Probiotic bacteria have been administered to neonates to serve as maturational stimuli for the developing gut and intestinal immune system, establish and develop the intestinal microbiota, and mediate host-microbe interactions; further, these bacteria have shown beneficial effects In the treatment and reduction of the risk of infectious diseases, necrotizing enterocolitis, and atopic disease. An LAB isolation project to identify effective lactic acid bacteria for Korean people is in progress. The average total counts of lactic acid bacteria, lactobacilli, bifidobacteria, and coliforms in the fecal samples from 2 provinces were estimated as 8.31, 5.98, 8.13, and 3.01 CFU/g. Additional samples from other provinces will be analyzed to examine the changes in the lactic bacterial counts according to the area, sex of the neonate, mode of delivery, and type of feeding. A database containing the 16S rDNA sequences and the ribosomal protein profile of all the lactic acid bacteria isolated from fecal samples will be constructed. For the effective use of probiotics, a number of clinical studies are needed to formulate guidelines for strain, subject, purpose, and dose.
The strain of Nuruk yeat No. 15 (NY-15) which ferments lactose in milk was Isolated from Nuruk and identified as Saccharomyces marxianus according to the API 20C profile index. The lactose hydrolysing ability of NY-15 was similar to that Saccharomyces fragilis ATCC 8583 which has ${\beta}-galactosidase$ activity. Its optimum growth temperature, pH and time for the production of maximum enzyme activity showed $28^{\circ}C$, 4.5 and 28hr, respectively. Galactose as well as sucrose as carbon sources, and urea as nitrogen source Increased the production of enzyme. In order to test the production of alcohol, NY-15 was inoculated in whey medium and whey medium added with sugar. In the former, NY-15 produced 2% alcohol and in the latter, it showed 12% alcohol production. The optimal medium pH for lactose hydrolysis of NY-15 is 4.5, whereas that of Saccharomyces fragilis ATCC 8583 is 3.5
Tewfik, Shadia R.;Sorour, Mohamed H.;Shaalan, Hayam F.;Hani, Heba A.
Membrane and Water Treatment
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v.9
no.1
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pp.43-51
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2018
Hollow fiber (HF) membranes are gaining wide interest over flat membranes due to their compaction and high area to surface volume ratio. This work addresses the fabrication of HF from polysulfone (PS) and polyethersulfone (PES) using N-methylpyrrolidone (NMP) as solvent in addition to other additives to achieve desired characteristics. The semi-pilot spinning system includes jacketed vessel, four spinneret block, coagulation and washing baths in addition to dryer and winder. Different parameters affecting dry-wet spinning phase inversion process were investigated. Dope compositions of PES, NMP and polyvinyl pyrrolidone (PVP) of varying molecular weights as additive were addressed. Some critical parameters of importance were also investigated. Those include dope flow rate, air gap, coagulation & washing baths and drying temperatures. The measured dope viscosity was in the range from 1.7 to 36.5 Pa.s. Air gap distance was adjusted from 20 to 45 cm and coagulation bath temperature from 20 to $46^{\circ}C$. The HF membranes were characterized by scanning electron microscope (SEM), atomic force microscope (AFM) and mechanical properties. Results indicated prevalence of finger like structure and average surface roughness from about 29 to 78.3 nm. Profile of stress strain characteristics revealed suitability of the fibers for downstream interventions for fabrication of thin film composite membrane. Different empirical correlations were formulated which enable deeper understanding of the interaction of the above mentioned variables. Data of pure water permeability (PWP) confirmed that the fabricated samples fall within the microfiltration (MF)-ultrafiltration (UF) range of membrane separation.
The antibacterial effects of water extracts of Scutellariate Radix (a dried root of Scutellaria baicalensis GEORGI) and its major flavonoid components, Baicalin and Baicalein, on Salmonella typhimurium, a representative enteric pathogen, were studied. Through a Kriby-Bauer disc analysis, the growth-inhibition activity of Scutellariae Radix against. S. typhimurium was found to be compatible with commercial antibiotics, such as ampicillin, chloramphenicol, and streptomycin. In contrast, the growth of a nonpathogenic E. coli strain was unaffercted by Scutellariae Radix. To examine the effect of polyphosphate kinase (ppk), a putative virulence factor, on the antibacterial activity of Scutellariae Radix, the growth profile of a ppk mutant of S. typhimurium was investigated in a tryptic soy broth containing different concentrations of water extracts of Scutellariae Radix. The ppk mutant was able to grow in 6 mg/ml of water extracts of Scutellariae Radix, whereas in 6 mg/ml of water extracts of Scutellariae Radix, whereas the wild-type could not, implying that the inactivation of ppk made S. typhimurium more resistant to the antibacterial activity of Scutellariae Radix. No enhanced resistance was observed in a ppk mutant of S. typhimurium complemented with a ppk expression vector. The attenuation of the virulence by ppk inactivation was also observed in a virulence assay using BLAB/c mice. Neither Baicalin nor Baicalein exhibited any growth-inhibition activity against S. typhimurium. The water extracts of Scutellariae Radix stimulated the transcription of ppk, especially in the early growth-stage of S. typhimurium.
Kim, Byung-Hyuk;Kim, Dong-Ho;Choi, Jung-Woon;Kang, Zion;Cho, Dae-Hyun;Kim, Ji-Young;Oh, Hee-Mock;Kim, Hee-Sik
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.9
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pp.1547-1554
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2015
The potential of microalgae biofuel has not been realized because of the low productivity and high costs associated with the current cultivation systems. In this study, a new low-cost and transparent attachment material was tested for cultivation of a filamentous algal strain, Stigeoclonium sp., isolated from wastewater. Initially, the different materials tested for Stigeoclonium cultivation in untreated wastewater were nylon mesh, polyethylene mesh, polypropylene bundle (PB), polycarbonate plate, and viscose rayon. Among the materials tested, PB led to a firm attachment, high biomass (53.22 g/m2, dry cell weight), and total lipid yield (5.8 g/m2) with no perceivable change in FAME profile. The Stigeoclonium-dominated biofilm consisted of bacteria and extracellular polysaccharide, which helped in biofilm formation and for effective wastewater treatment (viz., removal efficiency of total nitrogen and total phosphorus corresponded to ~38% and ~90%, respectively). PB also demonstrated high yields under multilayered cultivation in a single reactor treating wastewater. Hence, this system has several advantages over traditional suspended and attached systems, with possibility of increasing areal productivity three times using Stigeoclonium sp. Therefore, multilayered attached growth algal cultivation systems seem to be the future cultivation model for large-scale biodiesel production and wastewater treatment.
The intracellular bacterium Wolbachia pipientis is widespread in arthropods. Recently, possibilities of novel Wolbachia-mediated hosts, their distribution, and natural rate have been anticipated, and the coconut leaf beetle Brontispa longissima (Gestro) (Coleoptera: Chrysomelidae), which has garnered attention as a serious pest of palms, was subjected to this interrogation. By adopting Wolbachia surface protein (wsp) and multilocus sequence type (MLST) genotypic systems, we determined the Wolbachia infection density within host developmental stages, body parts, and tissues, and the results revealed that all the tested samples of B. longissima were infected with the same Wolbachia strain (wLog), suggesting complete vertical transmission. The MLST profile elucidated two new alleles (ftsZ-234 and coxA-266) that define a new sequence type (ST-483), which indicates the particular genotypic association of B. longissima and Wolbachia. The quantitative real-time PCR analysis revealed a higher infection density in the eggs and adult stage, followed by the abdomen and reproductive tissues, respectively. However, no significant differences were observed in the infection density between sexes. Moreover, the wsp and concatenated MLST alignment analysis of this study with other known Wolbachia-mediated arthropods revealed similar clustering with distinct monophyletic supergroup B. This is the first comprehensive report on the prevalence, infection dynamics, and phylogeny of the Wolbachia endosymbiont in B. longissima, which demonstrated that Wolbachia is ubiquitous across all developmental stages and distributed in the entire body of B. longissima. Understanding the Wolbachia infection dynamics would provide useful insight to build a framework for future investigations, understand its impacts on host physiology, and exploit it as a potential biocontrol agent.
This study was performed to obtain the thermostable $\beta$-glycosidase producing bacteria from hot spring of volcanic area at Atagawa in Japan. KNOUC 202 was selected because it showed thermostable $\beta$-glycosidase activity in sodium phosphate buffer(pH 6.8) at $70^{\circ}C$ for 4h, and it was identified. The strain was aerobic, asporogenic bacilli, immobile, gram negative, catalase positive, oxidase positive, and pigment-producing. Optimum growth was at $70~72^{\circ}C$, pH 7.0~7.2, and it could grow in the presence of 3% NaCl. The main fatty acids in cell were iso-15:0 and iso-l7:0. 16S rRNA sequence of KNOUC 202 showed 99.9% similarity with that of Thermus thermophilus ATCC 27634(HB8). Based on morphological, physiological, biochemical characteristics, cellular fatty acids profile and 16S rRNA sequence analysis, KNOUC 202 was identified as Thermus thermophilus.
Two hollow fiber membrane biofilm reactors (HF-MBfRs) were operated for autotrophic nitrification and hydrogenotrophic denitrification for over 300 days. Oxygen and hydrogen were supplied through the hollow fiber membrane for nitrification and denitrification, respectively. During the period, the nitrogen was removed with the efficiency of 82-97% for ammonium and 87-97% for nitrate and with the nitrogen removal load of 0.09-0.26 kg NH4+-N/m3/d and 0.10-0.21 kg NO3--N/m3/d, depending on hydraulic retention time variation by the two HF-MBfRs for autotrophic nitrification and hydrogenotrophic denitrification, respectively. Biofilms were collected from diverse topological positions in the reactors, each at different nitrogen loading rates, and the microbial communities were analyzed with partial 16S rRNA gene sequences in denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE). Detected DGGE band sequences in the reactors were correlated with nitrification or denitrification. The profile of the DGGE bands depended on the NH4+ or NO3- loading rate, but it was hard to find a major strain affecting the nitrogen removal efficiency. Nitrospira-related phylum was detected in all biofilm samples from the nitrification reactors. Paracoccus sp. and Aquaspirillum sp., which are an autohydrogenotrophic bacterium and an oligotrophic denitrifier, respectively, were observed in the denitrification reactors. The distribution of microbial communities was relatively stable at different nitrogen loading rates, and DGGE analysis based on 16S rRNA (341f /534r) could successfully detect nitrate-oxidizing and hydrogen-oxidizing bacteria but not ammonium-oxidizing bacteria in the HF-MBfRs.
A bacterial strain was isolated from soybean paste fermented in a Korean Buddhist temple as a producer of the extracellular thermostable ${\alpha}$-amylase. The isolate YB-1234 has been identified as Bacillus licheniformis on the basis of its 16S rDNA sequence, morphology and biochemical properties. A gene encoding the thermostable ${\alpha}$-amylase of B. licheniformis YB-1234 was cloned into Escherichia coli and its nucleotide sequence was determined. The deduced amino acid sequence of ${\alpha}$-amylase was very highly homologous to those of the thermostable ${\alpha}$-amylases of B. licheniformis belonging to the glycosyl hydrolase family 13. The ${\alpha}$-amylase produced by recombinant E. coli carrying the ${\alpha}$-amylase gene exhibited maximal activity at pH 6.0, identical to ${\alpha}$-amylase in the culture filtrate of B. licheniformis, while the temperature profile was somewhat different between the two. Particularly, ${\alpha}$-amylase produced from B. lcheniformis is much more thermostable than that from recombinant E. coli. The predominant products resulting from the ${\alpha}$-amylase hydrolysis were glucose, maltose and maltotriose for maltotetraose and maltohexaose.
Saccharomyces cerevisiae Hsp30 is a plasma membrane heat shock protein that is induced by various environmental stress conditions. However, the functional role of Hsp30 during diverse environmental stressors is not presently known. To gain insight into its function during thermal stress, we have constructed and characterized a ${\Delta}hsp30$ strain during heat stress. $BY4741{\Delta}hsp30$ cells were found to be more sensitive compared with BY4741 cells, when exposed to a lethal heat stress at $50^{\circ}C$. When budding yeast is exposed to either heat shock or weak organic acid, it inhibits Pma1p activity. In this study, we measured the levels of Pma1p in mutant and Wt cells both during optimal temperature and heat shock temperature. We observed that $BY4741{\Delta}hsp30$ cells showed constitutive reduction of Pma1p. To gain further insights into the role of Hsp30 during heat stress, we compared the total protein profile by 2D gel electrophoresis followed by identification of differentially expressed spots by LC-MS. We observed that contrary to that expected from thermal-stress-induced changes in gene expression, the ${\Delta}hsp30$ mutant maintained elevated levels of Pdc1p, Trx1p, and Nbp35p and reduced levels of Atp2p and Sod1p during heat shock. In conclusion, Hsp30 is necessary during lethal heat stress, for the maintenance of Pma1p and a set of thermal stress response functions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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