Edwardsiella tarda is a gram-negative pathogenic bacterium in aquaculture that can cause hemorrhagic septicemia in fish. Many secreted proteins have already been identified as virulent factors of E. tarda. Moreover, since virulent phenotypes are based on the expression regulation of virulent genes, understanding the expression profile of virulent genes is important. A quantitative RT-PCR is one of the preferred methods for determining different gene expressions. However, this requires the selection of a stable reference gene in E. tarda, which has not yet been systematically studied. Accordingly, this study evaluated nine candidate reference genes (recA, uup, rpoB, rho, topA, gyrA, groEL, rpoD, and 16S rRNA) using the Excel-based programs BestKeeper, GeNorm, and NormFinder under different culture conditions. The results showed that 16S rRNA was more stable than the other genes at different culture growth phases. However, at the same culture time, topA was identified as the reference gene under the conditions of different strains, different culture media, and infection, whereas gyrA was identified under the condition of different temperatures. Thus, in experiments, the expression of gapA and fbaA in E. tarda was analyzed by RT-qPCR using 16S rRNA, recA, and uup as the reference genes. The results showed that 16S rRNA was the most suitable reference gene in this analysis, and that using unsuitable reference genes resulted in inaccurate results.
Validation of viral safety is essential in ensuring the safety of mammalian cell culture-derived biopharmaceuticals, because numerous adventitious viruses have been contaminated during the manufacture of the products. Mammalian cells are highly susceptible to Reovirus type 3 (Reo-3), and there are several reports of Reo-3 contamination during the manufacture of biopharmaceuticals. In order to establish the validation system for the Reo-3 safety, a real-time RT-PCR method was developed for quantitative detection of Reo-3 in cell lines, raw materials, manufacturing processes, and final products as well as Reo-3 clearance validation. Specific primers for amplification of Reo-3 RNA was selected, and Reo-3 RNA was quantified by use of SYBR Green I. The sensitivity of the assay was calculated to be $3.2{\times}10^0\;TCID_{50}/ml$. The real-time RT-PCR method was proven to be reproducible and very specific to Reo-3. The established real-time RT-PCR assay was successfully applied to the validation of Chinese hamster ovary (CHO) cell artificially infected with Reo-3. Reo-3 RNA could be quantified in CHO cell as well as culture supernatant. When the real-time RT-PCR assay was applied to the validation of virus removal during a virus filtration process, the result was similar to that of virus infectivity assay. Therefore, it was concluded that this rapid, specific, sensitive, and robust assay could replace infectivity assay for detection and clearance validation of Reo-3.
Objectives: MicroRNAs (miRNAs) are important regulators of many physiological and pathological processes, including tumorigenesis and metastasis. In this study, we sought to determine the underlying molecular mechanisms of metastatic cervical carcinoma by performing miRNA profiling. Methods: Tissue samples were collected from ten cervical squamous cancer patients who underwent hysterectomy and pelvic lymph node (PLN) dissection in our hospital, including four PLN-positive (metastatic) cases and six PLN-negative (non-metastatic) cases. A miRNA microarray platform with 1223 probes was used to determine the miRNA expression profiles of these two tissue types and case groups. MiRNAs having at least 4-fold differential expression between PLN-positive and PLN-negative cervical cancer tissues were bioinformatically analyzed for target gene prediction. MiRNAs with tumor-associated target genes were validated by quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). Results: Thirty-nine miRNAs were differentially expressed (>4-fold) between the PLN-positive and PLN-negative groups, of which, 22 were up-regulated and 17 were down-regulated. Sixty-nine percent of the miRNAs (27/39) had tumor-associated target genes, and the expression levels of six of those (miR-126, miR-96, miR-144, miR-657, miR-490-5p, and miR-323-3p) were confirmed by quantitative (q)RT-PCR. Conclusions: Six MiRNAs with predicted tumor-associated target genes encoding proteins that are known to be involved in cell adhesion, cytoskeletal remodeling, cell proliferation, cell migration, and apoptosis were identified. These findings suggest that a panel of miRNAs may regulate multiple and various steps of the metastasis cascade by targeting metastasis-associated genes. Since these six miRNAs are predicted to target tumor-associated genes, it is likely that they contribute to the metastatic potential of cervical cancer and may aid in prognosis or molecular therapy.
벼도열병균 14개 균주와 벼 이외 화본과 식물 도열병균 12개 균주를 대상으로 rDNA의 ITS II 부위를 증폭하여 그들의 핵산 구조 차이를 분석함으로 도열병균 균주간 분류를 시도하였다. 5.8S rDNA의 3`-말단 부위와 28S rDNA의 5`-말단 부위의 sequence 중 5`-CCCGGGAATTCGCATCGATCGATCGAATGAAGA-ACGCAGC-3`와 5`-CCCGGGATCCTCCGCTTATT-GATATGC-3`를 이용하여 PCR 증폭을 하였을 때 벼도열병균 14개 균주는 동일한 길이의 단일 밴드를 형성하였으며 벼 이외 화본과 식물 도열병균에서는 레드톱 식물로부터 분리한 도열병균만이 나머지 균주보다 38bp가 더 큰 길이를 가진 밴드를 형성하였다. PCR로 증폭된 DNA를 HaeIII와 MspI 제한효소로 절단하였을 때 벼도열병균 레이스간에는 제한효소 절단에 의한 전기영동 밴드 형태 차이를 관찰할 수 없었으나, 벼 이외 화본과 식물 도열병균 12개 균주는 3군으로 구분할 수 있었다. 벼도열병균 90=054와 강아지풀에서 분리한 도열병균 G90-5, 기장에서 분리한 G88-4, 바랭이에서 분리한 G88-5 그리고 레드톱에서 분리한 RT 균주의 ITS II 부위의 DNA 염기서열 비교 분석에 의하면 G88-4와는 다른 HaeIII와 MspI 제한효소 위치를 가지고 있었기에 제한효소 절단에 의한 전기영동 형태가 상이하였다. 또한 RT균주는 HaeIII와 MspI위치가 존재하지 않았다.
Human Astrovirus (HuAstV) is an important gastrointestinal pathogen that is frequently reported worldwide. Monitoring of contaminated groundwater has been suggested since HuAstV is transmitted through the fecal-oral route. This study developed a test method based on conventional reverse transcription (RT)-nested polymerase chain reaction (PCR) that involves SL® non-specific reaction inhibitor for unknown non-specific amplification taking place in the groundwater environment. An optimal method for detecting HuAstV in groundwater sample through analysis and comparison against conventionally reported method was also suggested. The developed method enabled the production of nested PCR amplicon of 630 nt, which is a sufficient length for similarity analysis based on sequencing and genotyping. Amplicons suspected to be HuAstV were amplified in two out of the twenty groundwater samples collected in Korea, presenting 99.77% and 99.73% similarity against HuAstV 1 strain lhar/2011/kor (JN887820.1) in sequencing, respectively. These amplicons were identified as HuAstV 1.
Kim, Soo-Jin;Rim, Kyung-Taek;Lee, Seong-Bae;Kim, Hyeon-Yeong
Molecular & Cellular Toxicology
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v.4
no.3
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pp.211-217
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2008
To clarify the DNA damage from reactive oxygen species, we measured the DNA damage through Fpg/Endo III FLARE (Fragment Length Analysis with Repair Enzyme) assay and real time RT-PCR. The 80 SD rats assigned to 4 dose groups exposed to cumene vapor for 90 days. With Fpg/Endo III FLARE assay in hepatocytes, we found the OTM (Olive Tail Moment) and TL (Tail Length) significantly increased in no-enzyme treated and Fpg-treated control and 8 ppm groups with 28 days exposure. In Endo III-treated 8 ppm group, significantly increased the values with 90 days exposure. With lymphocytes, it was founded the values significantly increased in no-enzyme treated 800 ppm group in 28 and 90 days. It was significantly increased in Endo III-treated 80 ppm for 28 days and 800 ppm for 90 days. From the above findings, FLARE assay was suggested as being available as a biological marker for DNA damage induced by cumene exposure in SD rats. And we used real time RT-PCR for the OGG1 mRNA expression, it had dose-dependent biologic effects in 1 day exposure, but decrease the levels of rOGG1 mRNA. Our findings provide evidence that cumene exposure may cause suppression of rOGG1 in the rat hepatocytes or lymphocytes.
Choi Gyu Ho;Kim Su Nam;Lee So Hee;Sung Dae Seok;Son Eui Dong;Lee Chang Hoon;Lee Byeong Gon;Jang Ih Seop
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.30
no.3
s.47
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pp.389-392
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2004
We screened several materials to stimulate IGF-1 promoter activity using luciferase reporter assay and found that Amomi Semen extract (ASE) among them is the most powerful stimulator We also studied about the anti-wrinkle effect of ethanolic extract of Amoni Semen in vitro and in vivo. Semi-quantitative RT-PCR showed that the extract elevated the presence level of IGF-1 mRNA. And $[^3H]$ proline incorporation and semi-quantitative RT-PCR showed that the extract increased the expression of type-I collagen compared with vehicle in vitro and in vivo, respectively. Significant inhibition of MMP-1 expression was determined by ELISA and Western blot. Finally, topical treatment of the extract on hairless mouse's dorsal skin expanded the volume of collagen and dermal thickness. These results suggest that Amomi Semen may be a good candidate for improving extracellular matrix through the increase of collagen expression and inhibition of MMP-1 expression. Moreover, this study enables us to guess that IGF-1 stimulated by the extract may be involved in the mechanism of anti-wrinkle effect of it.
Cell cycle progression is regulated by both transcriptional and post-transcriptional mechanisms. MicroRNAs (miRNAs) emerge as a new class of small non-coding RNA regulators of cell cycle as recent evidence suggests. It is hypothesized that expression of specific miRNAs oscillates orderly along with cell cycle progression. However, the oscillated expression patterns of many candidate miRNAs have yet to be determined. Here, we describe miRNA expression profiling in double-thymidine synchronized HeLa cells as cell cycle progresses. Twenty-five differentially expressed miRNAs were classified into five groups based on their cell cycle-dependent expression patterns. The cyclic expression of six miRNAs (miR-221, let-7a, miR-21, miR-34a, miR-24, miR-376b) was validated by real-time quantitative RT-PCR (qRT-PCR). These results suggest that specific miRNAs, along with other key factors are required for maintaining and regulating proper cell cycle progression. The study deepens our understanding on cell cycle regulation.
HSP70 has widely been induced in in vivo hyperthermia conditions in various organisms to study gene regulation and recently neuroprotectve roles of the induced gene expression under varying conditions. We investigated different responses among various tissues in zebrafish under heat shock to evaluate whether spatial and temporal expression pattern of zebrafish (z) hsp70 in transcriptional and translational level under heat shock stress in different brain regions. Heat shock groups were given for 1 h at $37^{\circ}C$ after recovery by transferring the treated animals back to $28^{\circ}C$ for 1, 2 and 24 h for recovery, respectively. Control (CTRL) group was kept at $28^{\circ}C$. At the end of treatments, five animals were collected and used for isolation of total RNAs and peptides from the corresponding tissues. Expression of zhsp70 mRNA showed different patterns in recovery periods in the tissues including the brain, eye, intestines, muscles, heart and testis by RT-PCR. Unlike the RT-PCR analysis, Northern blot analysis demonstrated nearly 30-fold increase in zhsp70 at 1 h heat shock, suggesting that RT-PCR may not be appropriate in unmasking regulation of the time-dependent zhsp70 expression. In the experiment involving different brain regions, the cerebellum showed gradual activation at 1 h to R1h and decreases in R2h and R24h, while the medulla oblongata and optic tectum showed gradual increase at R1h and decrease at R24h, indicating that different brain tissues respond specifically to heat shock in inducing zhsp70 and recovering from the heat shock status. Western blot analysis also demonstrated that the intracellular levels of zHSP70 in three different brain regions including the cerebellum, medulla oblongata and optic tectum are differently induced and recovered to normal state. These results clearly demonstrate that different regions of the body and the brain tissues are responding differently to heat shock in the aspects of its level of expression and speed of recovery.
Kim, Hye-Ryung;Park, Jonghyun;Han, Hyung-Soo;Kim, Yu-Kyung;Jeon, Hyo-Sung;Park, Seung-Chun;Park, Choi-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.44
no.3
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pp.163-168
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2021
The rapid and reliable detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) plays a key role in isolating infected patients and preventing further viral transmission. In this study, we evaluated the clinical diagnostic performances of a commercial real-time reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RRT-LAMP) assay (Isopollo® COVID-2 assay, M-monitor, Daegu, Korea) using eighty COVID-19 suspected clinical samples and compared these with the results of a commercial real-time reverse transcription polymerase chain reaction (RT-qPCR) assay (AllplexTM 2019-nCoV rRT-QPCR Assay, SeeGene, Seoul, Korea). The results of the RRT-LAMP assay targeting the N or RdRp gene of SARS-CoV-2 showed perfect agreement with the RT-qPCR assay results in terms of detection. Furthermore, the RRT-LAMP assay was completed in just within a 20-min reaction time, which is significantly faster than about the 2 h currently required for the RT-qPCR assay, thus enabling prompt decision making regarding the isolation of infected patients. The RRT-LAMP assay will be a valuable tool for rapid, sensitive, and specific detection of SARS-CoV-2 in human or unexpected animal clinical cases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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