The hydrogen-producting bacterium was isolated from fresh water and identified as Enterbacter cloacae. The isolated was named Enterobacter cloacae YJ-1. In batch culture, The optimum cultivation temperature and pH of strain YJ-1 was 35$^{\circ}C$ and 7.5, respectively. All of the added glucose was consumed completely during fermentation even though pH was not controlled. Amount of hydrogen produced on each condition of 2% glucose, 4% sucrose and 5% fructose was 950, 1000 and 948 mL/L, respectively and resulted in increasing hydrogen production approximately 2.5-times more than controlled condition. The macimum hydrogen production was obtained when 50mM phosphate was added. was obtained when 50mM phosphate was added. In repeated0batch culture, yeast extract, but the production amount was not changed on the condition of over 0.5%, Most of the organic acides produced during the fermentation were formic and acetic acid, and propionic acid was moiety also generated.
Strains degrading ethylene glycol(EG) and terephthalic acid(TPA) were isolated from water systems, and identified as Pseudomonas sp. They were named as Pseudomonas sp. EAW for EG and as Pseudomonas sp. TS2 for TPA. The optimal culture conditions of temperature, pH and nitrogen source were found to be $35^{\circ}C$, 7.5 and ammonium sulfate, respectively. The growth of strains and removal efficiency was slightly promoted by trace elements such as niacin and biotin in case of EG, and by trace elements such as $Na_2MoO_4{\cdot}2H_2O$ and thiamin i case of TPA. With increasing inoculation sloe for batch culture, the removal efficiency of EG by the strain EAW was conspicuously increased, while the removal efficiency of TPA by the strain TS2 was not changed as much as that of EG. The growth rate of the strain EAW was much more decreased than that of the strain TS2 in the enrichment medium, as the frequency of repeated-batch culture in the rich-medium increased. in case of real wastewater, growth rate and removal efficiencies of EG and TPA were lower than those in the enrichment medium. $COD_{Mn}\;and\;COD_{Cr}$ removal efficiencies after 48 hrs batch culture in real wastewater were 89% and 93%, respectively. The specific growth rate was inhibited when the initial concentration of EG or TPA was more than 25g/L.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1995.06a
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pp.67-78
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1995
Monoclonal antibodies (MoAbs) are a highly diversified class of proteins with major research and commercial applications such as diagnostics and therapeutics. Currently, the dominant method for producing MoAbs is through the hybridoma technique. However, this technique is slow, tedious, labor intensive, and expensive. The production of MoAbs in cultured transgenic plant cells can offer some advantages over that in the over that in the mammalian systems. The media to cultivate plant cells are well defined and inexpensive. Contamination by bacteria or fungi is easily monitored in plant tissue cultures. Furthermore, these contaminants are usually not potent pathogens to human beings. In our interdisciplinary research efforts, heavy chain monoclonal antibody (HC MAb) was inserted into Ti plasmid vector and transferred into A. tumefaciens for the transformation in tobacco cells. It was found that 76% of the transformants produced HC MAb. The presence of HC MAb in the cell membrane fraction indicated that the signal peptide was functional and efficient. The change of the HC MAb concentration during a batch culture followed a similar trend as dry cell concentration, indicating that the production of HC MAb was growth related. The long-term repeated subcultures of 11 cell lines showed that there was no obvious trend of neither the decrease nor the increase of the productivity with the repeated subcultures.
The hydrogen-producing bacterium was isolated from fresh water and identified as Enterobacter cloacae. The isolated was named Enterobacter cloacae YJ-1. In batch culture, The optimum cultivation temperature and pH of strain YJ-1 was 35℃ and 7.5, respectively. All of the added glucose was consumed completely during fermentation even though pH was not controlled. Amount of hydrogen produced on each condition of 2% glucose, 4% sucrose and 5% fructose was 950, 1000 and 948 mL/L, respectively and resulted in increasing hydrogen production approximately 2.5-times more than controlled condition. The maximum hydrogen production was obtained when 50 mM phosphate was added. In repeated-batch culture, hydrogen gas of 1920 mL/L was totally produced for 48. The maximum hydrogen was produced on the condition of 0.5% yeast extract, but the production amount was not changed on the condition of over 0.5%. Most of the organic acids produced during the fermentation were formic and acetic acid, and propionic acid was moiety also generated.
To determine the cost-effectiveness of converting fish waste into liquid fertilizer, this study analyzed the production of 3 L of liquid fertilizer from the fermentation of fish waste. The total product cost of the fertilizer was calculated to be $165.26 for a one-batch operation. If the seed culture was repeated five times, the total product cost could be reduced to $36.39/L. According to this analysis, the reutilization of fish waste as liquid fertilizer was not particularly economically attractive at present, and plant-scale production would be necessary for commercialization. This is the first cost-effectiveness analysis of the bioconversion of fish waste into liquid fertilizer.
Aspergillus terreus NRRL 1960 was immobilized on various alginate gel beads, Celites, and polyurethane foam cubes, and the comparisons were made for the production of itaconic acid according to the types and sizes of each carrier. The levels of itaconic acid produced from Ca- alginate and Sr-alginate were similar, and the addition of bentonite to Ca- and Sr-alginate resulted in an increase of itaconic acid. The addition of 1.67% bentonite and 0.33% starch to Sr-alginate (SABS bead) produced higher level of itaconic acid (11.59 g/1) than other gel beads. A decrease in the size of Celite increased the itaconic acid production, and the smallest size of Celites, R- 634, produced 6.37 g/l of itaconic acid. Among various types of polyurethane foam cubes, HR 08 (2X2X2 cm) produced about 19 g/l of itaconic acid, which was more efficient than other carriers. In a repeated batch culture using immobilized cells on polyurethane foam cubes (HR 08, 2X2X2 cm), the stability of itaconic acid production was maintained up to 4 batches. Also, the possibility of itaconic acid production by continuous culture was shown in a packed-bed reactor.
Dissolved oxygen level of cell culture media has a critical effect on cellular metabolism, which governs specific productivity of recombinant proteins and mammalian cell growth However, in the cores of cell aggregates or cell-immobilized beads, oxygen level frequently goes below a critical level. Mammalian cells have a number of genes induced in the lower level of oxygen, and the genes contain a common cis-acting element (-RCGTG-), hypoxia response element (HRE). By binding of hypoxia inducible factor-l (HIF-I) to the HRE, promoters of hypoxia inducible genes are activated, which is a survival mechanism. In this work, to develop a CHO cell capable of producing recombinant proteins in immobilization and high density cell culture efficiently, mammalian expression vectors containing human tissue-type plasminogen activator (t-PA) gene controlled by HRE were constructed and stably transfected into the CHO cells. In $Ba^{2+}$ -alginate immobilization culture, CHO/pCl/dhfr/2HRE-t-PA cells produced 2 folds higher recombinant t-PA activity than CHO/pCl/dhfrlt-PA cells without $CoCl_2$ treatment. Furthermore, in repeated fed batch culture, productivity of t-PA in immobilized CHO/pCI/dhfr/2HRE-t-PA cells was 121 ng/ml/day, total production of 0.968 mg/day at 11 days culture while CHO/pCIIdhfrlt-PA cells was 22.8 ng/ml/day. All these results indicate that HRE is very useful for the enhancement of protein productivity in mammalian cell cultures.
To improve the hydrogen yield from biological fermentation of organic wastewater, a co-culture system of dark- and photo-fermentation bacteria was investigated. In a pure-culture system of the dark-fermentation bacterium Clostridium butyricum, a pH of 6.25 was found to be optimal, resulting in a hydrogen production rate of 18.7 ml-$H_2/l/h$. On the other hand, the photosynthetic bacterium Rhodobacter sphaeroides could produce the most hydrogen at 1.81mol-$H_2/mol$-glucose at pH 7.0. The maximum specific growth rate of R. sphaeroides was determined to be 2.93 $h^{-1}$ when acetic acid was used as the carbon source, a result that was significantly higher than that obtained using either glucose or a mixture of volatile fatty acids (VFAs). Acetic acid best supported R. sphaeroides cell growth but not hydrogen production. In the co-culture system with glucose, hydrogen could be steadily produced without any lag phase. There were distinguishable inflection points in a plot of accumulated hydrogen over time, resulting from the dynamic production or consumption of VFAs by the interaction between the dark- and photo-fermentation bacteria. Lastly, the hydrogen production rate of a repeated fed-batch run was 15.9 ml-$H_2/l/h$, which was achievable in a sustainable manner.
Kim, Sang-Hyoun;Han, Sun-Kee;Youn, Jong-Ho;Shin, Hang-Sik
Journal of the Korea Organic Resources Recycling Association
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v.11
no.1
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pp.70-76
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2003
Continuous anaerobic hydrogen production with a mixed culture was investigated. With a sucrose concentration of 5g COD/L in the feed, hydrogen production exceeded $0.5mole\;H_2/mole\;hexose$ was found at the early stage, however it did not maintain longer than 9days. It was assumed that the failure was caused by insufficient active hydrogen producing bacteria in the reactor. Therefore, effects of pH control, repeated heat treatment and substrate concentration on sustainable continuous anaerobic hydrogen production was examined to find out operating conditions to sustainable hydrogen production. Decrease of hydrogen production was not overcome by only pH control at 5.3. Repeated heat treatment could recover hydrogen producing activity without any external inoculum supply. However, frequent heat treatment was needed because the treated sludge also showed the tendency in decrease of hydrogen production. With a sucrose concentration of 30g COD/L in the feed, hydrogen production maintained $1.0-1.4mole\;H_2/mole\;hexose$ in continuously stirred tank reactor and $0.2-0.3mole\;H_2/mole\;hexose$ in anaerobic sequencing batch reactor) for 24days. More than 90% of soluble organics in effluent was organic acids, in which n-butyrate was the most one.
A Pseudomonas sp. strain NGK1 (NCIM 5120) capable of utilizing salicylate was immobilized in alginate and polyurethane foam (PUF). The degradation rate of salicylate by freely suspended cells was compared with the degradation rate by immobilized cells. In an initial 20 and 40 mM salicylate, free cells ($2{\times}10^{11}\;cfu\;ml^{-1}$) degraded to 16 and 14 mM, alginate-entrapped cells degraded to 18 and 26 mM, and PUF-entrapped cells degraded to 20 and 32 mM salicylate, respectively, in batch cultures. The alginate-and PUF-entrapped cells were used in repeated batch and continuous culture systems. The efficiency of both the immobilized systems f3r the degradation of salicylate was compared. It has been observed that the PUF-entrapped cells could be reused for more than 20 cycles whereas alginate-entrapped cells could be reused for a maximum of only 12 cycles, after which a decrease in degradation rat was observed with the initial 20 and 40 mM salicylate. The continuous degradation of sallcylate by freely suspended cells showed a negligible degradation rate of salicylate when compared with immobilized cells. With the immobilized cells in both alginate and polyurethane foam, the degradation rate increased with an increase in the dilution rate up to $2\;h^{-1}$ for 20 mM, and $1.5\;h^{-1}$ for 40 mM salicylate. The results revealed that PUF-entrapped cells were more efficient for the degradation of salicylate than alginate-entrapped cells and freely suspended cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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