The aim of the present work was to examine the putative promoter region of the operon ansPAB and to determine the general elements required for the regulation of transcriptional activity. The transcriptional start site of the ansPAB promoter was determined by using highresolution S1-nuclease mapping. Sequence analysis of this region showed -10 and -35 elements, which were consistent with consensus sequences for R. etli promoters that are recognized by the major form of RNA polymerase containing the σ70 transcription factor. Mutation studies affecting several regions located upstream of the transcriptional start site confirmed the importance of these elements on transcriptional expression.
The fission yeast Schizosaccharomyces pombe contains two distinct superoxide dismutase (SOD) activities, one in the cytosol encoded by the $sod2^{+}$ gene and the other in mitochondria. The $sod2^{+}$ gene encoding putative mitochondrial manganese superoxide dismutase (MnSOD) was isolated from the S. pombe genomic library using a PCR fragment as the probe. The nucleotide sequence of the $sod2^{+}$ gene and its flanking region (4051 bp HindIII fragment) was determined. An intron of 123 nt in size was predicted and confirmed by sequencing the cDNA following reverse transcription PCR. The predicted Sod2p consists of 218 amino acid residues with a molecular mass of 24,346 Da. The deduced amino acid sequence showed a high degree of homology with other MnSODs, especially in the metal binding residues at the active site and their relative positions. The transcriptional start site was mapped by primer extension at 231 at upstream from the ATG codon. A putative TATA box(TATAAAA) was located 58 nt upstream from the transcriptional start site and putative polyadenylation sites were located at 1000, 1062, and 1074 nt downstream from the ATG start codon.
PARK JAE-YONG;PARK JIN-SIK;KIM JONG-HWAN;JEONG SEON-JU;CHUN JIYEON;LEE JONG-HOON;KIM JEONG HWAN
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.15
no.4
/
pp.749-755
/
2005
The ccpA gene encoding catabolite control protein A (CcpA) of Leuconostoc mesenteroides SYl, a strain isolated from kimchi, was cloned, sequenced, analyzed for transcript, and overexpressed in Escherichia coli. The ccpA ORF (open reading frame) is 1,011 bp in size, which can encode a protein of 336 amino acid residues with a molecular mass of 36,739 Da. The transcription start site was mapped at a position 49 nucleotides upstream of the start codon, and promoter sequences were also identified. The putative cre site overlapped with the -35 promoter sequence. The deduced amino acid sequence of the CcpA contained the helix-turn-helix motif found in many DNA-binding regulatory proteins. CcpA from 1. mesenteroides SY1 had $54.6\%$ identity with CcpA from Lactobacillus casei. The Northern blot experiment showed that ccpA was transcribed as a single 1.1 kb transcript, and transcription was repressed when grown on media containing glucose. CcpA was overproduced in E. coli BL21(DE3) cells using the pET expression vector, and purified to an apparent homogeneity. Gel Mobility Shift Assay with purified CcpA and a DNA fragment containing the ere sequence of the $\alpha$-galactosidase gene (aga) from L. mesenteroides SY1 revealed that CcpA bound specifically to the cre site of aga.
Objective: Nanog, a homeodomain protein, has been investigated in humans and mice using embryonic stem cells (ESCs). Because of the limited availability of ESCs, few studies have reported the function and role of Nanog in porcine ESCs. Therefore, in this study, we investigated the location of the porcine Nanog chromosome and its basal promoter activity, which might have potential applications in development of ESCs specific marker as well as understanding its operating systems in the porcine. Methods: To characterize the porcine Nanog promoter, the 5'-flanking region of Nanog was isolated from cells of mini-pig ears. BLAST database search showed that there are two porcine Nanog genomic loci, chromosome 1 and 5, both of which contain an exon with a start codon. Deletion mutants from the 5'-flanking region of both loci were measured using the Dual-Luciferase Reporter Assay System, and a fluorescence marker, green fluorescence protein. Results: Promoter activity was detected in the sequences of chromosome 5, but not in those of chromosome 1. We identified the sequences from -99 to +194 that possessed promoter activity and contained transcription factor binding sites from deletion fragment analysis. Among the transcription factor binding sites, a Sp1 was found to play a crucial role in basal promoter activity, and point mutation of this site abolished its activity, confirming its role in promoter activity. Furthermore, gel shift analysis and chromatin immunoprecipitation analysis confirmed that Sp1 transcription factor binds to the Sp1 binding site in the porcine Nanog promoter. Taken together, these results show that Sp1 transcription factor is an essential element for porcine Nanog basal activity the same as in human and mouse. Conclusion: We showed that the porcine Nanog gene is located on porcine chromosome 5 and its basal transcriptional activity is controlled by Sp1 transcription factor.
To understand the tissue specific expression pattern of S RNase genes associated with self-incompatibility in L. peruvianum, two promoter regions of $S_{11}$ and $S_{12}$ RNase genes were compared. Homologous sequences between two S RNase gene promoters were found within 300 bp upstream of transcription start site. Moreover short direct repeat sequences within $S_{11}$ RNase gene promoter existed in the vicinity of 350-500 bp upstream of transcription start site. To identify whether the unique promoter sequences of $S_{11}$ RNase gene confer the tissue specific expression, six deletion fragments for $S_{11}$ genomic gene promoter constructed by PCR were fused to $\beta$-glucuronidase gene, and introduced into various tissues of L. peruvianum by microprojectile bombardment. Transient expression assays indicated that $S_{11}$ RNase gene promoter contained the positive and negative regulatory sequences, which can control the floral tissue-specific expression in L. peruvianum.
Kang Nam-Young;Kim Sang-Wan;Kim Cheorl-Ho;Lee Young-Choon
Journal of Life Science
/
v.14
no.6
s.67
/
pp.1009-1017
/
2004
Sialyltransferases cloned so far show the remarkable tissue-specific expression, which is correlated with the existence of cell type-specific sialylated sugar structure in glycoconjugates. In the previous studies, we found various mRNA isoforms of human sialyltransferases generated by alternative splicing and alternative promoter utilization. To understand the regulatory mechanisms for specific expression of human sialyltransferase genes and for production of their mRNA isoforms, in this study, we have isolated and characterized five kinds of human sialyltransferase genes: hST3Gal II, hST8Sia II, hST8Sia III, hST8Sia IV, and hST8Sia V. The hST3Gal II gene is composed of six exons, which span over 17kb, with exons ranging in size from 46 to over 1017 bp. The hST8Sia III gene comprises over 10 kb, and consists of only four exons, which is much smaller and simpler than other human sialyltransferase genes. In contrast, three genes (hST8Sia II, hST8Sia IV and hST8Sia V) span more than 70 kb, and comprise five or more exons. All exon-intron boundaries follow the GT-AG rule. In particular, the sialylmotif L, which is a highly conserved region in all cloned sialyltransferases, was found in one exon of hST8Sia III, whereas this motif is encoded by discrete exons in the other human sialyltransferases. Exon structures of these sialyltransferase genes show the structural diversity, as found in other human sialyltransferase genes reported so far. We determined the transcription start site of hST3Gal II gene by the 5'-RACE and cap site hunting experiments.
The xylA gene of Bacillus stearothermophilus No. 236 encoding $\beta$-xylosidase was cloned and sequenced previously. The transcriptional start site of the xylA gene cloned in E. coli was identified to be the guanine (G) by primer extension analysis. This supports that the expression of xylA gene is also directed in the E. coli cells by the previously determined transcription initiation signals, -10 sequence (CATAAT) and -35 sequence (TTGTTA) separated by 12 bp. To increase the expression of $\beta$-xylosidase, firstly the spacer region of xylA promoter was extended from 12 to 17 bp, and then the -10 and -35 elements were converted into their respective consensus sequences. The mutant promoters thus obtained were tested for their activities in both the E. coli and B. subtilis host cells. The change of the length of the spacer region from 12 to 17 bp resulted in a 1.6- and 2.5-fold increase in promoter strength in comparison with the wild type promoter in E. coli and B. subtilis cells, respectively. Also, strength of the promoter with the fourth T to A transversion on its -35 element increased in the transcription level by about 35 times compared with that of wild-type promoter. However, surprisingly the 5' end C-to-T transition of the -10 hexamer showed a 5- to 15-fold reduction in $\beta$-xylosidase activity in both E. coli and B. subtilis. Together, the present data demonstrated that the 5' end nucleotide C of the -10 sequence CATAAT and the fourth nucleotide A of the -35 hexamer are two most critical nucleotides for the promoter activity in the context of the xylA promoter.
We screened promoters inducible by superoxide radical from Escherichia coli. For this. we constructed random promoter library from E. coli MG 1655 using a promoter-probing plasmid. pJAC4. Six hundred and sixty clones in this library were classified based on their promoter strength by ampicillin gradient plate assay. Three hundred and eighty three clones with relatively weak to medium promoter strength were selected and then screened for their inducibility by superoxide radical on ampicillin gradient plate containing paraquat. Three clones (clones 5. 15 and 34) were detected to be induced by paraquat treatment and the level of induction were between 1.4 and 4 folds. Comparison of nucleotide sequences of the cloned promoter fragment with registered sequences in GENBANK and EMBL databases suggests that the cloned DNA fragments have not been yet characterized in E. coli. Transcription start sites in these clones were determined by rrimer extension and S I nuclease protection analysis. S 1 analysis of clones 5 and IS indicated that the mRNA levels were increased by paraquat treatment. Especially. clone 5 \vas found to have two transcription start sites. the upstream start site of which was selectively used by paraquat treatment. Searching for promoter clements. we found that only the downstream promoter of clone 5 has -10 and - 35 promoter elements recognized by RNA polymerase ($E\sigma^{70}$) and the others have no conserved promoter elements. This suggests that these superoxideinducible promoters may require transcription initiation protein(s) other than $E\sigma^{70}$.
The yeast three-hybrid system (Y3H), a powerful method for identifying RNA-binding proteins, still suffers from many false positives, due mostly to RNA-independent interactions. In this study, we attempted to efficiently identify false positives by introducing a tetracycline operator (tetO) motif into the RPR1 promoter of an RNA hybrid expression vector. We successfully developed a tight tetracycline-regulatable RPR1 promoter variant containing a single tetO motif between the transcription start site and the A-box sequence of the RPR1 promoter. Expression from this tetracycline-regulatable RPR1 promoter in the presence of tetracycline-response transcription activator (tTA) was positively controlled by doxycycline (Dox), a derivative of tetracycline. This on-off control runs opposite to the general knowledge that Dox negatively regulates tTA. This positively controlled RPR1 promoter system can therefore efficiently eliminate RNA-independent false positives commonly observed in the Y3H system by directly monitoring RNA hybrid expression.
본 웹사이트에 게시된 이메일 주소가 전자우편 수집 프로그램이나
그 밖의 기술적 장치를 이용하여 무단으로 수집되는 것을 거부하며,
이를 위반시 정보통신망법에 의해 형사 처벌됨을 유념하시기 바랍니다.
[게시일 2004년 10월 1일]
이용약관
제 1 장 총칙
제 1 조 (목적)
이 이용약관은 KoreaScience 홈페이지(이하 “당 사이트”)에서 제공하는 인터넷 서비스(이하 '서비스')의 가입조건 및 이용에 관한 제반 사항과 기타 필요한 사항을 구체적으로 규정함을 목적으로 합니다.
제 2 조 (용어의 정의)
① "이용자"라 함은 당 사이트에 접속하여 이 약관에 따라 당 사이트가 제공하는 서비스를 받는 회원 및 비회원을
말합니다.
② "회원"이라 함은 서비스를 이용하기 위하여 당 사이트에 개인정보를 제공하여 아이디(ID)와 비밀번호를 부여
받은 자를 말합니다.
③ "회원 아이디(ID)"라 함은 회원의 식별 및 서비스 이용을 위하여 자신이 선정한 문자 및 숫자의 조합을
말합니다.
④ "비밀번호(패스워드)"라 함은 회원이 자신의 비밀보호를 위하여 선정한 문자 및 숫자의 조합을 말합니다.
제 3 조 (이용약관의 효력 및 변경)
① 이 약관은 당 사이트에 게시하거나 기타의 방법으로 회원에게 공지함으로써 효력이 발생합니다.
② 당 사이트는 이 약관을 개정할 경우에 적용일자 및 개정사유를 명시하여 현행 약관과 함께 당 사이트의
초기화면에 그 적용일자 7일 이전부터 적용일자 전일까지 공지합니다. 다만, 회원에게 불리하게 약관내용을
변경하는 경우에는 최소한 30일 이상의 사전 유예기간을 두고 공지합니다. 이 경우 당 사이트는 개정 전
내용과 개정 후 내용을 명확하게 비교하여 이용자가 알기 쉽도록 표시합니다.
제 4 조(약관 외 준칙)
① 이 약관은 당 사이트가 제공하는 서비스에 관한 이용안내와 함께 적용됩니다.
② 이 약관에 명시되지 아니한 사항은 관계법령의 규정이 적용됩니다.
제 2 장 이용계약의 체결
제 5 조 (이용계약의 성립 등)
① 이용계약은 이용고객이 당 사이트가 정한 약관에 「동의합니다」를 선택하고, 당 사이트가 정한
온라인신청양식을 작성하여 서비스 이용을 신청한 후, 당 사이트가 이를 승낙함으로써 성립합니다.
② 제1항의 승낙은 당 사이트가 제공하는 과학기술정보검색, 맞춤정보, 서지정보 등 다른 서비스의 이용승낙을
포함합니다.
제 6 조 (회원가입)
서비스를 이용하고자 하는 고객은 당 사이트에서 정한 회원가입양식에 개인정보를 기재하여 가입을 하여야 합니다.
제 7 조 (개인정보의 보호 및 사용)
당 사이트는 관계법령이 정하는 바에 따라 회원 등록정보를 포함한 회원의 개인정보를 보호하기 위해 노력합니다. 회원 개인정보의 보호 및 사용에 대해서는 관련법령 및 당 사이트의 개인정보 보호정책이 적용됩니다.
제 8 조 (이용 신청의 승낙과 제한)
① 당 사이트는 제6조의 규정에 의한 이용신청고객에 대하여 서비스 이용을 승낙합니다.
② 당 사이트는 아래사항에 해당하는 경우에 대해서 승낙하지 아니 합니다.
- 이용계약 신청서의 내용을 허위로 기재한 경우
- 기타 규정한 제반사항을 위반하며 신청하는 경우
제 9 조 (회원 ID 부여 및 변경 등)
① 당 사이트는 이용고객에 대하여 약관에 정하는 바에 따라 자신이 선정한 회원 ID를 부여합니다.
② 회원 ID는 원칙적으로 변경이 불가하며 부득이한 사유로 인하여 변경 하고자 하는 경우에는 해당 ID를
해지하고 재가입해야 합니다.
③ 기타 회원 개인정보 관리 및 변경 등에 관한 사항은 서비스별 안내에 정하는 바에 의합니다.
제 3 장 계약 당사자의 의무
제 10 조 (KISTI의 의무)
① 당 사이트는 이용고객이 희망한 서비스 제공 개시일에 특별한 사정이 없는 한 서비스를 이용할 수 있도록
하여야 합니다.
② 당 사이트는 개인정보 보호를 위해 보안시스템을 구축하며 개인정보 보호정책을 공시하고 준수합니다.
③ 당 사이트는 회원으로부터 제기되는 의견이나 불만이 정당하다고 객관적으로 인정될 경우에는 적절한 절차를
거쳐 즉시 처리하여야 합니다. 다만, 즉시 처리가 곤란한 경우는 회원에게 그 사유와 처리일정을 통보하여야
합니다.
제 11 조 (회원의 의무)
① 이용자는 회원가입 신청 또는 회원정보 변경 시 실명으로 모든 사항을 사실에 근거하여 작성하여야 하며,
허위 또는 타인의 정보를 등록할 경우 일체의 권리를 주장할 수 없습니다.
② 당 사이트가 관계법령 및 개인정보 보호정책에 의거하여 그 책임을 지는 경우를 제외하고 회원에게 부여된
ID의 비밀번호 관리소홀, 부정사용에 의하여 발생하는 모든 결과에 대한 책임은 회원에게 있습니다.
③ 회원은 당 사이트 및 제 3자의 지적 재산권을 침해해서는 안 됩니다.
제 4 장 서비스의 이용
제 12 조 (서비스 이용 시간)
① 서비스 이용은 당 사이트의 업무상 또는 기술상 특별한 지장이 없는 한 연중무휴, 1일 24시간 운영을
원칙으로 합니다. 단, 당 사이트는 시스템 정기점검, 증설 및 교체를 위해 당 사이트가 정한 날이나 시간에
서비스를 일시 중단할 수 있으며, 예정되어 있는 작업으로 인한 서비스 일시중단은 당 사이트 홈페이지를
통해 사전에 공지합니다.
② 당 사이트는 서비스를 특정범위로 분할하여 각 범위별로 이용가능시간을 별도로 지정할 수 있습니다. 다만
이 경우 그 내용을 공지합니다.
제 13 조 (홈페이지 저작권)
① NDSL에서 제공하는 모든 저작물의 저작권은 원저작자에게 있으며, KISTI는 복제/배포/전송권을 확보하고
있습니다.
② NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 상업적 및 기타 영리목적으로 복제/배포/전송할 경우 사전에 KISTI의 허락을
받아야 합니다.
③ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 보도, 비평, 교육, 연구 등을 위하여 정당한 범위 안에서 공정한 관행에
합치되게 인용할 수 있습니다.
④ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 무단 복제, 전송, 배포 기타 저작권법에 위반되는 방법으로 이용할 경우
저작권법 제136조에 따라 5년 이하의 징역 또는 5천만 원 이하의 벌금에 처해질 수 있습니다.
제 14 조 (유료서비스)
① 당 사이트 및 협력기관이 정한 유료서비스(원문복사 등)는 별도로 정해진 바에 따르며, 변경사항은 시행 전에
당 사이트 홈페이지를 통하여 회원에게 공지합니다.
② 유료서비스를 이용하려는 회원은 정해진 요금체계에 따라 요금을 납부해야 합니다.
제 5 장 계약 해지 및 이용 제한
제 15 조 (계약 해지)
회원이 이용계약을 해지하고자 하는 때에는 [가입해지] 메뉴를 이용해 직접 해지해야 합니다.
제 16 조 (서비스 이용제한)
① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.