Infectious pancreatic necrosis virus (IPNV)는 치어에 감염되어 치명적인 질병을 유발하는, 양식산업에 있어 중요한 어류 병원체이다. 본 연구에서는 IPNV를 신속, 정확하게 진단하는 방법을 개발하고자 IPNV의 항원성 단백질인 VP2 유전자 부분에서 선택한 primers를 이용하여 역전사-중합효소연쇄반응법(Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction, RT-PCR)을 실시하였다. RT-PCR 증폭법으로 순수분리도니 IPNV dsRNA 40 ng 정도의 적은 양도 확인 할 수 있었으며, IHNV와 같은 다른 어류 병원체의 게놈을 RT-PCR templates로 사용하였을 경우는 어떠한 PCR 산물도 검출되지 않는 특이성을 보였다. 특히 유전자의 분리없이 조직 그 자체를 대상으로 RT-PCR을 행하는 in situ RT-PCR 방법으로 IPNV가 감염된 넙치 (Paralichthy olivaceus) 치어의 조직에서 IPNV 감염을 신속하게 확인할 수 있었다. 따라서 RT-PCR 및 in situ RT-PCR 방법은 IPNV를 신속, 정확하게 진단하는데 활용될 수 있을 것으로 생각된다.
Background: Feline calicivirus (FCV) is a major and highly infectious pathogen in cats worldwide. However, there have been limited studies about the status of FCV infections in Korea. Objectives: To investigate the current status of FCV infections in stray cats in Korea. Methods: A novel reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay was developed based on the conserved nucleotide sequences of reported FCV strains. Field swab samples were collected from 122 cats (2 hospital admitted cats and 120 stray cats) in 2016 and 2017. All the samples were tested by virus isolation and 2 different RT-PCRs, including the novel RT-PCR, for the detection of FCV. Results: The novel RT-PCR assay showed no cross-reactivity to the nucleic acids of the other feline pathogens tested, and the limit of detection was calculated as 100 TCID50/mL based on an in vitro assessment. The novel RT-PCR assay detected 5 positive samples from the 122 field samples, which showed perfect agreement with the results of the virus isolation method. In contrast, another RT-PCR assay used in a previous study in Korea detected no positive samples. The prevalence of FCV infection in stray cats was 2.5% (3/120) based on the results of virus isolation and the novel RT-PCR assays. Conclusions: The current study is the first report of the detection and prevalence of FCV in stray cats in Korea. The novel RT-PCR assay developed in this study showed high sensitivity and specificity, which indicates a useful diagnostic assay to identify FCV infection in cats.
Cymbidium mosaic virus (CymMV) is one of economically important viruses that cause significant losses of orchids in the world. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay combined with a lateral flow immunostrip (LFI) assay was developed for the detection of CymMV in orchid plants. A pair of primers containing fluorescent probes at each terminus that amplifies highly specifically a part of the coat protein gene of CymMV was determined for RT-RPA assay. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (39℃) and could be performed rapidly within 30 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with odontoglossum ringspot virus and cymbidium chlorotic mosaic virus. The RT-RPA with LFI assay (RT-RPA-LFI) for CymMV showed 100 times more sensitivity than conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Furthermore, the RT-PCR-LFI assay demonstrated the simplicity and the rapidity of CymMV detection since the assay did not require any equipment, by comparing results with those of conventional RT-PCR. On-site application of the RT-RPA-LFI assay was validated for the detection of CymMV in field-collected orchids, indicating a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting CymMV in orchids.
As expected, the expression of denitrifying genes in a Typha wetland (relatively stagnant compared to other ponds), showing higher nitrogen removal efficiency in summer, was affected by temperature. The abundance and gene transcripts of nitrate reductase (narG), nitrite reductase (nirS), nitric oxide reductase (norB), and nitrous oxide reductase (nosZ) genes in seasonal sediment samples taken from the Acorus and Typha ponds of free surface flow constructed wetlands were investigated using quantitative polymerase chain reaction (Q-PCR) and quantitative reverse transcription PCR (Q-RT-PCR). Denitrifying gene copy numbers ($10^5-10^8$ genes $g^{-1}$ sediment) were found to be higher than transcript numbers-($10^3-10^7$ transcripts $g^{-1}$ sediment) of the Acorus and Typha ponds, in both seasons. Transcript numbers of the four functional genes were significantly higher for Typha sediments, in the warm than in the cold season, potentially indicating greater bacterial activity, during the relatively warm season than the cold season. In contrast, copy numbers and expression of denitrifying genes of Acorus did not provide a strong correlation between the different seasons.
Exposure of seedling of rice (Oriza sativa cv.Dongin) to cold stress ($6^{circ}C$, 7day) induced differential gene expression. Differentially expressed polyadenylated RNA induced by low temperature were isolated and identified from the leaves of rice (Oriza sativa cv.Dongin) seedling by using the technique, differential display of reverse transcription through polymerase chain reaction (DDRT-PCR). Four bands of cDNAs were differentially displayed on the PAGE gel through DDRT-PCR, and among them three bands were those of overexpressed genes while one band was of an underexpressed gene One of the overexpressed cDNA was characterized. The size of the DDRT-PCR product was found to be about 200 bp. The sequence of the cloned DNA was compared with those of GenBank through a BLAST E-Mail server, and it was found to have no homologies in the nucleotide sequence with that of any known DNA: therefore, it was designated as RC101 The expression of the cold-stress induced-gene, RC101, was sustained with Northern Blot analysis by using the cloned DDRT-PCR product as a probe.
The primary step for efficient control of viral diseases is the development of simple, rapid, and sensitive virus detection. Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) has been used to detect viral RNA molecules because of its simplicity and high sensitivity for a number of viruses. RT-LAMP for the detection of Potato virus X (PVX) was developed and compared with conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to demonstrate its advantages over RT-PCR. RT-LAMP reactions were conducted with or without a set of loop primers since one out of six primers showed PVX specificity. Based on real-time monitoring, RT-LAMP detected PVX around 30 min, compared to 120 min for RT-PCR. By adding a fluorescent reagent during the reaction, the extra step of visualization by gel electrophoresis was not necessary. RT-LAMP was conducted using simple inexpensive instruments and a regular incubator to evaluate whether RNA could be amplified at a constant temperature instead of using an expensive thermal cycler. This study shows the potential of RT-LAMP for the diagnosis of viral diseases and PVX epidemiology because of its simplicity and rapidness compared to RT-PCR.
폴리오 바이러스는 전형적인 장관계 바이러스로 마비, 무균성 수막염, 뇌염 등을 유발한다. 폴리오 바이러스는 분변-구강 경로를 통해 전파되며, 오염된 물을 음용수로 사용할 시 공중 보건에 문제가 될 수 있으므로 먹는 물에서 폴리오 바이러스를 검출하는 것은 중요하다. 감염성이 있는 바이 러스와 불활성화(열처리와 자외선 처리)시킨 바이러스를 세포배양법, 역전사 중합효소 연쇄반응법(reverse transcription-polymerase chain reaction: RT-PCR)그리고 세포배양-중합효소 연쇄반응 통합법(integrated cell culture-PCR: ICC-PCR)으로 검출 실험을 했다. 감염성이 있는 폴리오 바이러스는 세 가지 방법으로 모두 검출이 되었으며, 이 중에서 바이러스를 검출하는데 ICC-PCR 방법이 가장 민감했다. 세포배양법은 적은 수의 바이러스를 검출하는데 약 2주의 긴 시간이 걸렸다. 열처리나 자외선 처리로 불활성화된 바이 러스는 세포배양과 ICC-PCR방법으로는 검출이 되지 않았다. 자외선 처리한 바이러스는 RT-PCR 방법으로 검출되지 않았으나 열처리한 바이러스는 검출되었다. RT-PCR 방법은 감염성 바이러스뿐 아니라 불활성화된 바이러스도 검출할 수 있으므로 감염성이 있는지 없는지를 구분할 수 없는 단점이 있다. 이와 같은 결과는 감염성 있는 바이러스를 가장 민감하고 효과적으로 검출하는 방법이 ICC-PCR 방법이라는 것을 제시하여 준다.
본 연구는 무균성수막염 의심환자의 다양한 검체로부터 enterovirus의 진단을 위하여 real-time NASBA, 2 step RT-PCR 시험과 세포배양 시험을 각각 실시하여 각 시험법의 검출율, 특이도, 사용자 편리성, 시험소요 시간, 교차오염의 가능성 등을 비교 검토하였다. 비교시험 결과 전체 292건의 검체로부터 real-time NASBA에서 145건, 세포배양에서 101건, 2 step RT-PCR에서 86건이 양성으로 나타나 real-time NASBA가 가장 검출율이 높은 시험법임을 알 수 있었다. Enterovirus 외의 무균성수막염 원인바이러스에 대한 특이도 비교 시험결과 2 step RT-PCR 시험에서 rhinovirus 10건 중 1건이 위양성 반응을 나타내어 다른 시험법에 비해 특이도가 떨어지는 것으로 나타났다. Real-time NASBA는 하나의 튜브에서 증폭과 검출이 동시에 일어나 다른 시험과 비교하여 교차오염의 가능성이 낮으며 또한 시험 소요시간이 5시간 정도로 세포배양(5-14일 소요) 및 2 step RT-PCR(9시간소요) 에 비하여 신속하게 진단할 수 있어 일선병원이나 실험실에서 enterovirus를 검출을 위하여 적용할 수 있을 것으로 사료된다.
A single-step multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay was developed for the simultaneous detection of five cucurbit-infecting viruses: cucumber mosaic virus (CMV), watermelon mosaic virus 2 (WMV2), zucchini yellow mosaic virus (ZYMV), cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV), and kyuri green mottle mosaic virus (KGMMV). The multiplex RT-PCR provides a simple and rapid method for detecting various viruses in cucurbit plants, which will help diagnose many cucurbit plants at a time.
Monocyte adhesion involves specific cell surface receptors, integrins and results in cell differentiation. We have studied expression and regulation of integrin .${\alpha}_5{\beta}_1$ during differntiation of U937 as in vitro model. To determine expression of integrin ${\alpha}_5{\beta}_1$ during differentiation of U937 as in vitro model. To determine expression of integrin ${\alpha}_5{\beta}_1$ genes by RT-PCR (reverse transcription and polymerase chain reaction) method. We determined expression of integrin ${\alpha}_5{\beta}_1$ genes by RT-PCE (reverse transcription and polymerase chain reaction) method. We found that expression of integrin .alpha.5.betha.1 was greatly increased during PMA-induced differentiation of U937 cells and also found that PMA-induced expression of integrin ${\alpha}_5{\beta}_1$ was inhibited by colchicine, microtubule depoly merizing agent. These results indicate that microtubular integrity is associated with expression of integrin. ${\alpha}_5{\beta}_1$ during PMA-induced differentiation of U937 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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