Mitochondrial genome is an important molecule for systematic and evolutionary studies in metazoans. The development of next-generation sequencing (NGS) technique has rapidly increased the number of mitogenome sequences. The process of generating mitochondrial genome based on NGS includes different steps, from DNA preparation, sequencing, assembly, and annotation. Despite the effort to improve sequencing, assembly, and annotation methods of mitogenome, the low quality and/or quantity sequence in the final map can still be generated through the work. Therefore, it is necessary to check and curate mitochondrial genome sequence after annotation for proofreading and feedback. In this study, we introduce the pipeline for sequencing and curation for mitogenome based on NGS. For this purpose, two mitogenome sequences of Dermatobranchus otome were sequenced by Illumina Miseq system with different amount of raw read data. Generated reads were targeted for assembly and annotation with commonly used programs. As abnormal repeat regions present in the mitogenomes after annotation, primers covering these regions were designed and conventional PCR followed by Sanger sequencing were performed to curate the mitogenome sequences. The obtained sequences were used to replace the abnormal region. Following the replacement, each mitochondrial genome was compared with the other as well as the sequences of close species available on the Genbank for confirmation. After curation, two mitogenomes of D. otome showed a typically circular molecule with 14,559 bp in size and contained 13 protein-coding genes, 22 tRNA genes, two rRNA genes. The phylogenetic tree revealed a close relationship between D. otome and Tritonia diomea. The finding of this study indicated the importance of caution and curation for the generation of mitogenome from NGS.
Choi, Seungkyu;Go, Jai Hyang;Kim, Eun Kyung;Lee, Hojung;Lee, Won Mi;Cho, Chun-Sung;Han, Kyudong
Genomics & Informatics
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v.14
no.3
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pp.78-84
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2016
Extranodal natural killer (NK)/T-cell lymphoma, nasal type (NKTCL), is a malignant disorder of cytotoxic lymphocytes of NK or T cells. It is an aggressive neoplasm with a very poor prognosis. Although extranodal NKTCL reportedly has a strong association with Epstein-Barr virus, the molecular pathogenesis of NKTCL has been unexplored. The recent technological advancements in next-generation sequencing (NGS) have made DNA sequencing cost- and time-effective, with more reliable results. Using the Ion Proton Comprehensive Cancer Panel, we sequenced 409 cancer-related genes to identify somatic mutations in five NKTCL tissue samples. The sequencing analysis detected 25 mutations in 21 genes. Among them, KMT2D, a histone modification-related gene, was the most frequently mutated gene (four of the five cases). This result was consistent with recent NGS studies that have suggested KMT2D as a novel driver gene in NKTCL. Mutations were also found in ARID1A, a chromatin remodeling gene, and TP53, which also recurred in recent NGS studies. We also found mutations in 18 novel candidate genes, with molecular functions that were potentially implicated in cancer development. We suggest that these genes may result in multiple oncogenic events and may be used as potential bio-markers of NKTCL in the future.
With the development of next-generation sequencing technology, ever-expanding databases of genetic information from various organisms are available to researchers. However, our ability to study the biological meaning of genetic information and to apply our genetic knowledge to produce genetically modified crops and animals is limited, largely due to the lack of molecular tools to manipulate genomes. Recently, targeted cleavage of the genome using engineered DNA scissors called zinc finger nucleases (ZFNs) has successfully supported the precise manipulation of genetic information in various cells, animals, and plants. In this review, we will discuss the development and applications of ZFN technology for genome engineering and highlight recent reports on its use in plants.
Kim, Chiwoo;Hwang, Jeongyun;Yang, Aram;Kim, Jinsup;Lee, Taeheon;Jang, Ja-Hyun;Cho, Sung Yoon;Jin, Dong-Kyu
Journal of The Korean Society of Inherited Metabolic disease
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v.17
no.2
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pp.69-76
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2017
Citrin deficiency is an autosomal recessive disorder caused by mutations in the SLC25A13 gene on chromosome 7q21.3, and a type of urea cycle disorder that causes hyperammonemia. Although neonatal intrahepatic cholestasis and adult-onset type II citrullinemia, a type of citrin deficiency, have been described well in many articles for several decades, failure to thrive and dyslipidemia caused by citrin deficiency (FTTDCD), the other type of citrin deficiency, has been only identified recently. There was previously no case report about FTTDCD in Korea. Patients with FTTDCD could present with loss of appetite, fatigue, failure to thrive, hypoglycemia, hypercitrullinemia, dyslipidemia, and an increased lactate/pyruvate ratio. Routine evaluation may not reveal the cause of hypoglycemia caused by citrin deficiency. We recently had a case that presented with recurrent hypoglycemia in a 30-month-old boy. Chemistry profiling, urine organic acid analysis, plasma acylcarnitine analysis, and hormone studies indicated values within the normal range or non-specific findings. Mutation analysis to identify the cause of hypoglycemia identified the subject as a compound heterozygote carrying each of the c.852_855del ($p.Met285Profs^*2$), and c.1177+1G>A mutant alleles. We report here on this unusual case of citrin deficiency presenting with FTTDCD for the first time in Korea.
Myostatin (MSTN) can negatively regulate the growth and development of skeletal muscle, and natural mutations can cause "double-muscling" trait in animals. In order to block the inhibiting effect of MSTN on muscle growth, we transferred zinc-finger nucleases (ZFN) which targeted sheep MSTN gene into cultured fibroblasts. Gene targeted colonies were isolated from transfected fibroblasts by serial dilution culture and screened by sequencing. Two colonies were identified with mono-allele mutation and one colony with bi-allelic deletion. Further, we introduced the MSTN-ZFN mRNA into sheep embryos by microinjection. Thirteen of thirty-seven parthenogenetic embryos were targeted by ZFN, with the efficiency of 35%. Our work established the technical foundation for generation of MSTN gene editing sheep by somatic cloning and microinjection ZFN into embryos.
Microbial pathogens are responsible for most of the rapidly-spreading deadly infectious diseases against humans. Thus, there is an urgent need for efficient and rapid detection methods for infectious microorganisms. The detection methods should not only be targeted and specific, but they have to be encompassing of potential changes of the pathogen as it evolves and mutates quickly during an epidemic or pandemic. The existing diagnostics such as the antibody-based ELISA immunoassay and PCR methods are too selective and narrowly focused; they are insufficient to capture newly evolved mutant strains of the pathogen. Here, we introduce a fresh perspective on some new technologies, including aptamers and next generation sequencing for pathogen detection. These technologies are not in their infancy; they are reasonably mature and ready, and they hold great promise for unparalleled applications in pathogen detection.
Thyroid dyshormonogenesis is characterized by impairment in one of the several stages of thyroid hormone synthesis and accounts for 10%-15% of congenital hypothyroidism (CH). Seven genes are known to be associated with thyroid dyshormonogenesis: SLC5A5 (NIS), SCL26A4 (PDS), TG, TPO, DUOX2, DUOXA2, and IYD (DHEAL1). Depending on the underlying mechanism, CH can be permanent or transient. Inheritance is usually autosomal recessive, but there are also cases of autosomal dominant inheritance. In this review, we describe the molecular basis, clinical presentation, and genetic diagnosis of CH due to thyroid dyshormonogenesis, with an emphasis on the benefits of targeted exome sequencing as an updated diagnostic approach.
Systemic autoinflammatory diseases (SAIDs) are characterized by unprovoked inflammatory episodes such as recurrent/periodic fever, serositis, skin lesions, abdominal symptoms, arthritis/arthralgia, and central nervous system involvement. Genetic diagnosis of SAIDs has been challenging because disease manifestations overlap among themselves and with other immunological disease categories, such as infection and autoimmune diseases. However, the advent of next-generation sequencing (NGS) technologies and expanding knowledge about the innate immunity and inflammation have made the routine genetic diagnosis of SAIDs possible. Here, we review the recurrent/periodic fevers, other recently identified autoinflammatory diseases, and type I interferonopathies, and discuss the clinical usefulness of NGS targeted sequencing for SAIDs, and recent advance of understandings for this heterogeneous disease group as for underlying primary immunodeficiency.
Arthrogryposis-renal dysfunction-cholestasis (ARC) syndrome is a rare autosomal recessive multisystemic disease that is associated with the liver, kidney, skin, and central nervous and musculoskeletal systems. ARC occurs as a result of mutations in the VPS33B (Vacuolar protein sorting 33 homolog B) or VIPAR (VPS33B interacting protein, apical-basolateral polarity regulator) genes. A female infant presented with neonatal cholestasis with a severe clinical outcome. She was diagnosed with ARC syndrome using targeted exome sequencing (TES). Exome sequencing revealed compound heterozygous mutations, c.707A>T and c.239+5G>A, in VPS33B, where c.707A>T was a novel variant; the resultant functional protein defects were predicted via in silico analysis. c.239+5G>A, a pathogenic mutation that affects splicing, is found in less than 0.1% of the general population. Invasive techniques, such as liver biopsies, did not contribute to a differential diagnosis of ARC syndrome; thus, early TES together with clinical presentations constituted an apparently accurate diagnostic procedure.
Single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) has greatly advanced our understanding of cellular heterogeneity by profiling individual cell transcriptomes. However, cell dissociation from the tissue structure causes a loss of spatial information, which hinders the identification of intercellular communication networks and global transcriptional patterns present in the tissue architecture. To overcome this limitation, novel transcriptomic platforms that preserve spatial information have been actively developed. Significant achievements in imaging technologies have enabled in situ targeted transcriptomic profiling in single cells at single-molecule resolution. In addition, technologies based on mRNA capture followed by sequencing have made possible profiling of the genome-wide transcriptome at the 55-100 ㎛ resolution. Unfortunately, neither imaging-based technology nor capture-based method elucidates a complete picture of the spatial transcriptome in a tissue. Therefore, addressing specific biological questions requires balancing experimental throughput and spatial resolution, mandating the efforts to develop computational algorithms that are pivotal to circumvent technology-specific limitations. In this review, we focus on the current state-of-the-art spatially resolved transcriptomic technologies, describe their applications in a variety of biological domains, and explore recent discoveries demonstrating their enormous potential in biomedical research. We further highlight novel integrative computational methodologies with other data modalities that provide a framework to derive biological insight into heterogeneous and complex tissue organization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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