Lactobacillus sporogenes was treated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) to obtain resistant mutants to rifampicin. Fifty-eight strains of the NTG-induced mutants showed distinct resistance to rifampicin and nine mutants were selected for further studies. They also exhibited identical characteristics with the parent Lactobacillus sporogenes when they were tested for spore formation, acid formation and growth inhibition of E. coli. From in vitro test it was identified that rifampicin is not inactivated by certain factors of the rifampicin resistant mutants. It is suggested that they can be utilized as efficient normalizing agents for human intestinal flora when they are simultaneously taken with rifampicin
The preparation of Clostridium butyricum is used as a normalizing agent for human intestinal flora. When the microbe is simultaneously used with rifampicin, it is inactivated by the antibiotic. To develop rifampicin-resistant mutants, rifampicin-sensitive strain Miyairi II 588 of C. butyricum was treated with nitrosoguanidine (NTG). To ensure stable resistance to rifampicin, we examined whether the resistance was plasmid-mediated or chromosome-mediated. It was found that the resistance of four mutant strains was not mediated by its inherent plasmid, but by the chromosomal mutation. These strains were examined for the susceptibility and resistance to other antituberculosis agents and antibiotics. The results showed that these mutants were resistant to the high concentration of the antituberculosis agents.
The preparation of Streptococcus faecalis RSI is used as a medicinal preparation for human intestinal disorders. But the microbe in this preparation is very sensitive to rifampicin. If this preparation is taken with rifampicin, its therapeutic effect can not be expected. To develope rifampicin resistant mutants, the rifampicin sensitive strain S. faecalis RSI was treated with Nmethyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(MNNG). Twelve strains of the MNNG-induced mutants showed distinct resistance to rifampicin and five mutants were selected for further studies. They also exhibited identical characteristics with the parent S. faecalis RSI when they were tested for lactic acid formation and growth inhibition of E. coli. From in vitro test, it was identified that rifampicin is not inactivated by certain factors of the rifampicin resistant mutants. Conclusively, the rifampicin resistant mutants are efficient strains that have insensitivity against rifampicin and original biochemical characteristics of the parent strain.
Bifidobacterium bifidum, one strain of medical preparation being on the market for human intestinal disorders, was sensitive to rifampicin and fluoroquinolones. If this preparation is taken with rifampicin and fluoroquinolones, its therapeutic effect can't be expected. Serial passage of B. bifidum RFR61, which was obtained by MNNG mutation method, on agar with 2-fold minimal inhibitory concentration of ofloxacin produced B. bifidum OFR9 with minimal inhibitory contentrations of fluoroquinolones up to $4{\sim}256-fold$ higher than that for the original strain. B. bifidum OFR9 produced almost the same amount of organic acid as parental strain. This strain showed growth inhibitory activity against E. coli NM522, Shigella dysenteriae ATCC9752 and E. coli 078. No inactivations of rifampicin and ofloxacin by this resistant mutant strain were found.
The preparation of Enterococcus faecalis RSI is used as a therapeutics for human intestinal disorders. However, the microbe in this preparation is usually very sensitive to rifampicin and fluoroquinolones. If this preparation is taken with rifampicin or fluoroquinolones, its therapeutic effect can not be expected. E. faecalis RFR11, containing resistance to rifampicin was obtained by MNNG mutation method. Serial passage of E. faecalis RFR11 produced E. feacalis OFR16 on agar with 2-fold minimal inhibitory concentration of ofloxacin produced. E. feacalis OFR16 was resistant to fluoroquinolones up to 8-256 fold higher than that for the original strain. E. faecalis OFR16 also exhibited identical characteristics with the parent strain when they were tested for lactic acid formation and growth inhibition of E. coli MB4-5737 and Shigella sonnei MB4-10411. From in vitro test, it was identified that rifampicin and ofloxacin is not inactivated by certain factors of E. faecalis OFR16. Conclusively. E. faecalis OFR16, rifampicin and fluoroquinolones resistant mutant, is an efficient strain that has insensitivity against rifampicin and fluoroquinolones and original biochemical characteristics of the parent strain.
The disease tuberculosis, caused by Mycobacterium tuberculosis (MTB), remains a major cause of morbidity and mortality in developing countries. The evolution of drug-resistant tuberculosis causes a foremost threat to global health. Most drug-resistant MTB clinical strains are showing resistance to isoniazid and rifampicin (RIF), the frontline anti-tuberculosis drugs. Mutation in rpoB, the beta subunit of DNA-directed RNA polymerase of MTB, is reported to be a major cause of RIF resistance. Amongst mutations in the well-defined 81-base-pair central region of the rpoB gene, mutation at codon 450 (S450L) and 445 (H445Y) is mainly associated with RIF resistance. In this study, we modeled two resistant mutants of rpoB (S450L and H445Y) using Modeller9v10 and performed a docking analysis with RIF using AutoDock4.2 and compared the docking results of these mutants with the wild-type rpoB. The docking results revealed that RIF more effectively inhibited the wild-type rpoB with low binding energy than rpoB mutants. The rpoB mutants interacted with RIF with positive binding energy, revealing the incapableness of RIF inhibition and thus showing resistance. Subsequently, this was verified by molecular dynamics simulations. This in silico evidence may help us understand RIF resistance in rpoB mutant strains.
The use of bioluminescence as a sensitive marker for the detection of Pseudomnas sp. in the rhizosphere was investigated. Transposon Tn4431 which contains a promoterless luciferase operon and tetracycline resistant gene was used. This transposon, present on a suicide vector (pUCD623) in E. coli HB101, was mated with spontaneous rifampicin mutant of Pseudomonas fluorescens B16, a plant growth promoting rhizobacteria (PGPR), and then rifampicin and tetracycline resistant survivors were isolated. Twenty tow mutants wer isolated from the conjugants between E. coli HB101 and P. fluorescens B16. One of these, B16::Tn4431 (L22) recombinant which glowed brightly in the dark was selected for analysis. The cucumber seeds inoculated with L22 were grown in moisten two layers of filter paper and nonsterile soil contained in half cut PVC pipe. The roots were removed from the filter paper and PVC pipe, then placed on the 1/2 LB media plates. The plates were incubated at room temperature for 16 hr. L22 could successfully be detected in the rhizoplane by using the ordinary negative camera film (ASA100-400) with 30 minutes exposure under dark condition. The root colonizing ability and the plant growth promoting effect of L22 were not reduced compared to the untreated bacteria and wild type. L22 was superior to will type.
A DNA fragment which is involved in tolassin production was cloned to obtain a molecular marker of Pseudomonas tolaasii, a casual agent of bacterial brown blotch disease of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). Tolaasin is a lipodepsipeptide toxin and known as a primary disease determinant of the P. tolaasii. It is responsible for formation of white line in agar when P. tolaasii were cultured against white line reacting organisms (WLROs). White line negative mutants (WL-) were generated by conjugation between rifampicin resistant strain of P. tolaasii and E. coli carrying suicidal plasmid pSUP2021 : : Tn5. The ability of tolaasin production of the WL- mutants was examined by hemolysis test, pathogenicity test, and high pressure liquid chromatography (HPLC) analysis of culture filtrate. All of the WL- mutants were lost the ability of tolaasin production (Tol-). Genomic library of the Tol- mutant was constructed in pLAFR3 and the cosmid clone containing Tn5 was selected. DNA fragment fro franking region of Tn5 was cloned from the plasmid and used as a probe in Southern blot. DNA-DNA hybridization with the probe to total DNA from group of bacteria ecologically similar to P. tolaasii including WLORs, fluorescent Pseudomonads isolated from oyster mushroom, P. agarici, P. gingeri, and some of other species of Psedomonas showed that some of the tested bacteria do not have any hybridized band and others have bands sowing RFLP. The cloned DNA fragment or its nucleotide sequence will be useful in detection and identification of the P. tolaasii.
A phosphate-solubilizing bacterial strain isolated from Hippophae rhamnoides rhizosphere was identified as Rahnella sp. based on its phenotypic features and 16S rRNA gene sequence. The bacterial strain showed the growth characteristics of a cold-adapted psychrotroph, with the multiple plant growth-promoting traits of inorganic and organic phosphate solubilization, 1-aminocyclopropane-1-carboxylate-deaminase activity, ammonia generation, and siderophore production. The strain also produced indole-3-acetic acid, indole-3-acetaldehyde, indole-3-acetamide, indole-3-acetonitrile, indole-3-lactic acid, and indole-3-pyruvic acid in tryptophan-supplemented nutrient broth. Gluconic, citric and isocitric acids were the major organic acids detected during tricalcium phosphate solubilization. A rifampicin-resistant mutant of the strain exhibited high rhizosphere competence without disturbance to the resident microbial populations in pea rhizosphere. Seed bacterization with a charcoal-based inoculum significantly increased growth in barley, chickpea, pea, and maize under the controlled environment. Microplot testing of the inoculum at two different locations in pea also showed significant increase in growth and yield. The attributes of cold-tolerance, high rhizosphere competence, and broad-spectrum plant growth-promoting activity exhibited the potential of Rahnella sp. BIHB 783 for increasing agriculture productivity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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