secreted recombinant protein. Finally, above two method were applied together to maximize the productivity.
Effects of ultrasound on cell growth and the production of human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGM-CSF) were investigated using transgenic Nicotiana tabacum cell suspension cultures. The culture suffered a slight growth depression immediately after the sonication, but gradually recovered to normal growth within 2 days. When the cells were exposed to ultrasound, the level of secreted hGM-CSF was 2.14 times higher than that in normal condition. From the beginning to 6 days of culture, production of secreted hGM-CSF was higher than that of control and then decreased. At the end of culture, however, hGM-CSF was considerably increased up to 36.7%. In the case of intracellular hGM-CSF, the level was slightly higher than that obtained in normal condition. Total hGM-CSF production was 31.5% higher than that of control culture after 6 days. The highest amount of hGM-CSF was $34.9\;{\mu}g/L$.
Direct reprogramming, also known as a trans-differentiation, is a technique to allow mature cells to be converted into other types of cells without inducing a pluripotent stage. It has been suggested as a major strategy to acquire the desired type of cells in cell-based therapies to repair damaged tissues. Studies related to switching the fate of cells through epigenetic modification have been progressing and they can bypass safety issues raised by the virus-based transfection methods. In this study, a protocol was established to directly convert fully differentiated fibroblasts into diverse mesenchymal-lineage cells, such as osteoblasts, adipocytes, chondrocytes, and ectodermal cells, including neurons, by means of DNA demethylation, immediately followed by culturing in various differentiating media. First, 24 h exposure of 5-azacytidine (5-aza-CN), a well-characterized DNA methyl transferase inhibitor, to NIH-3T3 murine fibroblast cells induced the expression of stem-cell markers, that is, increasing cell plasticity. Next, 5-aza-CN treated fibroblasts were cultured in osteogenic, adipogenic, chondrogenic, and neurogenic media with or without bone morphogenetic protein 2 for a designated period. Differentiation of each desired type of cell was verified by quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction/western blot assays for appropriate marker expression and by various staining methods, such as alkaline phosphatase/alizarin red S/oil red O/alcian blue. These proposed procedures allowed easier acquisition of the desired cells without any transgenic modification, using direct reprogramming technology, and thus may help make it more available in the clinical fields of regenerative medicine.
This study describes an efficient protocol for Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of two subgroups of genotype AAA bananas (Musa acuminata cv. Pei Chiao and Musa acuminata cv. Gros Michel). Instead of using suspension cells, cauliflower-like bud clumps, also known as multiple bud clumps (MBC), were induced from sucker buds on MS medium containing $N^6$-Benzylaminopurine (BA), Thidiazuron (TDZ), and Paclobutrazol (PP333). Bud slices were co-cultivated with A. tumefaciens C58C1 or EHA105 that carry a plasmid containing Arabidopsis root-type ferredoxin gene (Atfd3) and a plant ferredoxin-like protein (pflp) gene, respectively. These two strains showed differences in transformation efficiency. The EHA105 strain was more sensitive in Pei Chiao, 51.3% bud slices were pflp-transformed, and 12.6% slices were Atfd3-transformed. Gros Michel was susceptible to C58C1 and the transformation efficiency is 4.4% for pflp and 13.1% for Atfd3. Additionally, gene integration of the putative pflp was confirmed by Southern blot. Resulting from the pathogen inoculation assay, we found that the pflp transgenic banana exhibited resistance to Fusarium oxysporum f. sp. cubense tropical race 4. This protocol is highly advantageous to banana cultivars that have difficulties in setting up suspension cultures for the purpose of quality improvement through genetic transformation. In addition, this protocol would save at least 6 months in obtaining explants for transformation and reduce labor for weekly subculture in embryogenic cell suspension culture systems.
Kim, H.M.;Lee, S.M.;Park, H.Y.;Moon, S.J.;Kang, M.J.
Journal of Embryo Transfer
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v.22
no.3
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pp.179-184
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2007
Culture method of somatic cells is one of the important factors in the production of transgenic pigs by somatic cell nuclear transfer. In this study, we established an efficient culture method of porcine fetal fibroblasts. Porcine fetal fibroblasts were isolated from 33-day-old fetuses. The proliferation of porcine fetal fibroblasts was analyzed by different serum types and culture media. The cultures in medium supplied 15% ES screened FBS showed faster increase in cell number than 15% FBS. Also, fetal fibroblasts have been propagated continuously for $7{\sim}8$ passages in ES modified DMEM and DMEM medium. We transfected $PGK-neo^r$ vector (pKJ2) into porcine fetal fibroblasts to estimate colony formation in this culture condition. The formation of colonies was confirmed in the medium containing $300\;{\mu}g/ml$ G418 at 12 day. These data show that this culture system can be used screening of porcine somatic cells transfected transgene.
This study was carried out to evaluate the potential for preselection of transgenic embryos prior to transfer into recipient animals. In these experiments, I used a 3.2 kb transgene which contained the neomycin resistance gene (neo) and lac Z gene driven by the $\beta$ actin promoter (iacZ Ineo). Oocytes were aspirated from abattoir ovaries, matured in TCM-199 supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS), 5 ${\mu}\textrm{g}$/ml LH, 0.5 ${\mu}\textrm{g}$/ml FSH, 100 unit/ml penicillin, and 100 ${\mu}\textrm{g}$/ml streptomycin for 22 to 24 hrs then inseminated with a sperm suspension of 1 X 10$^6$ sperm/ml containing 5 ${\mu}\textrm{g}$/ml of heparin. At 18-20 hrs after insemination, cumulus cells were removed by vortexing and pronuclei of centrifuged zygotes microinjected with the lacZ/neo construct (3 ng/$\mu$l). All cultures were carried out in CR1aa with transfected BRL monolayers containing 3 mg/ml BSA, 20 $\mu$/ml NEM amino acids and 40 $\mu$I/ml BME amino acids. To identify the appropriate concentration of G418 for selection, non-microinjected zygotes were cultured in the presence of 0, 50, 100 and 200 $\mu$g/ml of G418. After 8 days of culture in these treatments, 44/145 (30.3%), 13/150 (8. 7%), 1/151 (0.7%) and 0/134 (0.0%) devel-oped to the blastocyst stage in 0, 50, 100 and 200 $\mu$g/ml of G418, respectively. A total of 1,127 zygotes were microinjected and placed into culture (without G418) and subsequently 710 (63.0%) cleaved. At 48 hrs post-injection, embryos ($\geq$2-cell) were randomly assigned to control (medium alone) or G418 (100 ${\mu}\textrm{g}$/ml) treatments. A control culture of 740 non-microinjected embryos from the same replicates of embryos were also placed into control medium. After 8 days in culture, 54/343 (15.7%) and 22/367 (6.0 %) of the microinjected embryos developed to the blastocyst stage in control and G418 media, respectively. A total of 151/740 (27.2%) of the non-microinjected embryos placed in the control medium developed to the blastocyst stage. The blastocysts in the control treatment had a mean of 70.7 ${\pm}$ 4.7 cells of which 23.1 ${\pm}$ 2.6 (32.7%) stained for $\beta$-Gal activity. B1astocysts in the G418 treatment had a mean of 48.8${\pm}$7.5 cells of which 40.3 ${\pm}$ 4.1 (82.6%) stained for $\beta$-Gal ac tivity (P<0.05). In the control treatment 26 of 30 (87.0%) blastocysts had some cells with $\beta$-Gal activity while all of the blastocysts in the G418 treatment had some cell with $\beta$-Gal ac tivity (P<0.05). However, ICM colonies in either control or G418 treatments were not expressed any epiblast cell except of trophetoderm celIs. The $\beta$-actin promoter/lacZ gene may not be e expression or silence expression in epiblast cells These results clearly show an enrichment of blastocysts expressing the transgene in the majority of their cells after culture in the presence of G418. The exogeneous gene was not express a and silence in ICM colonies especiallly epiblast cells except of trophectederm cells. Even though the higher rate cell number expressed of exogeneous gene in the G418 treatments, a total cell number was decrease significantly (P<0.05) of which might be also drop of the establishment of ES like-cell colonies and production of transgenic animals. However, futher studies need to determine the viability of these selected embryos and the avability of production of transgenic offspring.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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