Yi, Jong-Jae;Yoo, Jung Ki;Kim, Jin Kyeoung;Son, Woo Sung
Journal of the Korean Magnetic Resonance Society
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v.17
no.1
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pp.30-39
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2013
Immortalization-upregulated protein-1 (IMUP-1) genes have been cloned and are known to be involved in SV40-mediated immortalization. IMUP-1 gene is highly expressed in various cancer cell lines and tumors, suggesting the possibility that they might be involved in tumorigenicity. Previously, there were several problems for overexpression of IMUP-1 in bacterial expression systems including low solubility and aggregation due to unstructured property. To investigate the structural properties, it is necessary to obtain lots of pure and soluble proteins. Accordingly, the co-expression systems of bacterial chaperone proteins, GroEL-GroES, were used to increase solubility of IMUP-1. From the analysis of NMR and CD experiment data, it is suggested that the protein adopt typical the random coil properties in solution.
Amirfakhri, Siamak;Salimi, Arsalan;Fernandez, Nelson
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.16
no.18
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pp.8445-8450
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2016
Background: Breast cancer is the most common neoplasm in women and the most frequent cause of death in those between 35 and 55 years of age. All multicellular organisms have an innate immune system, whereas the adaptive or 'acquired' immune system is restricted to vertebrates. This study focused on the effect of conditioned medium isolated from cultured breast cancer cells on NB4 neutrophil-like cells. Materials and Methods: In the current study neutrophil-like NB4 cells were incubated with MCF-7 cell-conditioned medium. After 6 h incubation the intracellular receptor TLR2, was analyzed. Results: The results revealed that MCF-7 cell-conditioned medium elicited expression of TLR2 in NB4 cells. Conclusions: This treatment would result in the production of particular stimulants (i.e. soluble cytokines), eliciting the expression of immune system receptors. Furthermore, the flow cytometry results demonstrated that MCF-7 cell-conditioned medium elicited an effect on TLR2 intracellular receptors.
Our previous study showed that the overexpression of carboxypeptidase Y (CPY) of Saccharomyces cerevisiae in Escherichia coli resulted in the formation of insoluble inclusion bodies. To produce soluble CPY, we designed a novel Pichia pastoris expression system, in which the following were inserted into expression vectors: three different signal sequences derived from the mating factor a1 of S. cerevisiae, an inulinase of Kluyveromyces marxianus, and the endogenous signal sequence of CPY. The expression vector pHIL-D2-SSinul-proCPY was the most effective in the production of proCPY among the vectors examined. The purified active CPY was obtained from proCPY by treating with proteinase K, followed by QExcellose ion-exchange column chromatography.
The purpose of this study was to express bovine lactoferrin N-lobe in Chlorella vulgaris, a green microalga, using the pCAMBIA1304 vector. Chlorella-codon-optimized bovine lactoferrin N-lobe (Lfb-N gene) was cloned in the expression vector pCAMBIA1304, creating the plasmid pCAMLfb-N. pCAMLfb-N was then introduced into C. vulgaris by electro-transformation. Transformants were separated from BG-11 plates containing 20 ${\mu}g\;mL^{-1}$ hygromycin. Polymerase chain reaction was used to screen transformants harboring Lfb-N gene. Finally, total soluble protein was extracted from the transformants, and the expression of Lfb-N protein was detected using western blotting. Using this method, we successfully expressed bovine lactoferrin in C. vulgaris. Therefore, our results suggested that recombinant lactoferrin N-lobe, which has many uses in the biomedical and pharmaceutical industries, can be produced economically.
Kim, Byung-Lip;Baek, Jung-Eun;Kim, Chun-Sug;Lee, Hyeok-Weon;Ahn, Jung-Oh;Lee, Hong-Weon;Jung, Joon-Ki;Lee, Eun-Gyo;Kim, In-Ho
KSBB Journal
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v.23
no.3
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pp.205-212
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2008
The efficient soluble expression of human epidermal growth factor (hEGF) was achieved by using functional fusion partners in cytoplasm and periplasm of Escherichia coli (E. coli). hEGF was over-expressed in inactive inclusion body form in cytoplasm of E. coli due to improper disulfide bond formation and hydrophobic interaction, yielding about 5.9 mg/L in flask culture. Six functional fusion partners were introduced by linking to N-terminal part of hEGF gene for the high-level expression of soluble and active hEGF in cytoplasm and peri plasm region. Three fusion partners for cytoplasmic expression such as acidic tail of synuclein (ATS), thioredoxin (Trx) and lipase, and three fusion partners for periplasmic expression such as periplasmic cystein oxidoreductases (DsbA and DsbC) and maltose binding protein (MBP) were investigated. hEGF fused with ATS and DsbA showed over 90% of solubility in cytoplasm and periplasm, respectively. Especially DsbA was found to be an efficient fusion partner for soluble and high-level expression of hEGF, yielding about 18.1 mg/L and three-fold higher level compared to that of insoluble non-fusion hEGF in cytoplasm. Thus, heterologous proteins containing complex disulfide bond and many hydrophobic amino acids can effectively be produced as an active form in E. coli by introducing a suitable peptide or protein.
Purpose: Cytolethal distending toxin (CDT) is a family of heat-labile cytotoxins produced by several gram-negative mucosa-associated pathogens, including Aggregatibacter actinomycetemcomitans. CDT is well known to be capable of inducing growth arrest, morphological alterations, and eventually death in various cells. CDT belongs to a tripartite $AB_2$ toxin (CdtB: the enzymatic A subunit; CdtA and CdtC: the heterodimeric B subunit). Previous studies proposed that CdtA and CdtC together bind to a cell surface receptor and glycolipids act as a receptor for A. actinomycetemcomitans CDT (AaCDT). In this study, recombinant CdtA and CdtC proteins of AaCDT were co-expressed in a bacterial expression system and tested for their affinity for $GM_1$ ganglioside. Methods: The genes for CdtA and CdtC from A. actinomycetemcomitans Y4 were utilized to construct the expression vectors, pRSET-cdtA and pET28a-cdtC. Both CdtA and CdtC proteins were expressed in Escherichia coli BL21(DE3) and then purified using hexahistidine (His6) tag. The identity of purified protein was confirmed by anti-His6 antibody and monoclonal anti-CdtA antibody. Furthermore, the affinity of recombinant protein to $GM_1$ ganglioside was checked through ELISA. Results: Recombinant CdtA and CdtC proteins were expressed as soluble proteins and reacted to anti-His6 and monoclonal anti-CdtA antibodies. ELISA revealed that purified soluble CdtA-CdtC protein bound to $GM_1$ ganglioside, while CdtA alone did not. Conclusions: Co-expression of CdtA and CdtC proteins enhanced the solubility of the proteins in E. coli, leading to convenient preparation of active CdtA-CdtC, a critical material for the study of AaCDT pathogenesis.
A human gene has been reported that may encode the enzyme acetohydroxyacid synthase. Previously this enzyme was thought to be absent from animals although it is present in plants and many microorganisms. In plants, this enzyme is the target of a number of commercial herbicides and the use of these compounds may need to be reassessed if the human enzyme exists and proves to be susceptible to inhibition. Here we report the construction of several plasmid vectors containing the cDNA sequence for this protein, and their expression in Escherichia coli. High levels of expression were observed, but most of the protein proved to be insoluble. The small amounts of soluble protein contained little or no acetohydroxyacid synthase activity. Attempts to refold the insoluble protein were successful insofar as the protein became soluble. However, the refolded protein did not gain any acetohydroxyacid synthase activity. In vivo complementation tests of an E. coli mutant produced no evidence that the protein is active. Incorrect folding, or the lack of another subunit, may explain the data but we favor the interpretation that this gene does not encode an acetohydroxyacid synthase.
Effects of Mori Folium Ethanol Soluble Fraction (MFESF) on mRNA expression of glucose transporters, acetyl-CoA carboxylase (ACC) and leptin were examined in db/db mice. 500 and 1000mg/kg dose for MFESF (designated by SY 500 and SY 1000, respectively) and 5mg/kg dose for acarbose were administered for 6 weeks. Quantitations of glucose transporters (GLUT-2 and GLUT-4), ACC and leptin mRNA were performed by RT-PCR and in vitro transcription with co-amplification of rat ${\beta}$-actin gene as an internal standard. Muscular GLUT-4 mRNA expression in MFESF-treated groups were increased dose dependently. On the other hand, MFESF caused the GLLT-4 and leptin mRNA expressions in adipose tissue to decrease dose dependently, which means that triglyceride synthesis in adipocytes might be decreased and consequently signals adipocytes to inhibit the synthesis and release of leptin. Hepatic ACC mRNA expression in MFESF-treated groups was also decreased. and this may result in lowering of serum triiglyceride level. In contrast, liver GLUT-2 mRNA expressions in MFESF-treated and acarbose groups were increased. Higher rate of glucose uptake into hepatocytes is known to inhibit a phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK)-catalyzed reaction, which is a rate-limiting step in gluconeogenesis.
Rezaee Mohammad Ahangarzadeh;Rezaee Abbas;Moazzeni Seyed Mohammad;Salmanian Ali Hatef;Yasuda Yoko;Tochikubo Kunio;Pirayeh Shahin Najar;Arzanlou Mohsen
Journal of Microbiology
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v.43
no.4
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pp.354-360
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2005
Heat-labile enterotoxin B subunit (LTB) of enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) is both a strong mucosal adjuvant and immunogen. It is a subunit vaccine candidate to be used against ETEC-induced diarrhea. It has already been expressed in several bacterial and plant systems. In order to construct yeast expressing vector for the LTB protein, the eltB gene encoding LTB was amplified from a human origin enterotoxigenic E. coli DNA by PCR. The expression plasmid pLTB83 was constructed by inserting the eltB gene into the pYES2 shuttle vector immediately downstream of the GAL1 promoter. The recombinant vector was transformed into S. cerevisiae and was then induced by galactose. The LTB protein was detected in the total soluble protein of the yeast by SDS-PAGE analysis. Quantitative ELISA showed that the maximum amount of LTB protein expressed in the yeast was approximately $1.9\%$ of the total soluble protein. Immunoblotting analysis showed the yeast-derived LTB protein was antigenically indistinguishable from bacterial LTB protein. Since the whole-recombinant yeast has been introduced as a new vaccine formulation the expression of LTB in S. cerevisiae can offer an inexpensive yet effective strategy to protect against ETEC, especially in developing countries where it is needed most.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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