Background: Single nucleotide polymorphisms (SNPs) occurring in Toll-like receptors (TLRs) may contribute to cancer risk. Many polymorphisms of TLR2 have been studied for associations, but the findings are conflicting. Methodology/Principal Findings: We performed a meta-analysis of 14 studies to confirm the association between TLR2+597T>C (rs3804099), +1350C>T (rs3804100) and Arg753Gln (rs5743708) polymorphisms and cancer risk. Odds ratio (OR) and 95% confidence intervals (95% CI) were used to assess the strength of associations. There was no significant association between TLR2+597T>C and cancer risk in the codominant models (CC vs. TT: OR = 1.01, 95%CI = 0.86-1.17, $P_{heterogeneity}=0.148$; CT vs. TT: OR = 0.92, 95%CI = 0.69-1.23, $P_{heterogeneity}$ < 0.001), the recessive model (CC vs. CT+TT: OR = 0.86, 95%CI = 0.67-1.10, $P_{heterogeneity}=0.007$), the dominant model (CC+CT vs. TT: OR = 0.93, 95%CI = 0.76-1.15, $P_{heterogeneity}=0.001$) and the allele model (C vs. T: OR =0.93, 95%CI = 0.81-1.08, $P_{heterogeneity}=0.019$). Similarly, no significant associations between TLR2+1350C>T, Arg753Gln polymorphisms and cancer risk were found. However, in the sub-group analysis of ethnicities, the trend of pooled ORs in Asians was opposite to Caucasians. Conclusions: The present meta-analysis suggests that TLR2+597T>C (rs3804099), +1350C>T (rs3804100) and Arg753Gln (rs5743708) polymorphisms are not associated with cancer risk.
Background: Toll-like receptors (TLRs) play a fundamental role in innate immunity through their capacity to recognize pathogen-associated molecular patterns. Also, TLRs that are expressed in T cells are reported to function as co-stimulatory receptors. However, the functional capacity of TLRs on CD4 T and CD8 T cells has not been directly compared. Here we compared CD4 and CD8 T cell responses to TLR2 ligand plus TCR-mediated stimulation. Methods: TLR2 expression was analyzed on T cell subsets under naive and alloantigen-primed conditions. We analyzed the effects of TLR2 co-stimulation on proliferation and survival of T cell subsets in vitro when stimulated with soluble anti-CD3 in the presence or absence of synthetic ligand $Pam_3CSK_4$. Results: TLR2 expression on CD8 T cells was induced following activation; this expression was much higher than on CD4 T cells. Thus, the molecule was constitutively expressed on Listeriaspecific memory CD8 T cells. Based on these expression levels, proliferation and survival were markedly elevated in CD8 T cells in response to the TLR2 co-stimulation by $Pam_3CSK_4$ compared with those in CD4 T cells. Conclusion: Our data show that TLR2 co-stimulation is more responsible for proliferation and survival of CD8 T cells than for that of CD4 T cells.
Herpes simplex virus types 1 and 2 (HSV-1 and HSV-2) are the most common cause of genital ulceration in humans worldwide. Typically, HSV-1 and 2 infections via mucosal route result in a lifelong latent infection after peripheral replication in mucosal tissues, thereby providing potential transmission to neighbor hosts in response to reactivation. To break the transmission cycle, immunoprophylactics and therapeutic strategies must be focused on prevention of infection or reduction of infectivity at mucosal sites. Currently, our understanding of the immune responses against mucosal infection of HSV remains intricate and involves a balance between innate signaling pathways and the adaptive immune responses. Numerous studies have demonstrated that HSV mucosal infection induces type I interferons (IFN) via recognition of Toll-like receptors (TLRs) and activates multiple immune cell populations, including NK cells, conventional dendritic cells (DCs), and plasmacytoid DCs. This innate immune response is required not only for the early control of viral replication at mucosal sites, but also for establishing adaptive immune responses against HSV antigens. Although the contribution of humoral immune response is controversial, $CD4^+$ Th1 T cells producing IFN-${\gamma}$ are believed to play an important role in eradicating virus from the hosts. In addition, the recent experimental successes of immunoprophylactic and therapeutic compounds that enhance resistance and/or reduce viral burden at mucosal sites have accumulated. This review focuses on attempts to modulate innate and adaptive immunity against HSV mucosal infection for the development of prophylactic and therapeutic strategies. Notably, cells involved in innate immune regulations appear to shape adaptive immune responses. Thus, we summarized the current evidence of various immune mediators in response to mucosal HSV infection, focusing on the importance of innate immune responses.
Schwann cells play an important role in peripheral nerve regeneration. Upon nerve injury, Schwann cells are activated and produce various proinflammatory mediators including IL-6, LIF and MCP-1, which result in the recruitment of macrophages and phagocytosis of myelin debris. However, it is unclear how the nerve injury induces Schwann cell activation. Recently, it was reported that necrotic cells induce immune cell activation via toll-like receptors (TLRs). This suggests that the TLRs expressed on Schwann cells may recognize nerve damage by binding to the endogenous ligands secreted by the damaged nerve, thereby inducing Schwann cell activation. To explore the possibility, we stimulated iSC, a rat Schwann cell line, with damaged neuronal cell extracts (DNCE). The stimulation of iSC with DNCE induced the expression of various inflammatory mediators including IL-6, LIF, MCP-1 and iNOS. Studies on the signaling pathway indicate that $NF-{\kappa}B$, p38 and JNK activation are required for the DNCE-induced inflammatory gene expression. Furthermore, treatment of either anti-TLR3 neutralizing antibody or ribonuclease inhibited the DNCE-induced proinflammatory gene expression in iSC. In summary, these results suggest that damaged neuronal cells induce inflammatory Schwann cell activation via TLR3, which might be involved in the Wallerian degeneration after a peripheral nerve injury.
Meso-dihydroguaiaretic acid (MDGA) is a medicinal herbal product isolated from the bark of Machilus thunbergii Sieb. et Zucc. (Lauraceae). It exhibits a neuroprotective effect and also exerts cytotoxicity to certain cancer cells. In the present study, we investigated whether or not MDGA inhibits inflammatory reaction through the inhibition of nitric oxide (NO) generation. The results showed that MDGA (5~$25 {\mu}M$) inhibited 100 ng/ml lipopolysaccharide (LPS)- induced NO generation in macrophage Raw 264.7 cells in a concentration-dependent manner. We also measured the cytotoxic effects of MDGA on Raw 264.7 cells and found no evidence of cytotoxicity. The inhibition of NO generation by MDGA was consistent with the inhibitory effect on the expression of inducible nitric oxide synthase (iNOS). In addition, MDGA inhibited the LPS-induced gene expression of $interleukin-1{\beta}$$(IL-1{\beta})$ as well as tumor necrosis $factor-{\alpha}$$(TNF-{\alpha})$. The present results may provide that MDGA has anti-inflammatory properties through inhibition of the toll-like receptors (TLRs) pathway, and suggest that MDGA can be used as an anti-inflammatory agent.
In Trichinella spiralis infection, type 2 helper T (Th2) cell-related and regulatory T ($T_{reg}$) cell-related immune responses are the most important immune events. In order to clarify which Toll-like receptors (TLRs) are closely associated with these responses, we analyzed the expression of mouse TLR genes in the small intestine and muscle tissue during T. spiralis infection. In addition, the expression of several chemokine- and cytokine-encoding genes, which are related to Th2 and $T_{reg}$ cell mediated immune responses, were analyzed in mouse embryonic fibroblasts (MEFs) isolated from myeloid differentiation factor 88 (MyD88)/TIR-associated proteins (TIRAP) and Toll receptor-associated activator of interferons (TRIF) adapter protein deficient and wild type (WT) mice. The results showed significantly increased TLR4 and TLR9 gene expression in the small intestine after 2 weeks of T. spiralis infection. In the muscle, TLR1, TLR2, TLR5, and TLR9 gene expression significantly increased after 4 weeks of infection. Only the expression of the TLR4 and TLR9 genes was significantly elevated in WT MEF cells after treatment with excretory-secretory (ES) proteins. Gene expression for Th2 chemokine genes were highly enhanced by ES proteins in WT MEF cells, while this elevation was slightly reduced in MyD88/$TIRAP^{-/-}$ MEF cells, and quite substantially decreased in $TRIF^{-/-}$ MEF cells. In contrast, IL-10 and $TGF-{\beta}$ expression levels were not elevated in MyD88/$TIRAP^{-/-}$ MEF cells. In conclusion, we suggest that TLR4 and TLR9 might be closely linked to Th2 cell and $T_{reg}$ cell mediated immune responses, although additional data are needed to convincingly prove this observation.
Respiratory syncytial virus (RSV) infection is recognized by the innate immune system through Toll like receptors (TLRs) and retinoic acid inducible gene I. These pathways lead to the activation of type I interferons and resistance to infection. In contrast to TLRs, very few studies have examined the role of NOD-like receptors in viral recognition and induction of adaptive immune responses to RSV. Caspase-1 plays an essential role in the immune response via the maturation of the proinflammatory cytokines IL-$1{\beta}$ and IL-18. However, the role of caspase-1 in RSV infection in vivo is unknown. We demonstrate that RSV infection induces IL-$1{\beta}$ secretion and that caspase-1 deficiency in bone marrow derived dendritic cells leads to defective IL-$1{\beta}$ production, while normal RSV viral clearance and T cell responses are observed in caspase-1 deficient mice following respiratory infection with RSV. The frequencies of IFN-${\gamma}$ producing or RSV specific T cells in lungs from caspase-1 deficient mice are not impaired. In addition, we demonstrate that caspase-1 deficient neonatal or young mice also exhibit normal immune responses. Furthermore, we find that IL-1R deficient mice infected with RSV exhibit normal Th1 and cytotoxic T lymphocytes (CTL) immune responses. Collectively, these results demonstrate that in contrast to TLR pathways, caspase-1 might not play a central role in the induction of Th1 and CTL immune responses to RSV.
The subgranular zone (SGZ) of hippocampal dentate gyrus (HDG) is a primary site of adult neurogenesis. Toll-like receptors (TLRs), are involved in neural system development of Drosophila and innate immune response of mammals. TLR2 is expressed abundantly in neurogenic niches such as adult mammalian hippocampus. It regulates adult hippocampal neurogenesis. However, the role of TLR2 in adult neurogenesis is not well studied in global or focal cerebral ischemia. Therefore, this study aimed to investigate the role of TLR2 in adult neurogenesis after photochemically induced cerebral ischemia. At 7 days after photothrombotic ischemic injury, the number of bromodeoxyuridine (BrdU)-positive cells was increased in both TLR2 knock-out (KO) mice and wild-type (WT) mice. However, the increment rate of BrdU-positive cells was lower in TLR2 KO mice compared to that in WT mice. The number of doublecortin (DCX) and neuronal nuclei (NeuN)-positive cells in HDG was decreased after photothrombotic ischemia in TLR2 KO mice compared to that in WT mice. The survival rate of cells in HDG was decreased in TLR2 KO mice compared to that in WT mice. In contrast, the number of cleaved-caspase 3 (apoptotic marker) and the number of GFAP (glia marker)/BrdU double-positive cells in TLR2 KO mice were higher than that in WT mice. These results suggest that TLR2 can promote adult neurogenesis from neural stem cell of hippocampal dentate gyrus through increasing proliferation, differentiation, and survival from neural stem cells after ischemic injury of the brain.
Our body's immune system has defense mechanisms against pathogens such as viruses and bacteria. Immune responses are primarily initiated by the activation of toll-like receptors (TLRs). In particular, TLR4 is well-characterized and is known to be activated by gram-negative bacteria and tissue damage signals. TLR4 requires myeloid differentiation factor 2 (MD2) as a co-receptor to recognize its ligand, lipopolysaccharides (LPS), which is an extracellular membrane component of gram-negative bacteria. Gambogic acid is a xanthonoid isolated from brownish or orange resin extracted from Garcinia hanburyi. Its primary effect is tumor suppression. Since inflammatory responses are related to the development of cancer, we hypothesized that gambogic acid may regulate TLR4 activation. Our results demonstrated that gambogic acid decreased the expression of pro-inflammatory cytokines ($TNF-{\alpha}$, IL-6, IL-12, and $IL-1{\beta}$) in both mRNA and protein levels in bone marrow-derived primary macrophages after stimulation with LPS. Gambogic acid did not inhibit the activation of Interferon regulatory factor 3 (IRF3) induced by TBK1 overexpression in a luciferase reporter gene assay using IFN-${\beta}$-PRD III-I-luc. An in vitro kinase assay using recombinant TBK1 revealed that gambogic acid did not directly inhibit TBK1 kinase activity, and instead suppressed the binding of LPS to MD2, as determined by an in vitro binding assay and confocal microscopy analysis. Together, our results demonstrate that gambogic acid disrupts LPS interaction with the TLR4/MD2 complex, the novel mechanism by which it suppresses TLR4 activation.
The periodontal diseases are infections caused by bacteria in oral biofilm, a gelatinous mat commonly called dental plaque, which is a complex microbial community that forms and adhere to tooth surfaces. Host immune-pathogen interaction in periodontal disease appears to be a complex process, which is regulated not only by the acquired immunity to deal with ever-growing and -invading microorganisms in periodontal pockets, but also by genetic and/or environmental factors. However, our understanding of the pathogenesis in human periodontal diseases is limited by the lack of specific and sensitive tools or models to study the complex microbial challenges and their interactions with the host's immune system. Recent advances in cellular and molecular biology research have demonstrated the importance of the acquired immune system in fighting the virulent periodontal pathogens and in protecting the host from developing further devastating conditions in periodontal infections. The use of genetic knockout and immunodeficient mouse strains has shown that the acquired immune response, in particular, $CD4^+$ T-cells plays a pivotal role in controlling the ongoing infection, the immune/inflammatory responses, and the subsequent host's tissue destruction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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