The transfer of plasmid-borne genes coding for resistance to antibiotics (Ampicillin, Carbenicillin, and tetracycline) among 16 strains isolated from Mankyong River was examined. The survival of donors, recipient, and transformants in sterile and nonsterile soil (the soil was amended with 12% vol/vol with the clay mineral, montmorillonite) was also studied. In sterile soil, the survival was prolonged in the order of donors, transformants, and recipient. The survival of donors, transformants, and recipient increased when the soil was amended with 12% montmorillonite, but not in nonsterile soil. In nonsterile soil, donors survived longer than transformants and recipient, but the survival of transformants and recipient showed no significant differences. The results of these studies suggest that genes can be transferred by transformation, and transferred genes can survive in soil for a considerable time.
To investigate the nature and location of the nisin-resistance determinant of Lactococcus lactis subsp. lactis 7962 (L. lactis 7962), a total plasmid DNA prepared from L. lactis 7962, a nisin producer, was used to transform L. lactis subsp. lactis LM0230, a plasmid-free and nisin-sensitive strain, by protoplast mediated transformation procedures. All of the nisin-resistant transformants acquired the ability to utilize sucrose at the same time, confirming the close linkage between these two determinants in L. lactis 7962. The plasmid DNA profiles of a few selected nisin-resistant transformants were examined by agarose gel electrophoresis. No common plasmid was found among the transformants and some small plasmids previously not present in L. lactis 7962 were detected. These transformants were named as L. lactis KL1, KL2, KL3, KL4, or KL5, respectively based on their plasmid profiles. Growth curves of all transformants were similar to that of L. lactis LM0230, but different from that of L. lactis 7962. L. lactis KL5 showed the highest level of resistance to nisin, growing up to 1, 200 IU nisin/ml after 40 hr incubation. Some nisin-sensitive derivatives of KL1 or KL2 were obtained by plasmid curing experiments. The plasmid DNA profiles of the nisin-sensitive KL1 derivatives were apparently the same as that of the KL1. All of the nisin-sensitive KL2 derivatives were plasmid-free, but a nisin-resistant strain with no apparent plasmid was also obtained. These results indicate that the nisin-resistance of the $Nis^r$ transformants is presumably mediated by the chromosomally located gene(s) rather than plasmid-encoded gene(s).
Deo Vipin Kumar;Kato Tatsuya;Asari Naoko;Park Enoch Y.
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.10
no.3
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pp.275-279
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2005
Insect cell transformants, stably expressing human $GFP_{uv}-{\beta}1$, 3-N-acetylglucosaminyltransferase 2 $({\beta}3GnT2)$ as the green fluorescent protein $(GFP_{uv})-fused$ protein, were efficiently isolated on Western blot by the quantification of the densitometric intensity of the fusion protein. From almost 150 transformants containing the fusion gene linked to three different types of signal sequence, two transformants, Tn-pXme4a and -pX28a, were successfully selected, showing 8.3 and 8.6 mU/mL ${\beta}3GnT$ activity, respectively. This method requires a screening time almost one-half that required in the isolation of stably transformed cells with high expression levels, and at the same time allows the handling a large number of transformants.
Yi, Jung Yoon;Seo, Hyo Won;Yun, Song Joong;Ok, HyunChoong;Park, YoungEun;Cho, Ji Hong;Cho, HyunMook
Korean Journal of Breeding Science
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v.41
no.4
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pp.385-390
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2009
A resveratrol synthase (RS) gene was isolated from peanut (Arachis hypogaea, L. cv. Jinpoong) plants. This gene was placed under the control of the cauliflower mosaic virus 35S promoter (CaMV35S) and introduced into two Korean varieties of potato (Solanum tuberosum L. cvs. Jasim and Jowon) plants by Agrobacterium-mediated gene transfer. Putative transformants were screened by PCR with primers designed from CaMV 35S promoter, NOS terminator and RS gene. Most of selected transgenic potato plants showed the amplification of expected fragments by PCR of genomic DNA with gene-specific primers, while they were absent in untransformed control plants. Expression of the resveratrol synthase gene was also examined by northern blot analysis. The transformants showed a band which was lacking in the control plant, confirming that the introduced gene is transcribed into mRNA in the transformants. The strength of the band, which reflected the level of mRNA expression, differed among the individual transformants. Among the transformants obtained, the highest trans-resveratrol content in the transgenic young leaves of purple-fleshed "Jashim" was $2.11{\mu}gg^{-1}$ fresh weight and that in the microtubers in vitro of purple fleshed "Jashim" was $8.31{\mu}gg^{-1}$ fresh weight. This amount of resveratrol may have a positive biological effect on human health.
Aspergillus oryzae is a filamentous fungus classified in the group Aspergillaceae Ascomycetes. It is an important microorganism for industrial production of enzymes and fermented food productions. The genetic transformation system in A. oryzae was used to protoplast mediated transformation with PEG/$CaCl_2$. When the protoplast was used, the regeneration efficiency was decreased and then transformation frequence was also effected. In this study, fungal transformation was carried out by bypassing the protoplast isolation step, changing enzymes, such as hemicellulase and celluclast, and decreasing the culturing time for the increment of the transformation efficiency. 83 transformants/10ug of DNA with hemicellulase were obtained, compared with less than 10 transformants with novozyme234 and celluclast.
In order to study the effect of the receptor protein (SeaR), which is isolated from Saccharopolyspora erythraea, we introduced the SeaR gene to Streptomyces virginiae as host strains. An effective transformation procedure for S. virginiae was established based on transconjugation by Escherichia coli ET12567/pUZ8002 with a ${\varphi}C31$-derived integration vector, pSET152, which contained int, oriT, attP, and $ermEp^{\ast}$ (erythromycin promotor). Therefore, the pEV615 was introduced into S. virginiae by conjugation and integrated at the attB locus in the chromosome of the recipients by the ${\varphi}C31$ integrase (int) function. Transformants of S. virginiae containing the SeaR gene were confirmed by PCR and transcriptional expression of the SeaR gene in the transformants was analyzed by RT-PCR, respectively. And, we examined the production time of virginiamycins in the culture media of both the transformants and the wild type. The production time of virginiamycins in the wild type and transformants was the same. When 100 ng/ml of synthetic $VB-C_6$ was added to the state of 6 or 8 hour cultivation of wild type and transformants, respectively, the virginiamycins production was induced, meaning that the virginiamycins production in the wild type was detected 2 h early than transformants. From these results, SeaR expression was also affected to virginiamycins production in transformants derived from S. virginiae. In this study, we showed that the SeaR protein worked as a repressor in transformants.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.07a
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pp.79-84
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1999
Oxidative stress is one of the major environmental stresses to plants. Reactive oxygen species (ROS) generated during metabolic processes damage cellular functions and consequently lead to cell death. Fortunately plants have in vivo defense system by which the ROS is scavenged by enzymes such as superoxide dismutase (SOD) and ascorbate peroxidase (APX). In attempts to understand the protection mechanism of plant against oxidative stress, we developed transgenic tobacco (Nicotiana tabacum cv. Xanthi) plansts thet expressed both SOD and APX in chloroplast using Agrobacterum-mediated transformation and evaluated their protection capabilities against methyl viologen (MV, paraquat) -mediated oxidative damage. Three double transformants (CAI, CA2, and CA3) expressed the chimeric CuZnSOD and chimeric APX in chloroplast, and one transformant (AM) expressed the chimeric APX and chimeric MnSOD in chloroplast. In addition, we obtained three lines of transformants (C/Al, C/A2, and A/C) that expressed the APX and SOD than control plants, and more resistant to oxidative stress caused by MV. TRansformants (C/A and A/C) overexpressing MnSOD, CuZnSOD and APX at the same time showed the highest resistance to MV-mediated oxidative stress among the transformants.
In the post-genomic era, gene function analysis has attracted much attention. Transformation is often needed to investigate gene function. In this study, an easy, rapid, reliable, and cost-effective colony polymerase chain reaction (PCR) method for screening mushroom transformants was developed: picking up a suitable amount of transformant's tissue ($1-10{\mu}g$) to $20{\mu}l$ 0.25% Lywallzyme solution, and vortexing for 10 s followed by incubation at $34^{\circ}C$ for 15 min. Finally, $2{\mu}l$ of the suspension was used as templates to perform PCR and single target bands were successfully amplified from respective transformants of Tremella fuciformis, Pleurotus ostreatus, and Pleurotus tuber-regium. This procedure could be widely employed for screening transformants in mushroom transformation experiments.
We previously identified the rice gene, OsSAP, as an encoder of a highly conserved putative senescence-associated protein that was shown to have anti-apoptotic activity. To confirm the role of OsSAP in inducing abiotic stress tolerance in rice, we introduced OsSAP and AtBI-1, a plant homologue of Bax inhibitor-1, under the control of the CaMV 35S promoter into the rice genome through Agrobacterium-mediated transformation. The OsSAP transformants showed a similar chlorophyll index after salinity treatments with AtBI-1. Furthermore, we compared the effects of salinity stress on leaves and roots by examining the hormone levels of abscisic acid (ABA), jasmonic acid (JA), gibberellic acid (GA3), and zeatin in transformants compared to the control. With the exception of phytohormones, stress-induced changes in hormone levels putatively related to stress tolerance have not been investigated previously. Hormonal level analysis confirmed the lower rate of stress in the transformants compared to the control. The levels of ABA and JA in OsSAP and AtBI-1 transformants were similar, where stress rates increased after one week and decreased after a two week period of drought; there was a slightly higher accumulation compared to the control. However, a similar trend was not observed for the level of zeatin, as the decrease in the level of zeatin accumulation differed in both OsSAP and AtBI-1 transformants for all genotypes during the early period of salinity stress. The GA3 level was detected under normal conditions, but not under salinity stress.
Jeong, Min-Hye;Kim, Jung A.;Kang, Seogchan;Choi, Eu Ddeum;Kim, Youngmin;Lee, Yerim;Jeon, Mi Jin;Yu, Nan Hee;Park, Ae Ran;Kim, Jin-Cheol;Kim, Soonok;Park, Sook-Young
Mycobiology
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v.49
no.5
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pp.491-497
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2021
An endolichenic fungus Xylaria grammica EL000614 produces grammicin, a potent nematicidal pyrone derivative that can serve as a new control option for root-knot nematodes. We optimized an Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation (ATMT) protocol for X. grammica to support genetic studies. Transformants were successfully generated after co-cultivation of homogenized young mycelia of X. grammica with A. tumefaciens strain AGL-1 carrying a binary vector that contains the bacterial hygromycin B phosphotransferase (hph) gene and the eGFP gene in T-DNA. The resulting transformants were mitotically stable, and PCR analysis showed the integratin of both genes in the genome of transformants. Expression of eGFP was confirmed via fluorescence microscopy. Southern analysis showed that 131 (78.9%) out of 166 transformants contained a single T-DNA insertion. Crucial factors for producing predominantly single T-DNA transformants include 48 h of co-cultivation, pretreatment of A. tumefaciens cells with acetosyringone before co-cultivation, and using freshly prepared mycelia. The established ATMT protocol offers an efficient tool for random insertional mutagenesis and gene transfer in studying the biology and ecology of X. grammica.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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