Kim, Myeong-chul;Lee, Joo-mook;Kwon, Oh-deog;Chae, Joon-seok;Kim, Heung-seob
Korean Journal of Veterinary Research
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v.33
no.3
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pp.479-486
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1993
This study was attempted co develope a method for detection of Theileria sergenti infection on the basis of hybridization of parasite DNA with a probe. For construction of a T sergenti genomic library, T sergenti DNA was digested completely with Bam-HI and the fragments were ligated into the Bam-HI site of pUC-19 before transformation of Escherichia colistrain JM83. To detect clones containing the parasite's DNA sequences, a genomic DNA library of T sergenti constructed in pUC-19 was screened by cracking and Southern hybridization. Seven colonies were chosen from 29 colonies which were screened by transformation of Escherichia coli strain JM83. Seven transformants were comfirmed from seven colonies by cracking. The sizes of transformants were about 5Kb, 5.7Kb, 4.3Kb, 7.75Kb, 7.85Kb, 5.8Kb, 3.8Kb, respectively. DNA inserts, T sergenti DNA, and bovine DNA were hybridized with radio-labelled T sergenti DNA. Two($pT_1$, $pT_1$) of the seven inserts and T sergenti DNA reacted strongly but another 5 inserts and bovine DNA showed weak reation. All of the DNA inserts were not reaction, but T sergenti DNA were very weakly and bovine DNA were strongly reacted to hybridization with radio-labelled bovine DNA. Therefore, we obtained total 7 T sergenti DNA fragments in this study.
A white rot fungus Irpex lacteus produced lignin degrading enzymes, which showed degrading activity against various recalcitrant compounds. However, laccase, one of the lignin degrading enzymes, was too low to be assayed by spectrophotometry using o-tolidine as the chromogenic substrate in this fungus under various culture conditions. A laccase expression vector was constructed using a cDNA from Phlebia tremellosa with the constitutively expressed promoter of glyceraldehydes-3-phosphate dehydrogenase gene, and introduced into I. lacteus by the restriction enzyme mediated integration transformation through the protoplast-$CaCl_2$ procedure. Two transformants showed highly increased laccase activities at the early growth phase in the minimal liquid medium, and they not only degraded bisphenol A, a notorious endocrine disrupting chemical, but also removed the estrogenic activity effectively.
Tobacco transformants harboring cinnamic acid 4-hydroxylase gene (C4H) fused with susquiterpene cyclase promoter was developed in order to regulate biosynthesis of phenolic compounds by the expression of the introduced gene. Twenty transformants for each specific promoter were used to analyze the incorporation of the chimeric genes by PCR and Southern blot analysis. PCR products of NPTII(neomycin phosphotransferase) gene (553bp) were detected in the transgenic tobacco plants. The incorporation of the chimeric gene was confirmed in the Southern blot analysis. C4H activity in the transgenic plants was elevated by UV-irradiation and its level was higher compared to that of control plants.
Optimal regeneration conditions of ginseng transformants were studied. It has been known that Ferritin Light Heavy Chain (FLHC) gene remove the several heavy metal by combination, store and transport. To obtain the ginseng tolerant to heavy metal, binary vector was introduced in Agrobacterium by tri-parental mating and then Agrobacterium tumefaciens MP90/FLHC was selected on the AB media and MS media containing kanamycin. Explants were co-cultured with Agrobacterium tumefaciens MP90/FLHC, which contained NPT II as a selectable marker, tadpole ferritin heavy chain (FLHC) gene and human ferritin light chain gene and then a number of embryos were induced. The induced embryo transferred to shooting media consisting of MS medium supplemented with GA 10 mg/L. As a result of examination that induced the normal growth of transfomants, transformants showed the equivalent growth in both root and shoot on the media containing the 1/3 MS.
Lee Bang-Yong;Han Sang-Yong;Choi Han Gil;Kim Jee Hyun;Han Kap-Hoon;Han Dong-Min
Journal of Microbiology
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v.43
no.6
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pp.523-528
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2005
Using the genomic library constructed at the downstream of the niiA promoter, which induces the over-expression of an inserted DNA fragment, we have attempted to screen the genes affecting growth or development by over-expression. The wild-type strain was transformed using the AMA-niiA(p) library and cultured on 1.2 M sorbitol media, in which asexual sporulation is induced, but sexual development is repressed. Over 100,000 strains transformed to $pyrG^+$ were analyzed with regard to any changes in phenotype. Consequently, seven strains were isolated for further analyses. These strains were designated NOT [niiA(p) over-expression transformants] stains. Four of the strains were of the inducible type, and the remaining strains were of the multi-copy suppression type. Two of the inducible-type strains, NOT 1 and NOT40, harbored genes which had been inserted in reverse direction, suggesting that the mutant phenotypes had been derived from an excess amount of anti-sense mRNA. Domain analyses of the deduced polypeptides from the DNA fragments rescued from the transformants revealed that NOT1, NOT40 and NOT6 harbored a LisH motif, a forkhead domain, and a $Zn(II)_2Cys_6$ binuclear zinc cluster, respectively.
Polymerase chain reaction(PCR) was conducted to obtain the gene encoding glucose oxidase(GOD) from Aspergillus niger(ATCC 2110) and the DNA sequence determined was coincided with published GOD sequence from A. niger. Recombinant transforming vector containing GOD and hygromycin B(hyg.B) resistant gene(hph) was constructed and used for further transformation of A. niger ATCC 2110. Selectivity of hyg.B against A. niger differed depending on which media were used i.e., nutrient-rich media such as potato dextrose agar(PDA) and complete medium(CM) showed only 50% growth inhibition at 400 $\mu$m ml$^-1$ of hyg.B while the minimal media inhibited mycelial growth completely at 200 $\mu$m ml$^-1$ of hyg.B. Twenty to sixty putative transformants were isolated from the hyg.B-containing minimal top agar, transferred successively onto alternating selective and nonselective media for a mitotic stability of hyg.B resistance and, then, single-spored. Among the stable transformants, the transformant(GOD1-6) grown by flask culture showed the considerable increase of extracellular GOD activity, which was estimated to the degree of 50% - 100% comparing to that of wild type. Transformation of tGOD1-6 was resulted from integration of the vectors into heterologous as well as homologous regions of the A. niger genome. Southern blot analysis revealed that there were two independent integrations of vector into fungal genome and one into the GOD gene due to homologous recombination. In addition, GOD activity and sodium gluconate production when tGOD1-6 was fed-batch fermented were enhanced 11 fold and 2.25 fold, respectively, compared to that of the wild type.
This experiment was undertaken to investigate proper conditions for protoplast isolation and genetic transformation of the white rot fungi, Polyporus brumalis. The protoplasts were formed from mycelia at a frequency of $1{\times}10^7/ml$ with 0.5% Usukizyme. The transformation vector (pHYgpt) was constructed using hygromycin resistance gene (hph) for the selectable maker. The yield was 100-160 transformants/${\mu}g$ DNA in a transformation mediated by 40% polyethylene glycol solution with aurintricarboxylic acid, heparin and supermidine. The genomic integration of the pHYgpt was confirmed by hph-specific PCR and the expected amplified band appeared only in the transformants. These results could be an efficient tool in gene engineering of the genus polyporus.
Park, Dong-Chul;Kim, Hyun-Jeong;Kim, Ok-Mi;Bae, Jun-Tae;Park, Sun-Hee;Lee, Byeung-Hun;Lee, Kap-Rang
The Korean Journal of Mycology
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v.26
no.1
s.84
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pp.103-107
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1998
The trp2 gene encoding trifunctional enzyme in Coprinus cinereus was investigated the expression in the heterothallic mushroom species. To identify the homology of trp2 gene to Schizophyllum commune and Pleurotus ostreatus, southern hybridization was performed with plasmid pHIONA8 containing C. cinereus trp2 gene as a probe, which resulted in a strong signal indicating an homologous sequence to the chromosomal DNA of S. commune. About 50 transformants per dish was appeared in the complementation test by pHIONA8 using S. commune tryptophan auxotroph as host. In the mating test between transformants and other mating type alleles, the fruiting body of S. commune was formed at $30^{\circ}C$ in $2{\sim}3$ weeks.
Cotyledon explants of lettuce were cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404::pBKS-GR1 harboring glutathione reductase(GR) gene in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 1.0 mg/L 2ip for 48 hr. These explants were transferred to MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 1.0 mg/L 2ip, 50 mg/L kanamycin, and 500 mg/L carbenicillin. After 4 weeks of subculture, kanamycin-resistant shoots were obtained on selection medium. Leaves of putative transformants survived on selection medium containing 100 mg/L kanamycin. Incoporation of the GR gene into lettuce was confirmed by PCR analysis of genomic DNA. Southern blot analysis showed that ECL-labeled GR gene was hybridized to the expected amplified genomic DNA fragment of about 1.8 kb from transgenic lettuce. The presence of mRNA in transgenic lettuce was confirmed by RT-PCR with total RNA of transgenic lettuce. In progeny test of transformants, R$_1$ seeds were resistant to kanamycin (200mg/L) on MS medium.
The $11{\alpha}$-hydroxylation of $16{\alpha}$, 17-epoxyprogesterone (EP) catalyzed by Rhizopus nigricans is crucial for the steroid industry. However, lower conversion rate of the biohydroxylation restricts its potential industrial application. The $11{\alpha}$-steroid hydroxylase CYP509C12 from R. oryzae were reported to play a crucial role in the $11{\alpha}$-hydroxylation in recombinant fission yeast. In the present study, the CYP509C12 of R. oryzae (RoCYP) was introduced into R. nigricans using the liposome-mediated mycelial transformation. Heterologous expression of RoCYP resulted in increased fungal growth and improved intracellular reactive oxygen species content in R. nigricans. The $H_2O_2$ levels in RoCYP transformants were approximately 2-folder that of the R. nigricans wild type (RnWT) strain, with the superoxide dismutase activities increased approximately 45% and catalase activities decreased approximately 68%. Furthermore, the $11{\alpha}$-hydroxylation rates of EP in RoCYP transformants (C4, C6 and C9) were 39.7%, 38.3% and 38.7%, which were 12.1%, 8.2% and 9.4% higher than the rate of the RnWT strain, respectively. This paper investigated the effect of heterologous expression of RoCYP in R. nigricans, providing an effective genetic method to construct the engineered strains for steroid industry.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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