This study was conducted to investigate an effective method of protoplast isolation, the plating efficiency for cell division, and fusion of plant protoplasts by polyethylene glycol for somatic hybridzation. The effectiveness of protoplast isolation was different with the various enzyme concentrations, but, in the protoplast isolation from tobacco mesophyll, the enzyme solution with 0.5% macerozyme and 2.0% cellulase was very effective. The protoplast isolation from callus cultured in vitro for a long period was not obtained in any of the enzyme solution used. Protoplasts divided actively at cell densities above $10^44/ml and at $25^{\circ}C$ under 12hr illumination by inflorecient light (l50 Lux), regardless of presence of agar. The highest frequency of protoplast fusion was obtained after treatment with a solution of 0.33 M polyethylene glycol 1500.
The human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGM-CSF) was produced from cell suspension culture of transgenic tobacco which was transformed by using Agrobacterium harboring the hGM-CSF gene. To improve the production of hGM-CSF in batch culture system, the effects of initial sucrose concentration and inoculum size were investigated. The results show that the hGM-CSF production was not affected by small inoculum size in medium containing either low or high concentration of sucrose. However, the production of hGM-CSF was increased under increasing of the inoculum sizes and sucrose concentration. Under the combination of inoculum and sucrose concentration, the maximum hGM-CSF production of 720 $\mu$g/L was obtained at 90 g/L of initial sucrose concentration and 110 g/L of inoculum size.
A specific deleted version of ARABIDOPSIS RESPONSE REGULATOR1 (ARR1) lacking the signal receiver domain (1.152 amino acids)-coding sequence, referred to as $ARR1{\Delta}DDK$, was amplified using Arabidopsis thaliana cDNA prepared from adult leaves and transferred into the genome of Nicotiana tabacum cv. Samsun under the transcriptional control of a ${\beta}$-estradiol-inducible expression system. The ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ affected the morphology of transgenic seedlings and their segments in vitro. In the presence of an inducer, ${\beta}$-estradiol, ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ induced only the formation of soft, pseudo-bulbous tissue in the root tip region of intact seedlings, which appeared similar to callus generated on a hypocotyl segment in the presence of 2,4-D and 6-benzyladenine (BA), both at $1\;{\mu}M$. Those callus tissues on the root tip region could not generate shoots unless $1\;{\mu}M$ BA was supplied. In segment culture, ectopic expression of $ARR1{\Delta}DDK$ induced calluslike tissue around the cut-end of cotyledon and hypocotyl segments with occasional shoot formation, suggesting that the expression of $ARR1{\Delta}DDK$ could substitute for the effects of cytokinin on these segments. Additionally, treatment with only ${\beta}$-estradiol induced NtWUS, a WUS ortholog in tobacco, which was detected during the process of callus tissue formation in the root tip region and also in cotyledon or hypocotyl segments. These findings suggest that the NtWUS might be associated in the transdifferentiation process caused by the functional regulation of $ARR1{\Delta}DDK$ in transgenic tobacco seedlings.
The effects of various carbon sources on the secretion of hGM-CSF, total protein and protease into the medium were investigated in transgenic tobacco cells. The dry cell weight (11.2 g/L) and wet cell weight (310.8 g/L) were highest at 30 g/L glucose after 5-day culture but, the dry cell weight (13.4 g/L) and wet cell weight (480 g/L) were highest at 30 g/L sucrose after 10-day culture. The total protein (110.3 mg/L), protease activity (3950 U/L) and total secreted hGM-CSF (56 mg/L) were highest at 30 g/L sucrose after 10-day culture. Stabilization of the total secreted protein and hGM-CSF in various carbon source concentrations was determined. Total secreted protein was most stabilized in the medium containing sucrose. However, the loss of the total protein was increased with the concentrations of high level in medium containing sorbitol, mannitol, fructose, and glucose. hGM-CSF was more stabilized in the medium containing sucrose than in the medium containing sorbitol, mannitol, fructose, glucose.
Kim, Nan-Seon;Hong, Sin-Yeong;Lee, Jae-Hwa;Lee, Mi-Ae;Gwon, Tae-Ho;Jang, Yong-Seok;Yang, Mun-Sik
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.391-392
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2000
Tobacco cells transformed with hGM-CSF gene produced $162\;{\mu}g/L$ of hGM-CSF, a valuable therapeutic protein in seven days after inoculation. The protein concentration decreased after the maximum point. It is evidenced that the environment of cell culture was inappropriate for the stability of the protein(e.g., low osmolarity which can cause cell lysis).
The aim of this study is to compare the sensitivity of both two NCI-H292 and A549 cell types to acute inflammatory responses induced by cigarette smoke. For this, we treated two kinds of smoke fractions derived from 2R4F reference cigarettes: total particulate matter(TPM) collected onto a Cambridge filter pad and gas/vapor phase(GVP) prepared by bubbling through in buffer solution. When we measured cellular cytotoxicity by neutral red uptake assay after treatment for 24 hours, TPM and GVP induced cytotoxic effect in a dose-dependent manner in the range of 10-$100{\mu}g$/mL and 60-$300 {\mu}g$/mL., respectively, in both cell types without any cellular difference. Additionally, when we examined acute inflammatory responses by analyzing cytokines secreted into culture media including tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), interleukin-8(IL-8), and transforming growth factor-$\alpha$(TGF-$\alpha$) as well as matrix metalloproteinase-1(MMP-1), the treatment with smoke fractions increased those marker proteins in a dose-dependent manner in NCI-H292. Meanwhile, in A549 cells only MMP-1 was observed to be increased in a dose-dependent fashion. Collectively, our data indicate that NCI-H292 cell type is more sensitive to cigarette smoke-induced inflammatory response than A549 cells. This suggests that NCI-H292 could be useful as an in vitro evaluation tool to assess harmful effects of cigarette smoke.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.101.2-102
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2003
The ability of P. chlororaphis O6 to induce resistance to Erwinia carotovora subsp. carotovara SCCI and to promote growth in tobacco was demonstrated in microtiter assays on plants pre-inoculated at the root level with the bacteria before challenge with the leaf pathogen. To identify th bacterial determinants involved in induced systemic resistance and plant growth promotion, cell culture of O6 grown in King's medium B was fractionated with organic solvents and purified using various columns. in vivo and in vitro assays with samples from successive fractionation steps of the O6 supernatant led to the conclusion that antibacterial compounds were observed in aqueous layer, and to the isolation of fractions containing metabolites that retained most of the resistance-inducing activity (70:30, methanol:water) and the plant growth promotion (80:20 and 90:10, methanol:water) after ODS column chromatography. Although these molecules remain to be purified further and structurally characterized, its isolation is an addition to the range of determinants from plant growth-promoting rhizobacteria known to stimulate plant defence.
Tomato phenylalanine ammonia-lyase 5 (tPAL5) was identified that alternate initiation sites were utilized differentially in response to environmental stimuli (Lee et al, 1992b). In this study, we tried to look into tissue -or cell- specific expression pattern of tPAL5 gene by fusing with ${\beta}-glucuronidase$ (GUS) gene in transgenic tobacco plants. In transgenic plants, root and stem extracts contained 8~12 fold higher levels of GUS activity than petiole or leaf tissue while the highest levels of induction was observed from leaf tissue by mechanical wounding (5~11 fold). In trans-sections of stems and petioles, GUS activity was restricted to phloem cells(outer region) of developing vascular bundle and mainly at apical tip region in the root tissues. The levels of GUS activity was drastically reduced (10~12 fold reduction) when the 5'-upstream region of tPAL5 gene (-1151bp from ATG codon) was deleted up to -665. The levels of GUS expression, however, raised up by 6~8 fold when deleted up to -455. Therefore, we conclude that there are positive cis-elements at the region -1151 to -1008 and at -455 to -195 while the negative cis-element is at -1008 to -455.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1995.06a
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pp.67-78
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1995
Monoclonal antibodies (MoAbs) are a highly diversified class of proteins with major research and commercial applications such as diagnostics and therapeutics. Currently, the dominant method for producing MoAbs is through the hybridoma technique. However, this technique is slow, tedious, labor intensive, and expensive. The production of MoAbs in cultured transgenic plant cells can offer some advantages over that in the over that in the mammalian systems. The media to cultivate plant cells are well defined and inexpensive. Contamination by bacteria or fungi is easily monitored in plant tissue cultures. Furthermore, these contaminants are usually not potent pathogens to human beings. In our interdisciplinary research efforts, heavy chain monoclonal antibody (HC MAb) was inserted into Ti plasmid vector and transferred into A. tumefaciens for the transformation in tobacco cells. It was found that 76% of the transformants produced HC MAb. The presence of HC MAb in the cell membrane fraction indicated that the signal peptide was functional and efficient. The change of the HC MAb concentration during a batch culture followed a similar trend as dry cell concentration, indicating that the production of HC MAb was growth related. The long-term repeated subcultures of 11 cell lines showed that there was no obvious trend of neither the decrease nor the increase of the productivity with the repeated subcultures.
Ginseng cotyledon calli were cultured on 1/2MS media supplemented with combination of various growth regulators to induce more embryoids and plantlets in a short period. And tissues of ginseng root and calli were also incubated under various factors or conditions to establish methods for the isolation of viable protoplasts in Panax ginseng C.A. Meyer. The calli derived from cotyledon produced numerous embryoids in 1/2MS media containing 0.5mg/$\ell$ 2,4-D and 0.5mg/$\ell$ kinetin after 2 months' culture. But only shoot formation was less frequent. Further development of these embryoids occurred on 1/2MS medium supplemented with the same concentration of BA and GA. Viable protoplasts were isolated from the root tissue and callus of ginseng. The specific conditions for the isolation of viable protoplasts were required of ginseng materials, root tissue and callus, being processed. For the production of viable protoplasts from 1-year old ginseng root tissue, an enzyme mixture of $2\%$ cellulase 'Ono-zuka' and $0.5\%$ macerozyme, an enzyme solution pH of 5.2 to 5.8, a 7- to 8- hour incubation period at $28{\pm}1^{\circ}C$, and 0.9M mannitol as osmoticum in the cell enzyme mixture were optimum, while the treatments with an enzyme mixture of $2\%$ cellulase 'Onozuka', $2\%$ macerozyme and $1\%$ driselase, and 25-hour incubation period at $28{\pm}1^{\circ}C$, were more efficient for the production of viable protoplasts from ginseng callus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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