A novel method is developed to yield virus titers in 10 h, is easy to .perform using 96-well plates, and applicable to both any Autographa californica nucleopolyhyderovirus (AcNPV) and Bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV)-based recombinant baculovirus. This assay uses an antibody to a DNA-binding protein to detect the infected cells via immune-staining. The titer is determined by counting foci produced due to infection of virus under a fluorescent microscopy. The required incubation period was shortened considerably because infected cells expressed viral antigens at the post infection time of 4 h. Therefore, 10 hours were enough to estimate the virus titer including virus infection time, insect cell culture, and estimation of virus titer.
A genomic library of a mesophilic cellulolytic anaerobe, Clostridium sp. KCTC 8440 DNA was constructed in Escherichia coli using plasmid pUC9. Clones of E. coli exhibiting carboxymethyl cellulose-hydrolyzing activity (CMCase) were isolated and divided into seven types based on the restriction enzyme patterns of recombinant plasmids. E. coli strains carrying type A genes showed activity on carboxymethyl cellulose about 7-8 times greater than clones carrying genes of other types. Restriction maps of the cloned DNA fragments were determined, and homologies between them were investigated. The results suggest that Clostridium sp. KCTC 8440 has seven distinct CMCase genes.
Recent advances in recombinant DNA techniques have provided a tool for breeding of microorganisms of hyper production. Enzyme production by cloned microorganism has some advantages. They are ⅰ) Enzymes can be produced by a microorganism easily cultured ⅱ) Hyper production. ⅲ) In some cases, such as thermophilic enzyme gene is cloned in a mesophilic bacteria, the enzyme purification procedure can be simplified. One example, production of thermophilic ${\beta}$-galactosidase in B. subtilis will be presented. Bacillus stearothermophilus IAM 11001 produced three ${\beta}$-galactosidases, ${\beta}$-galactosidase I, II and III (${\beta}$-gal-I, II and III). By connecting restriction fragments of the chromosomal DNA to plasmid vector, followed by transformation of Escherichia coli, two ${\beta}$-galactosidase genes (bgaA and bgaB) located close to each other on the chromosome were cloned.
A DNA fragment containing the gene for cell wall hydrolase of alkalophilic Bacillus subtilis BL-29 was cloned into E. coli JM109 using pUC18 as a vector. A recombinant plasmid, designated pCWL45B, was contained in the fragment originating from the alkalophilic B. subtilis BL-29 chromosomal DNA by Southern hybridization analysis. The nucleotide sequence of a 1.6-kb HindIII fragment containing a cell wall hydrolase-encoding gene was determined. The nucleotide sequence revealed an open reading frame (ORF) of 900 bp with a concensus ribosome-binding site located 6 nucleotide upstream from the ATG start codon. The primary amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence revealed a putative protein of 299 amino acid residues with an M.W. of 33, 206. Based on comparison of the amino acid sequence of the ORF with amino acid sequences in the GenBank data, it showed significant homology to the sequence of cell wall amidase of the PBSX bacteriophage of B. subtilis.
Chromosomal DNA fragments of Bacillus sp. YA-14 isolated from soil as a potent xylan hydrolyzing bacterium, were ligated to a vector plasmid, pBR322, and used to transfer Escherichia coli HB101 cells. The recombinant plasmid pYDC21 was found to enable the transformants to produce xylanase. pYDC21 was found to contain the 3 kb HindIII fragment originated from the Bacillus sp. YA-14 chromosomal DNA by southern hybridization. The optimum temperature and pH for the reaction of xylanse produced by E. coli (pYDC21) were appeared at 50$_7$C and pH 7.0, respectiveiy. the xylanase enzyme was stable between pH 5.0 and 7.0 and maintained stably up to 4$0^{\circ}C$.
A 16 kilobase (kb) HindIII fragment of alkalophilic Bacillus sp. YC-335 containing a gene for xylanase synthesis was inserted at the HindIII site of pBR322 and cloned in Escherichia coli HB101. After subcloning of recombinant plasmid pYS52, the 1.5 kb fragment was found to code for xylanase activity, and the hybrid plasmid was named pYS55. The DNA insert of the plasmid was subjected to restriction enzyme mapping, which showed that pYS55 had single site for PuvII and SstI in the 1.5 kb insert fragment. Southern hybridization analysis revealed that the cloned gene was hybridized with chromosomal DNA from alkalophilic Bacillus sp. YC-335. About 64% of the enzyme activity was observed in the extracellular and periplasmic space of E. coli HB10l carrying pYS55.
A gene coding for the GST of cotton (Gh-5) was cloned into Escherichia coli and experssed. The enzyme remained within the cytoplasm of E. coli. An 696 bp open reading frame was in the 988 base pair fragment of the recombinant plasmid pET-30b(+). The deduced protein sequence consists of 232 amino acids and has a molecular mass of 30235.58 Da. The cloned enzyme conjugated reduced glutathione and 1-chloro-2,4-dinitrobenzene (CDNB). Plant GST cDNA was expressed in microbe and produced polypeptide had function as an enzyme.
Bovine follicular oocytes were matured in two different conditions, TCM 199+10% FBS with or without hormones (0.01 unit/ml ovine follicle stimulating hormone, 0.01 unit/ml ovine luteinizing hormone and 1$\mu\textrm{g}$/ml $\beta$-estradiol). There was no significant difference in maturation and fertilization rates of the oocytes between two groups. The result indicates that hormonal treatment does not have beneficial effect on in vitro maturation and fertilization of follicular oocytes. IVF-derived cone-cell bovine embryos were injected with foreign DNA (CChcLf) by microinjection method and then co-cultrued with bovine oviductal epithelial cells. Developmental rate of microinjected embryos to blastocyst stage (21%) was similar to that of non-injected embryos(29%). This result represents that microinjected bovine embryos produced in vitro have a potential of development to normal blastocysts.
Southern hybridization of genomic DNAs with radioactively labeled cDNA of tomato proteinase inhibitor II revealed that proteinase inhibitor II proteins in potato plants are encoded by a family of about 10 related sequences. Screening of potato EcoRI genomic library with the cDNA resulted in isolation of 13 recombinant phage clones which carry 3 different genomic regions. Of these clones, clones 8, 18, and 39 were subjected to restriction mapping and subcloning. Further characterization of the subclones of clones 8, 18 and 39 indicated that two inhibitor II genes are present on a 8.0 kb EcoRI fragment of clone 8, one on 3.3 and 0.8 kb EcoRI fragments of clone 18 and two genes on a 13.5 kb EcoRI fragment of clone 39.
Gene for lactose catabolism in Lactobacillus casei SW-M1 was encoded by a 60Kb metabolic plasmid. A derivative of only 10kb, pPlac 15 of recombinant plasmid, was constructed by introducing into pBR322 and was cloned into E. coli using restriction endonuclease Pst I. A 10kb insery DNA in plasmid pBR322 was identified as a gene encoded phospho-$\beta$-galactosidase by the determination of enzyme activity. Phospho-$\beta$-galactosidase was apparently expressed in E. coli. The enzyme activities of cell-free extract from transformant E. coli HB101 carrying pPLac 15 DNA were not different from that of L. casei as a donor strain on the basis of enzyme properites. However, specific activity of phospho-$\beta$-galactosidase in the cloned strain with Lac $Y^{-}$ phenotype of E. coli HB101 was lower than that in L. casei strain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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