Proceedings of the Korea Crystallographic Association Conference
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2003.05a
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pp.16-16
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2003
Mismatches in a DNA duplex are mainly due to DNA duplication errors that are generated by improper function of DNA polymerase. MutS, MutL and MutH are crucial proteins for the initiation of the methyl-directed mismatch repairing in bacteria. MutS has an ATPase activity md recognize the mismatched or unpaired bases on DNA. After binding to a mismatch, MutS recruits MutL to mediate the activation of MutH an endonuclease, which cleaves the 5' site of d(GATC) on the un-methylated strand. Both MutL and MutS also have essential roles in the subsequent removal and re-synthesis of the daughter strand. We have determined the crystal structures of either intact or active fragments of each of these proteins, both alone and complexed with ligands (DNA, ADP and ATP). The biochemical and mutagenesis studies based on the detailed 3-D structures led to new insights into the role of the ATPase activity of MutS in the mismatch recognition and directions for future investigation of mismatch repair.
In an effort to increase effective action of enkephalins, several peptide inhibitors of enkephalin aminopeptidase have been synthesized. The peptides contain 3-amino-2-hydroxy amino acid as a zinc binding site and side chains of substrate pattern. The peptides were synthesized in solution by chain elongation from C-terminal end using DCC/HOBt as coupling reagent. The peptides are shown to have very strong inhibitory activity against enkephalin aminopeptidase.
Choline esters that are used with substrate of BChE-catalyzed hydrolyses were synthesized by two methods. First, 2-chloroethyl thiohexanoate, 2-chloroethyl thioheptanoate, and 2-chloroethyl thiooctanoate were synthesized by the treatment of hexanoyl chloride with ethylene sulfide. Hexanoyl thiocholine and octanoyl thiocholine were synthesized by using 2-chloroethyl thiohexanoate and 2-chloroethyl thiooctanoate with trimethyl amine. Second, after reaction of ethylene sulfide and dimethyl amine, followed by acylation with acid anhydride and then heptanonyl thiocholine, decanoyl thiocholine were synthesized by treatment of methyl iodide.
The adsorption of methanethiol and benzenethiol on Ag(111) and Ag(100) surfaces is studied respectively, employing ASED (Atom Superposition and Electron Delocalization) method. Metal surfaces are modelled by 3-layer clusters. The corresponding thiolate anions are taken as adsorbates. The highly coordinated binding sites are most favored for both surfaces. The tilted angles of C-S axis from the surface normal are nearly zero. There's Charge transfer from adsorbate to substrate and the stretching frequency of C-S bond upon adsorption is blue-shifted from its gas phase counterpart, and its amount is the smallest at most highly coordinated site. FMO (Fragment Molecular Orbital) analysis of the system give the explanation for these results.
3-Hydroxypropionic acid (3HP) is a platform chemical and can be converted into other valuable C3-based chemicals. Because a large amount of glycerol is produced as a by-product in the biodiesel industry, glycerol is an attractive carbon source in the biological production of 3HP. Although eight 3HP-producing aldehyde dehydrogenases (ALDHs) have been reported so far, the low conversion rate from 3-hydroxypropionaldehyde (3HPA) to 3HP using these enzymes is still a bottleneck for the production of 3HP. In this study, we elucidated the substrate binding modes of the eight 3HP-producing ALDHs through bioinformatic and structural analysis of these enzymes and selected protein engineering targets for developing enzymes with enhanced enzymatic activity against 3HPA. Among ten AbKGSADH variants we tested, three variants with replacement at the Arg281 site of AbKGSADH showed enhanced enzymatic activities. In particular, the AbKGSADHR281Y variant exhibited improved catalytic efficiency by 2.5-fold compared with the wild type.
Melanin is synthesized by tyrosinase to protect the skin from ultraviolet light. However, overproduction and accumulation of melanin can result in hyperpigmentation and skin melanoma. Tyrosinase inhibitors are commonly used in the treatment of hyperpigmentation. Natural tyrosinase inhibitors are often favoured over synthetic ones due to the potential side effects of the latter, which can include skin irritation, allergies, and other adverse reactions. Nuciferine, an alkaloid derived from Nelumbo nucifera, exhibits potent antioxidant and anti-proliferative properties. This study focused on the in silico screening of nuciferine for anti-tyrosinase activity, using kojic acid, ascorbic acid, and resorcinol as standards. The tyrosinase protein target was selected through homology modeling. The residues of the substrate binding pocket and active site pockets were identified for the purposes of grid box optimization and docking. Therefore, nuciferine is a potent natural tyrosinase inhibitor and shows promising potential for application in the treatment of hyperpigmentation and skin melanoma.
The kinetic and chemical mechanisms of AChE-catalyzed hydrolysis of short-chain thiocholine esters are relatively well documented. Up to propanoylthiocholine (PrTCh) the chemical mechanism is general acid-base catalysis by the active site catalytic triad. The chemical mechanism for the enzyme-catalyzed butyrylthiocholine(BuTCh) hydrolysis shifts to a parallel mechanism in which general base catalysis by E199 of direct water attack to the carbonyl carbon of the substrate. [Selwood, T., et al. J. Am. Chem. Soc. 1993, 115, 10477- 10482] The long chain thiocholine esters such as hexanoylthiocholine (HexTCh), heptanoylthiocholine (HepTCh), and octanoylthiocholine (OcTCh) are hydrolyzed by electric eel acetylcholinesterase (AChE). The kinetic parameters are determined to show that these compounds have a lower Michaelis constant than BuTCh and the pH-rate profile showed that the mechanism is similar to that of BuTCh hydrolysis. The solvent isotope effect and proton inventory of AChE-catalyzed hydrolysis of HexTCh showed that one proton transfer is involved in the transition state of the acylation stage. The relationship between the dipole moment and the Michaelis constant of the long chain thiocholine esters showed that the dipole moment is the most important factor for the binding of a substrate to the enzyme active site.
ErmSF is one of the Erm family proteins which catalyze S-adenosyl-$_L$-methionine dependent modification of a specific adenine residue (A2058, E. coli numbering) in bacterial 23S rRNA, thereby conferring resistance to clinically important macrolide, lincosamide and streptogramin B ($MLS_B$) antibiotics. $^{222}FXPXPXVXS^{230}$ (ErmSF numbering) sequence appears to be a consensus sequence among the Erm family. This sequence was supposed to be involved in direct interaction with the target adenine from the structural studies of Erm protein ErmC'. But in DNA methyltarnsferase M. Taq I, this interaction have been identified biochemically and from the complex structure with substrate. Arginine 223 and 227 in this sequence are not conserved among Erm proteins, but because of the basic nature of residues, it was expected to interact with RNA substrates. Two amino acid residues were replaced with Ala by site-directed mutagenesis. Two mutant proteins still maintained its activity in vivo and resistant to the antibiotic erythromycin. Compared to the wild-type ErmSF, R223A and R227A proteins retained about 50% and 88% of activity in vitro, respectively. Even though those arginine residues are not essential in the catalytic step, with their positive charge they may play an important role for RNA binding.
The purified xylanase from Bacillus alcalophilus AX2000 was modified with various chemical modifiers to determine amino acid residues in the active site of the enzyme. Treatment of the enzyme with group-specific reagents such as carbodiimide or N-bromosuccinimide resulted in complete loss of enzyme activity. These results suggested that these reagents reacted with glutamic acid or aspartic acid and tryptophan residues located at or near the active site. In each case, inactivation was performed by pseudo first-order kinetics. Inhibition of enzyme activity by carbodiimide and N-bromosuccinimide showed non-competitive and competitive inhibition type, respectively. Addition of xylan to the enzyme solution containing N-bromosuccinimide prevented the inactivation, indicating the presence of tryptophan at the substrate binding site. Analysis of kinetics for inactivation showed that the loss of enzyme activity was due to modification of two glutamic acid or aspartic acid residues and single tryptophan residue.
To search the new potent herbicidal agents by receptor-based approach, the interactions between receptor and substrate molecules from molecular docking to acetyl-CoA carboxylase(PDB code: 3K8X) of 2-(4-(6-chloro-2-benzoxazolyl)oxy)phenoxy-N-phenylpropionamide analogues (1-38) as substrate molecules were performed and discussed quantitatively. The most of the substrate molecules were formated 2 H-bonds between carbonyl oxygen atom of the substrate molecules and the amino acid residues (Ala1627 and Ile1735) in binding site of acetyl-CoA carboxylase (ACCase). But, the substrate molecules such as $R_l$=Acetyl substituents (6 & P9) were formated 3 H-bonds between H-bond acceptors in the substrate molecules and the H-bond donors in three amino acid residues including the rest residue (Gly 1998). Therefore, the inhibitory activity factors of the substrate molecules against ACCase are due to the H-bonding characters that will be able to apply to the optimization of herbicidal agents.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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