The insulin-like growth factor (IGF) is found in all vertebrates and its type-II molecule is regarded as a fundamental embryonic growth factor during development. We have firstly identified, in this study, a cDNA clone corresponding to IGF-II (flIGF-II) from the adult brain of the teleost, Paralichthys olivaceus. We also examined the tissue expression of flIGF-II in several adult tissues by RT-PCR. The flIGF-II cDNA contained a complete ORF consisting of 215 amino acids and one stop codon. Its molecular characteristics appear to be similar to the previously identified IGF-II molecules, in which a common primary structure exhibiting B, C, A, D, and E domains is evidently observed. This cDNA clone seems to be cleaved at $Ala_{52}$ for the $NH_2$-end signal peptide and appears to produce a 98 amino acid-long E-peptide from the $Arg^{118}$. The functional B-D domain regions, therefore, include 65 amino acids and is able to encode a 7.4-kDa protein. The most prominent structural difference between IGF-I and IGF-II was that the D domain of IGF-II exhibits a two-codon-deleted pattern compared to the 8 amino acid-containing IGF-I. The insulin family signature in the A domain and six cysteins forming three disulfide bridges between the B and A domains were evolutionary-conserved from teleosts to mammalian IGF-II. Interestingly, the E-peptide region appears to provide a distinct hallmark between teleosts in amino acid composition. The flIGF-II shows 85.1% of sequence identity to salmon and trout, 90.6% to tilapia, and 98.4% to perch in amino acid level. In tissue expressions of IGF-II, it is very likely that flIGF-II has a significant expression in the adult brain. However, liver seems to be the main source for IGF-II production, and relatively low signals were observed in the adult muscle and kidney. Taken together, it would be concluded that the functional region for IGF-II mRNA is highly similar in phylogeny and is evolutionary, conserved as a mediator for the growth of vertebrates.
We investigated whether Korean red ginseng (KRG) and highly active antiretroviral therapy (HAART) affect the frequency of gross deletion in 5'LTR/gag in 20 hemophiliacs. This study is a prospective study in 20 hemophiliacs who were infected with Korean subclade B of HIV-1 from two cash-paid plasma donors in 1990. Over a 13-year period, we obtained 436 amplicons of 5'LTR/gag genes by nested polymerase chain reaction using 147 peripheral blood mononuclear cells. Of the 436 amplicons, 92 (21.1%) showed gross deletion in 5'LTR/gag. Despite of a 2.3-fold higher monthly dose of KRG intake, the frequency of gross deletion in 5'LTR/gag (16.4%) was significantly decreased during HAART compared with 28.1% prior to HAART (p<0.01). Gross deletion in 5'LTR/gag was 10% more detected on KRG-therapy than prior to KRG-therapy (p<0.05). In addition, we also obtained 28 amplicons containing premature stop codon or isoleucine at initiation codon of 254 amplicons sequenced on KRG intake (7.5%) or HAART (13.6%) compared with 0% before KRG intake. These findings indicate that high frequency of gross deletion in 5'LTR/gag and genetic defects prior to HAART are significantly associated with KRG intake and the detection of gross deletion in 5'LTR/gag is decreased by HAART.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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1991.04a
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pp.225-236
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1991
The genes encoding the thermostable $\alpha$-amylase and maltogenic amylase from Bacillus lichenciformis were cloned and expressed in E. coli. The recombinant plasmid pTA322 was found to contain a 3.1kb EcoRI genomic DNA fragment of the thermostable $\alpha$-amylase. The cloned $\alpha$-amylase was compared with the B. licheniformis native $\alpha$-amylase. Both $\alpha$-amylase have the same optimal temperature of $70^{\circ}C$ and are stable in the pH range of 6 and 9. The complete nucleotide sequences of the thermostable $\alpha$-amylase gene were determined. It was composed of one open reading rame of 1,536 bp. Start and stop codons are ATG and TAG. From the amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence, the cloned thermostable $\alpha$-amylase is composed of 483 amino acid residues and its molecular weight is 55,200 daltons. The content of guanine and cytosine is $47.46mol\%$ and that of third base codon was $53_41mol\%$. The recombinant plasmid, pIJ322 encoding the maltogenic amylase contains a 3.5kb EcoRI-BamHI genomic DNA fragment. The optimal reaction temperature and pH of the maltogenci amylase were $50^{\circ}C$ and 7, respectively. The maltogenic amylase was capable of hydrolysing pullulan, starch and cyclodextrin to produce maltose from starch and panose from pullulan. The maltogenic amylase also showed the transferring activity. The maltogenic amylase gene is composed of one open reading frame of 1,734bp. Start and stop codons are ATG and ATG. At 2bp upstream from start codon, the nucleotide sequence AAAGGGGGAA seems to be the ribosome-binding site(RBS, Shine-Dalgarno sequence). A putative promoter(-35 and-10 regions) was found to be GTTAACA and TGATAAT. From deduced amino acid sequence from the nucleotide srquence, this enzyme was comosed of 578 amino acid residues and its molecular weight was 77,233 daltons. The content of guanine and cytosine was $48.1mol\%$. The new recombinant plasmid, pTMA322 constructed by inserting the thermostable $\alpha$-amylase gene in the EcoRI site of pIJ322 to produce both the thermostable $\alpha$-amylase and the maltogenic amylase were expressed in the E. coli. The two enzymes expressed from E. coli containing pTMA322 was reacted with the $15\%$ starch slurry at $40^{\circ}C$ for 24hours. The distribution of the branched oligosaccharides produced by the single-step process was of the ratio 50 : 50 between small oligosaccharide up DP3 and large oligosaccharide above DP3.
SNAP-25 was first investigated as a neuron-specific protein preferentially expressed in CA3 pyramidal neurons of mouse hippocampus. It is a presynaptic plasma membrane protein in the nerve cell and plays an important role in the synaptic vesicle membrane docking and fusion pathway. We have recently isolated SNAP-25 cDNA from a rat brain cDNA library using a probe of Z2 cDNA. It consisted of 2,101 bp and an open reading frame (ORF) was identified between nucleotides (nt) 209 and 827. The AUG codon (nt 209∼211) was surrounded by CTACCATGG, which corresponded to the consensus sequence of ribosomal binding site. The ORF was terminated by TAA (nt 827∼829) to encode a polypeptide of 206 amino acid residues. The 3'-untranslated region contained two extensive stretches of repeated (CA)28 and (CA)19 at positions 925∼980 and 1645∼1682. It is noteworthy that cysteine residues were clustered in the span of amino acid residues 84∼991 : Cys-Gly-Leu-Cys-Val-Cys-Pro-Cys. Rat SNAP-25 showed 88% and 97% identity in nucleotide sequences to that of human and mouse, respectively. Amino acid sequence of rat SNAP-25 showed 100% identity to that of mouse and human SNAP-21.
In this study, a DNA-launched reverse genetics system was developed from a type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) strain, KNU-12. The complete genome of 15,412 nucleotides was assembled as a single cDNA clone and placed under the eukaryotic CMV promoter. Upon transfection of BHK-tailless pCD163 cells with a full-length cDNA clone, viable and infectious type 2 progeny PRRSV were rescued. The reconstituted virus was found to maintain growth properties similar to those of the parental virus in porcine alveolar macrophage (PAM) cells. With the availability of this type 2 PRRSV infectious clone, we first explored the biological relevance of ORF5a in the PRRSV replication cycle. Therefore, we used a PRRSV reverse genetics system to generate an ORF5a knockout mutant clone by changing the ORF5a translation start codon and introducing a stop codon at the 7th codon of ORF5a. The ORF5a knockout mutant was found to exhibit a lack of infectivity in both BHK-tailless pCD163 and PAM-pCD163 cells, suggesting that inactivation of ORF5a expression is lethal for infectious virus production. In order to restore the ORF5a gene-deleted PRRSV, complementing cell lines were established to stably express the ORF5a protein of PRRSV. ORF5a-expressing cells were capable of supporting the production of the replicationdefective virus, indicating complementation of the impaired ORF5a gene function of PRRSV in trans.
S-Adenosylmethionine decarboxylase (SAMDC; EC 4.1.4.50), a key enzyme for polyamines biosynthesis, was tightly regulated for homeostatic levels. Carnation SAMDC gene (CSDC9) has an small upstream open reading frame (uORF) of 54 amino acids in 5'-leader sequence. To explore the functional mechanism of uORFs in controlling translation, we used a GUS reporter gene driven with the 35S promoter and uORF region of SAMDC gene for making transgenic tobacco plants. In our experiment, there were a translational inhibition of its downstream GUS ORF by SAMDC uORF sequence or SAMDC uORF protein. Expecially, translational inhibition was most effective in point-mutated construct, in which the start codon was changed. Therefore, this results suggested the ribosomal stalling might be involved in this translational inhibitory process. The frame shift in amino acid sequence of SAMDC uORF with start codon and stop codon resulted in a moderate increasing in GUS activity, suggesting the native amino acid sequence was important for a function as a translational inhibitor. Also, we showed that the production of GUS protein was significantly inhibited in the presence of the small uORF using histochemical analysis of GUS expression in seedlings and tobacco flowers. Importantly, the small uORF sequence induced a real peptide of 5.7 kDa, which was provided the presence of SAMDC uORF peptide band using an in vitro transcription/translation system. The peptide product of uORF might interact with other components of translational machinery as well as polyamines, which was resulted from that polyamine treatment was inhibited GUS protein band in SDS-PAGE experiment.
This study was conducted to identify the PERV (Porcine Endogenous Retrovirus) integration sites and their characterizations using the porcine genomic sequence information. Total 114 Mb (4.2%) sequence of the 2.7 Gb pig genome was investigated for the PERV sequences. As the results, 8 PERV sequences were identified and their genomic structures were deduced from the BLAST searches against previously known PERV genes. Seven PERVs have internal deletions in the protein coding region and they will not be functional. The other one also has internal deletions in the gag and env genes, indicating this PERV is also defective. Even though we could not identify the functional PERVs in this study, the results presented here can be used for the fundamental research materials for controlling PERV infections in relation to xenotransplantation using porcine organs and tissues.
A gene coding for ${\beta}$-xylosidase from thermophilic xylanolytic Bacillus sp. KK-1 was cloned into Escherichia coli using plasmid pBR322. Recombinant plasmid DNAs were isloated from E. coli clones which were capable of hydrolyzing 4-methylumbelliferyl-${\beta}$-D xylopyranoside. Restriction analysis showed the DNAs to share a common insert DNA. Xylo-oligosaccharides, including xylotriose, xylotetraose, xylopentaose, and xylobiose were hydrolyzed to form xylose as an end product by cell-free extracts of the E. coli clones, confirming that the cloned gene from strain KK-1 is ${\beta}$-xylosidase gene. The ${\beta}$-xylosidase gene of strain KK-1 designated as xylB was completely sequenced. The xylB gene consisted of an open reading frame of 1,602 nucleotides encoding a polypeptide of 533 amino acid residues, and a TGA stop codon. The 3' flanking region contained one stem-loop structure which may be involved in transcriptional termination. The deduced amino acid sequence of the KK-1 ${\beta}$-xylosidase was highly homologous to the ${\beta}$-xylosidases of Bacillus subtilis and Bacillus pumilus, but it showed no similarity to a thermostable ${\beta}$-xylosidase from Bacillus stearothermophilus.
The full-length cDNA of the lumbrokinase fraction 6 (F6) protease gene of Lumbricus rubellus was amplified using an mRNA template, sequenced and expressed in E. coli cells. The F6 protease gene consisted of pro- and mature sequences by gene sequence analysis, and the protease was translated and modified into active mature polypeptide by N-terminal amino acid sequence analysis of the F6 protease. The pro-region of F6 protease consisted of the 44 residues from methionine-1 to lysine-44, and the mature polypeptide sequence (239 amino acid residues and one stop codon; 720 bp) started from isoleucine-45 and continued to the terminal residue. F6 protease gene clones having pro-mature sequence and mature sequence produced inclusion bodies in E. coli cells. When inclusion bodies were orally administrated rats, generated thrombus weight in the rat' venous was reduced by approximately 60% versus controls. When the inclusion bodies were solubilized in pepsin and/or trypsin solutions, the solubilized enzymes showed hemolytic activity in vitro. It was concluded the F6 protease has hemolytic activity, and that it is composed of pro- and mature regions.
In order to confirm the presence of putative glucoamylase gene in Tricholoma matsutake genome, the genomic DNA was prepared from T. matsutake NBRC30773 strain and was used as template to clone the glucoamylases gene (TmGlu1). We obtained the nucleotide sequence of TmGlu1 and its franking region. The coding region (from ATG to stop codon) is 2,186 bp. The locations of exons and introns were determined from the nucleotide sequences of 3'- and 5'-RACE PCR and RT-PCR products. On the other hand, to investigate the relationship between composition of medium and glucoamylase expression, we checked the expression level of glucoamylase gene by realtime reverse transcription PCR and measurement of glucoamylase enzyme activity. It was found that enzyme activity of glucoamylase was very low in different medium. Expression of glucoamylases gene appeared to not be affected by different carbon source.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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