Plant phytochromes, molecular light switches that regulate various aspects of plant growth and development, are known as autophosphorylating serine/threonine kinases. Although recent studies reveal that phytochrome autophosphorylation plays an important role in the regulation of phytochrome signaling through the control of phyA protein stability, the in vivo functional roles of phytochrome kinase activity in plant light signaling are largely unknown. Thus, it is necessary to investigate the detailed function of phytochrome as a protein kinase, which might include mapping of kinase domain on the phytochrome molecule, searching for substrates that could be phosphorylated by phyA, and in vivo functional analysis of the kinase activity with phytochrome mutants displaying reduced kinase activity. Our recent studies reveal that the kinase activity of phytochrome plays a positive role in plant light signaling. Therefore, we highlight the current knowledge about the functional roles of phytochrome kinase activity in the light signal transduction of plants, based on our recent results.
Glutamate causes neurotoxicity through formation of reactive oxygen species and activation of mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathways. MAPK phosphatase-1 (MKP-1) is one of the phosphatases responsible for dephosphorylation/deactivation of three MAPK families: the extracellular signal-regulated kinase-1/2 (ERK-1/2), the c-Jun N-terminal kinase-1/2 (JNK-1/2), and the p38 MAPK. In this report, the potential involvement of MKP-1 in neuroprotective effects of curcumin, the active ingredient of turmeric (Curcuma longa), was examined using HT22 cells. Glutamate caused cell death and activation of ERK-1/2 but not p38 MAPK or JNK-1/2. Blockage of ERK-1/2 by its inhibitor protected HT22 cells against glutamate-induced toxicity. Curcumin attenuated glutamate-induced cell death and ERK-1/2 activation. Interestingly, curcumin induced MKP-1 activation. In HT22 cells transiently transfected with small interfering RNA against MKP-1, curcumin failed to inhibit glutamate-induced ERK-1/2 activation and to protect HT22 cells from glutamate-induced toxicity. These results suggest that curcumin can attenuate glutamate-induced neurotoxicity by activating MKP-1 which acts as the negative regulator of ERK-1/2. This novel pathway may contribute to and explain at least one of the neuroprotective actions of curcumin.
The effects of ginseng saponins, gypsophila saponin, sodium dodecyl sulfate(SDS), and Triton X-100 on membrane $K^+-dependent$ phosphatase activity which is lipid dependent and represents dephosphorylation step of the complete Na+, $K^+-ATPase$ reaction were investigated in this study to elucidate whether the effects of ginseng saponins are due to the detergent action, using sarcolemma enriched preparation isolated from dog ventricle. $Na^+$, $K^+-ATPase$ and $K^+-dependent$ phosphatase activities of cardiac sarcolemma were about $143\;{\mu}mol$ Pi/mg protein/hr and $34\;{\mu}mol$ p-nitrophenol/mg protein/hr, respectively. While ginseng saponins (triol>total>diol) inhibited $K^+-dependent$ phosphatase activity, gypsophila saponin, and low dose of SDS($0.4\;{\mu}g/{\mu}g$ protein), and Triton X-100 ($0.6\;{\mu}g/{\mu}g$ protein) increased the enzyme activity, indicating disruptive effect of detergents on membrane barriers. The activating effect of low doses of Triton X-100 on membrane $K^+-dependent$ phosphatase appeared at concentration decreasing light scattering. However, the inhibitory effect of ginseng saponin appeared before a decrease in light scattering. These results suggest that low concentrations of ginseng saponins inhibit the membrane $K^+-dependent$ phosphatase by interacting directly with enzyme before membrane disruption.
Overexpression of amyloid precursor protein with the Swedish mutation causes abnormal hyperphosphorylation of the microtubule-associated protein tau. Hyperphosphorylated isoforms of tau are major components of neurofibrillary tangles, which are histopathological hallmarks of Alzheimer's disease. Protein phosphatase 2A (PP2A), a major tau protein phosphatase, consists of a structural A subunit, catalytic C subunit, and a variety of regulatory B subunits. The B subunits have been reported to modulate function of the PP2A holoenzyme by regulating substrate binding, enzyme activity, and subcellular localization. In the current study, we characterized regulatory B subunit-specific regulation of tau protein phosphorylation. We showed that the PP2A B subunit PPP2R2A mediated dephosphorylation of tau protein at Ser-199, Ser-202/Thr-205, Thr-231, Ser-262, and Ser-422. Down-regulation of PPP2R5D expression decreased tau phosphorylation at Ser-202/Thr-205, Thr-231, and Ser-422, which indicates activation of the tau kinase glycogen synthase kinase 3 beta ($GSK3{\beta}$) by PP2A with PPP2R5D subunit. The level of activating phosphorylation of the $GSK3{\beta}$ kinase Akt at Thr-308 and Ser-473 were both increased by PPP2R5D knockdown. We also characterized B subunit-specific phosphorylation sites in tau using mass spectrometric analysis. Liquid chromatography-mass spectrometry revealed that the phosphorylation status of the tau protein may be affected by PP2A, depending on the specific B subunits. These studies further our understanding of the function of various B subunits in mediating site-specific regulation of tau protein phosphorylation.
Intercellular adhesion molecule-1 (ICAM-1), which is induced by tumor necrosis factor (TNF)-${\alpha}$, contributes to the entry of immune cells into the site of inflammation in the skin. Here, we show that protein tyrosine phosphatase non-receptor type 21 (PTPN21) negatively regulates ICAM-1 expression in human keratinocytes. PTPN21 expression was transiently induced after stimulation with TNF-${\alpha}$. When overexpressed, PTPN21 inhibited the expression of ICAM-1 in HaCaT cells but PTPN21 C1108S, a phosphatase activity-inactive mutant, failed to inhibit ICAM-1 expression. Nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$), a key transcription factor of ICAM-1 gene expression, was inhibited by PTPN21, but not by PTPN21 C1108S. PTPN21 directly dephosphorylated phospho-inhibitor of ${\kappa}B$ ($I{\kappa}B$)-kinase ${\beta}$ ($IKK{\beta}$) at Ser177/181. This dephosphorylation led to the stabilization of $I{\kappa}B{\alpha}$ and inhibition of NF-${\kappa}B$ activity. Taken together, our results suggest that PTPN21 could be a valuable molecular target for regulation of inflammation in the skin by dephosphorylating p-$IKK{\beta}$ and inhibiting NF-${\kappa}B$ signaling.
Reddy, Rallabandi Harikrishna;Kim, Hackyoung;Cha, Seungbin;Lee, Bongsoo;Kim, Young Jun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.27
no.5
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pp.878-895
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2017
Phosphorylation, a critical mechanism in biological systems, is estimated to be indispensable for about 30% of key biological activities, such as cell cycle progression, migration, and division. It is synergistically balanced by kinases and phosphatases, and any deviation from this balance leads to disease conditions. Pathway or biological activity-based abnormalities in phosphorylation and the type of involved phosphatase influence the outcome, and cause diverse diseases ranging from diabetes, rheumatoid arthritis, and numerous cancers. Protein tyrosine phosphatases (PTPs) are of prime importance in the process of dephosphorylation and catalyze several biological functions. Abnormal PTP activities are reported to result in several human diseases. Consequently, there is an increased demand for potential PTP inhibitory small molecules. Several strategies in structure-based drug designing techniques for potential inhibitory small molecules of PTPs have been explored along with traditional drug designing methods in order to overcome the hurdles in PTP inhibitor discovery. In this review, we discuss druggable PTPs and structure-based virtual screening efforts for successful PTP inhibitor design.
Background: Ginsenosides have been shown to exert beneficial pharmacological effects on the central nervous, cardiovascular, and endocrine systems. We sought to determine whether total ginsenosides (TG) inhibit monocrotaline (MCT)-induced pulmonary hypertension and to elucidate the underlying mechanism. Methods: MCT-intoxicated rats were treated with gradient doses of TG, with or without $N^G$-nitro-$\small{L}$-arginine methyl ester. The levels of molecules involving the regulation of nitric oxide and mitogen-activated protein kinase pathways were determined. Results: TG ameliorated MCT-induced pulmonary hypertension in a dose-dependent manner, as assessed by the right ventricular systolic pressure, the right ventricular hypertrophy index, and pulmonary arterial remodeling. Furthermore, TG increased the levels of pulmonary nitric oxide, endothelial nitric oxide synthase, and cyclic guanosine monophosphate. Lastly, TG increased mitogen-activated protein kinase phosphatase-1 expression and promoted the dephosphorylation of extracellular signal-regulated protein kinases 1/2, p38 mitogen-activated protein kinase, and c-Jun NH2-terminal kinase 1/2. Conclusion: TG attenuates MCT-induced pulmonary hypertension, which may involve in part the regulation of nitric oxide and mitogen-activated protein kinase pathways.
Pyruvate dehydrogenase phosphatase (PDP) is a mitochondrial protein serine/threonine phosphatase that catalyzes the dephosphorylation and concomitant reactivation of the pyruvate dehydrogenase component of the pyruvate dehydrogenase complex (PDC). PDP consists of a catalytic subunit (PDPc, Mr 52,600) and regulatory subunit (PDPr, Mr 95,600). In the presence of $Ca^{2+}$, PDPc binds to the dihydrolipoamide acetyltransferase (E2) component of the pyruvate dehydrogenase complex in proximity to its substrate, the phosphorylated E1 component, thereby increasing the rate of dephosphorylation. PDPc possesses and intrinsic $Ca^{2+}$ binding site and a second $Ca^{2+}$ site is generated in the presence of E2. Using the unique interaction, highly pure PDPc was produced by the GSH-Sepharose-GST-L2 matrix with a specific activity of approx. 1000 U/mg and a yield of about 80%.
Voltage-gated $Ca^{2+}$ ($Ca_V$) channels are dynamically modulated by Gprotein-coupled receptors (GPCR). The $M_1$ muscarinic receptor stimulation is known to enhance $Ca_V2.3$ channel gating through the activation of protein kinase C (PKC). Here, we found that $M_1$ receptors also inhibit $Ca_V2.3$ currents when the channels are fully activated by PKC. In whole-cell configuration, the application of phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA), a PKC activator, potentiated $Ca_V2.3$ currents by ~two-fold. After the PMA-induced potentiation, stimulation of $M_1$ receptors decreased the $Ca_V2.3$ currents by $52{\pm}8%$. We examined whether the depletion of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate ($PI(4,5)P_2$) is responsible for the muscarinic suppression of $Ca_V2.3$ currents by using two methods: the Danio rerio voltage-sensing phosphatase (Dr-VSP) system and the rapamycin-induced translocatable pseudojanin (PJ) system. First, dephosphorylation of $PI(4,5)P_2$ to phosphatidylinositol 4-phosphate (PI(4)P) by Dr-VSP significantly suppressed $Ca_V2.3$ currents, by $53{\pm}3%$. Next, dephosphorylation of both PI(4)P and $PI(4,5)P_2$ to PI by PJ translocation further decreased the current by up to $66{\pm}3%$. The results suggest that $Ca_V2.3$ currents are modulated by the $M_1$ receptor in a dual mode-that is, potentiation through the activation of PKC and suppression by the depletion of membrane $PI(4,5)P_2$. Our results also suggest that there is rapid turnover between PI(4)P and $PI(4,5)P_2$ in the plasma membrane.
The influences of specific protein phosphatase and protein kinase inhibitors on the ATP-sensitive $K^+\;(K_{ATP})$ channel-opening effect of pinacidil were investigated in single rat ventricular myocytes using patch clamp technique. In cell-attached patches, pinacidil $(100\;{\mu}M)$ induced the opening of the $K_{ATP}$ channel, which was blocked by the pretreatment with H-7 $(100\;{\mu}M)$ whereas enhanced by the pretreatment with genistein $(30\;{\mu}M)$ or tyrphostin A23 $(10\;{\mu}M)$. In inside-out patches, pinacidil $(10\;{\mu}M)$ activated the $K_{ATP}$ channels in the presence of ATP (0.3 mM) or AMP-PNP (0.3 mM) and in a partial rundown state. The effect of pinacidil $(10\;{\mu}M)$ was not affected by the pretreatment with protein tyrosine phosphatase 1B $(PTP1B,\;10\;{\mu}g\;ml^{-1}),$ but blocked by the pretreatment of protein phosphatase 2A $(PP2A,\;1\;U\;ml^{-1})$. In addition, pinacidil $(10\;{\mu}M)$ could not induce the opening of the reactivated $K_{ATP}$ channels in the presence of H-7 $(100\;{\mu}M)$ but enhanced it in the presence of ATP (1 mM) and genistein $(30\;{\mu}M).$ These results indicate that the $K_{ATP}$ channel-opening effect of pinacidil is not mediated via phosphorylation of $K_{ATP}$ channel protein or associated protein, although it still requires the phosphorylation of serine/threonine residues as a prerequisite condition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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