Rahnella aquatilis strain AY2000 produces an anti-yeast substance (AYS), however activity of the AYS has a declining tendency during storage. To investigate what has been decreased activity of the AYS, the AYS was treated with various physicochemical agents in this paper. The activity of AYS was decreased by heat treatment. Thiol reagent such as $\beta$-mercaptoethanol or dithiothreitol was also another factor decreasing the activity of AYS. However, pH, EDTA, and NaCl were not factors decreasing the activity of AYS. Use of methanol to precipitate the AYS was also decreased the activity of AYS. The activity of AYS was not lost after Sepharose S-400 gel filtration. However, the AYS activity was completely lost, when a polysaccharide and a unknown substance (230 nm absorption) among components of the AYS was separated by DEAE-cellulose chromatography. MIC of the AYS against S. cerevisiae was usually determined at $7.8-15.6{\mu}g/ml$.
A cDNA encoding a cysteine protease inhibitor (CPI) was isolated from the cDNA library of clamworm Perinereis aibuhitensis Grube. The deduced amino acid sequence analysis showed that the protein had 51%, 48%, and 48% identity with Zgc:153129 from Danio rerio, cystatin B from Theromyzon tessulatum, and the ChainA, stefin B tetramer from Homo sapiens, respectively. The gene was cloned into the intracellular expression vector pET-15b and expressed in Escherichia coli. The recombinant CPI (PA-CPI) was purified by affinity chromatography on Ni-charged resin and ion-exchange chromatography on DEAE-Sepharose FF. The relative molecular mass of PA-CPI was 16 kDa as deduced by SDS-PAGE. Activity analysis showed that the recombinant protein could inhibit the proteolytic activity of papain. A constitutive and secretive expression vector was also constructed, and the cDNA encoding CPI was subcloned into the vector for extracellular expression. Western blotting analysis results showed that the PA-CPI was secreted into the medium. Bioassay demonstrated that E. coli DH5${\alpha}$ harboring pUC18ompAcat-CPI showed a significant difference in mortality to the Asian longhorned beetle Anoplophora glabripennis compared with untransformed E. coli DH5${\alpha}$ and control.
This research was carried out to investigate the optimal conditions ssociated with the RIA procedures such as a bridging phenomena, prozone effects and a new separation methods etc. The results obtained were summarized as follows: 1. The lgG fractions of donkey anti-rabbit IgG sera were purified by Protein-A-Sepharose affinity column, which indicates that Protein-A an affinity for IgG class of donkey antiserum. 2. In coating the IgG fraction on polystryene tubes, incubation conditions made no differences between 2 hr at room temperature and overnight at 4$^{\circ}C$. 3. There were no significant differences between 1st antibody-coated tube and 2nd antibody-coated tube as a separation method when compared in terms of reproducbility. A better reproducibility may be expected if the titers of 1st antibody for the progesterone to be assayed and of corresponding 2nd antibody are reasonably high. 4. The titers of anti-progesterone antibody for 3H-progesterone and progesterone-11HS-125I were 1:300 and 1:700 in liquid-phase, and 1:100 and 1:300 in solid-phse for the separation methods. 5. A bridging phenomena in which a standard curve is long and shallow were observed when progesterone-11HS-125I was used for the tracer, but not in 3H-progesterone. 6. A prozone effect in a solid-phase system, especially 1st antibody-coated tube method was observed which the degree of inhibition was significantly different although zero bindings look the same. In this case, the titration curve should be made both in the absence and in the presence of a, pp.opriate amount of competiter, standard, respectively.
Park, Sung-Woo;Kim, Eun-Ho;Min, Ji-Sook;You, Jae-Hoon;Lee, Hee-Sung;Seo, Bae-Seck;Han, Wan-Soo
Analytical Science and Technology
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v.5
no.1
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pp.83-90
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1992
The $^{14}C$-warfarin used as rodenticids was identified from various organs of sprague dawley with scintillation counter. And the cytochrome p-450 which was induced by coumarin derivatives was identified with electrophoresis. The distributions of $^{14}C$-warfarin after $14.8{\mu}Ci/kg$ oral application at each organ was as follows; urine-7.5%, blood-0.44%, feces-0.9%, liver-0.66%, lung-0.86%, kidney-0.8%, heart-0.43% and spreen-0.33% after 24hrs. The cytochrome p-450 was purified by Octyl Sepharose CL-4B hydrophobic chromatography and isozymes were 50.8 Kd in control group, 53.3 Kd and 55.2 Kd in coumarin pretreated group and 50.8 Kd, 54.6 Kd and 57.7 Kd in warfarin pretreated group.
Phosphorylation of soy protein by sodium trimetaphosphate and acetylation of soy protein by acetic anhydride were performed. Then, the functional properties of modified soy proteins were compared with that of unmodified soy protein. Isolated soy protein prepared from defatted soybean flake had protein content of 92.7% as moisture-free basis. The phosphorylated soy protein showed higher solubility, foaming properties, and water holding capacity than unmodified soy protein. Acetylation of soy protein increased emulsification activity and foaming properties greatly, whereas decreased the solubility at pH 8.0. Isoelectric pHs of phosphorylated and acetylated soy protein were shifted to acidic regions(pH 3.0 and pH 4.0) from pH 5.0, which was the isoelectric pH of unmodified soy protein. Soy protein seems to be aggregated during phosphorylation and acetylation procedure, judging form Sepharose CL-4B gel filtration profiles. The modified soy proteins showed increased mobilities to anode direction in disc-gel electrophoresis.
Bacteriocin-producing lactic acid bacteria were isolated from kimchi. One isolate producing the most efficient bacteriocin was identified and named Lactococcus lactis B2, based on the biochemical properties and 16S rDNA sequences. The B2 bacteriocin inhibited many different Gram positive bacteria including Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Enterococcus, Streptococcus, and Staphylococcus, but did not inhibit Gram-negative bacteria. The bacteriocin was maximally produced at temperatures between $25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$ and at the initial pH of 7.0. Ninety $\%$ of the activity remained after 10 min of heat treatment at $121^{\circ}C,\;and\;100\%$, after 1 h exposure to organic solvents. The bacteriocin was purified from culture supernatant by ammonium sulfate precipitation, CM Sepharose column chromatography, ultrafiltration, and finally, by reverse-phase HPLC. A 1.58-kb fragment was amplified from B2 chromosome by using a primer set designed from the published nisA sequence. Sequencing result showed that the fragment contained the whole nisZ and 5' portion of nisB, whose gene product was involved in postmodification of nisin. The upstream sequence, however, was completely different from those of reported nisin genes.
An expression vector system was developed for the secretory production of recombinant Bacillus stearothermophilus L1 lipase in Saccharomyces cerevisiae. The mature L1 lipase gene was fused to ${\alpha}-amylase$ signal sequence from Aspergillus oryzae for the effective secretion into the culture broth and the expression was controlled under GAL10 (the gene coding UDP-galactose epimerase of S. cerevisiae) promoter. S. cerevisiae harboring the resulting plasmid successfully secreted L1 lipase into the culture broth. To examine an optimum condition for L1 lipase expression in the fed-batch culture, L1 lipase expression was induced at three different growth phases (early, mid, and late-exponential growth phases). Maximum product on of L1 lipase (1,254,000 U/l, corresponding to 0.65/1) was found when the culture was induced at an early growth phase. Secreted recombinant L1 lipase was purified only through CM-Sepharose chromatography, and the purified enzyme showed 1,963 U/mg of specific activity and thermoalkalophilic properties similar to those reported for the enzyme expressed in Escherichia coli.
$\alpha$-Cyclodextrin glucanotransferase excreted from a newly isolated Geobacillus thermosacchalytycus was purified through the ultrafiltraion, hydrophobic Sepharose CD-4B affinity chromatography, and gel filtration on Sephadex G-75, respectively. The molecular weight of the purified CGTase was 69 kDa and its N-terminal amino acid sequence was determined to be Asn-Leu-Asn-Lys-Val-Asn-Phe-Val-Ser-Asp-Val-Val-Val-Gln-Ile. The optimum pH and temperature were pH 6.0 and$ 60^{\circ}C$, respectively, and stably at the pH range of 6.0-8.0 and $60^{\circ}C$ in the presence of $Ca^{++}$. The excreted CGTase from the thermophilic G. thermosacchalytycus was $\alpha$-type showing a high coupling activity for the transglycosylation on various glucosides. The coupling reaction was carried out according to the random ternary complex mechanism.m.
A novel process for urokinase purification was studied using p-aminobenzamidine as the ligand and sepharose 4B as the matrix. The adsorption, washing, and elution conditions were optimized by an unusual method. An adsorption buffer containing 2.5 M NaCl and $1\%$ Tween 80 facilitated the adsorption of urokinase on the affinity media and prevented contaminants from binding to the p-aminobenzamidine affinity gel. It was found that $5\%$ Tween 80 removed most of the contaminants from the affinity column. A 0.2 M glycine elution buffer containing 0.5 M NaCl (pH 3.0) was found to have a strong elution ability with a high recovery and purity of urokinase. A crude urokinase material of231 IU/mg protein from human urine was purified to 124,300 IU/mg protein with a purification factor of 538 and yield of $86.7\%$. As a result, a high purity urokinase was obtained with only a single affinity chromatography step. The purification process was successfully scaled-up to a 2-1 chromatography column. The resulting urokinase eluate could be directly lyophilized, thereby complying with Chinese pharmacopoeia (1995 version) standards.
Park, Joo-Woong;Lee, Joo-Kyung;Kwon, Tae-Jong;Yi, Dong-Hee;Park, Yong-Il;Kang, Sang-Mo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.11
no.6
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pp.1011-1017
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2001
Streptomyces sp. Y-110 cytochrome P-450, induced by the addition of compactin -Na into the culture medium, was purified from the cell extract to apparent homogeniety, mainly by DEAE-Sepharose, hydroxyapatite, and Mono Q column chromatyography. The sepcific activity of purified enzyme on its substrate, compactin-Na, was determined to be 15 nmol of pravastatin per mg protein. The molecular mass of this enzyme on SDS-PAGE was $37{\pm}0.5$ kDa, pI was 4.5, and its CO difference spectrum showed maximum absorption peaks at 452 and 550nm, respectively. The N-terminal amino acid sequence was determined to be Met>Thr>Cys>Thr>Pro>Val>Thr>Val>The>Gly>Ala>Ala>Gly>Gln>Ile>Gly>Tyr>Ala>Leu. Its apparent $K_m$ on compactin-Na was $1.294{\mu}M{\cdot}min^-1,\;and\;V_{max}\;was\;1.028{\mu}M{\cdot}min^-1$. The maximum substrate concentration ($K_s$) for reaction was $270 {\mu}M$and thus $1/[K_s]$ was $3.7{\mu}M$. These physicochemical characteristics and kinetic behavior of this enzyme were compared and shown to be different from those of Streptomyces cytochrome P-450 enzymes reported, suggesting that this enzyme may be an additional member of the Streptomyces cytochrome P-450 family.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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