Journal of agricultural medicine and community health
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v.22
no.1
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pp.61-74
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1997
In case of tissue invading nematode, proteolytic enzyme was required at their parasitic life. Proteinases obtained from these parasites(Toxocara canis, Ansakis spp. and Trichinella spiralis) were extracted, isolated and further purified. And then the analysis for activity and inhibitory effect of proteinases were performed by appropriate substrate. Determination of protein as a circulating antigen was done in use of infected animal serum with above parasites, respectively. For above experimental objects, following procedures were performed. First, enzymatic activity was measured in use of azocasein and inhibitory effect of porteinase were studied by various inhibitors. Second, partially purified proteins containing enzymatic activity were obtained by ion exchange chromatography, ultrafiltration and electrophoretic elution. Third, role of the partially purified protein as a circulating antigen. The results obtained were as follows : 1. Enzymatic activity of each nematode proteinase was varied according to pH. Optimal pH of Toxocara canis, Ansakis spp. and Trichinella spiralis were pH 6.0, pH 5.5 and pH 6.5, respectively. The optimal molarity of buffer was 0.1M phosphate buffer. Although little difference between these proteinases was observed, temperature stability was at least maintained at $4^{\circ}C$ until 5 days. 2. In case of Ansakis spp. and Toxocara canis, enzymatic activity of these proteinases was considerably inhibited by Leupeptin and EDTA. For maximum enzymatic activity of above proteinases, it was required that cysteine residue of enzyme should be protected. And it was suggested that metallo type was contained in enzyme active site. Proteinase of Trichinella spiralis contained metallo type also. 3. Although partial purification was performed in Ansakis spp. and Toxocara canis, proteins maintaining enzymatic activity were identified as a circulating antigen. From SDS-PAGE and immunoblot, 25 kDa was presented in Ansakis spp.. Specific antigen of Toxocara cains was 110 kDa protein fraction. 55 and 42 kDa proteins were reacted with normal serum. Trichinella spiralis 60 kDa protein fraction was successfully purified from excretory materials in culture. As a result of immune-reaction with Trichinella spiralis infected serum, highly purified 60 kDa protein was maintained antigenicity until final purification step.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.20
no.8
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pp.417-424
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2019
Despite its superior ability to show distinct cellular morphology and for long-term storage, conventional tissue fixation by formalin has many drawback, including slower fixation, the exposure to harmful chemicals and extensive protein modification. Herein, we assessed the effects of rapid microwave-assisted tissue fixation on histological examination and on protein integrity by comparing these microwave irradiation fixated tissues with the formalin-fixed tissues. One of the paired mouse tissues (liver and kidney) was fixed in formalin and the other was fixed by using microwave irradiation in phosphate buffered saline. Each slide from the paraffin-embedded tissues was examined by H & E staining for the adequacy of fixation and by immunohistochemical staining for antigenicity in a blinded fashion. Evaluation of protein recovery and the protein quality from the fixed tissues were analyzed by the BCA method and Western blotting, respectively. The results from H & E staining and immunohistochemical staining showed that the sections obtained from microwave-fixed tissues under our experimental conditions were comparable to those of the formalin-fixed tissues except for the integrity of RBCs. Furthermore, proteins were effectively extracted from the microwave-fixed tissues with acceptable preservation of the proteins' quality. Taken together, this microwave-assisted tissue processing yields a quick fixation and better protein recovery in higher amounts, as well as the adequacy of fixation and the antigenicity being comparable to formalin-fixed tissues, and this all suggests that this new fixation technique can be applied in an environment where rapid tissue fixation is required.
Yang, Zhaoshou;Lee, Jihoo;Ahn, Hye-Jin;Chong, Chom-Kyu;Dias, Ronaldo F.;Nam, Ho-Woo
Parasites, Hosts and Diseases
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v.54
no.2
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pp.239-241
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2016
Chikungunya virus (CHIKV), a tropical pathogen, has re-emerged and has massive outbreaks abruptly all over the world. Containing many dominant epitopes, the envelope E2 protein of CHIKV has been explored for the vaccination or diagnosis. In the present study, the antigenicity of a recombinant expressed intrinsically disorder domain (IUD) of E2 was tested for the detection of the antibody against CHIKV through western blot method. The gene of the IUD of E2 was inserted into 2 different vectors and expressed as recombinant GST-E2 and recombinant MBP-E2 fusion protein, respectively. Two kinds of fusion proteins were tested with 30 CHIKV patient sera and 30 normal sera, respectively. Both proteins were detected by 25 patients sera (83.3%) and 1 normal serum (3.3%). This test showed a relatively high sensitivity and very high specificity of the recombinant E2 proteins to be used as diagnostic antigens against CHIKV infection.
To establish a rapidly immunochemical identification on a dinoflagellate, Cochlodinium polykrikoides, a specific antigenic protein as a maker on the cell membrane was isolated. The cell membranes of C. polykrikoides and Gymnodinium sangineum were harvested by centrifugation after osmotic shock. The membrane proteins of both cells were solubilized in 50 mM Na-carbonate contained 1 mM DTT, and separated the proteins on SDS-PACE. Immune-blot on the solubilized membrane proteins of the both cells was performed with antiserum against the solubilized membrane proteins of C. polykrikoides. A 120 kDa membrane protein of C. polykrikoides had remarkablely different antigenicity from that of G. sangineum.
The purpose of the current study was to determine the effects of the introduction of polysaccharide chains onto the molecular surface of buckwheat proteins on buckwheat protein surface functionality. The whole buckwheat protein fraction (WBP) was prepared using 50 mM phosphate buffer (pH 7.5) containing 0.5 M NaCl and covalently linked with 6 kDa, 17.5 kDa, 40 kDa, 70 kDa, or 200 kDa dextran by Maillard-type glycation through controlled dry-heating at $60^{\circ}C$ and 79% relative humidity for two weeks. Conjugation with 40 kDa dextran improved the water solubility and emulsifying properties of WBP without causing a serious loss of available lysine; 84.9% of the free amino groups were conserved. In addition, we found that the introduction of dextran chains onto the molecular surfaces of WBP attenuated the antigenicity of WBP.
Epitope tagging is the process of fusing a set of amino acid residues that are recognized as an antigenic determinant to a protein of interest. Tagging a protein with an epitope facilitates various immunochemical analyses of the tagged protein with a specific monoclonal antibody. The monoclonal antibody H8 has subtype specificity for an epitope derived from the preS2 region of hepatitis B virus surface antigen. Previous studies on serial deletions of the preS2 region indicated that the preS2 epitope was located in amino acid residues 130~142. To test whether the amino acid sequence in this interval is sufficient to confer on proteins the antigenicity recognizable by the antibody H8, the set of amino acid residues in the interval was tagged to the amino terminal of ${\beta}$-galactosidase and to the carboxyl terminal of the truncated $p56^{lck}$ fragment. The tagged ${\beta}$-galactosidase, expressed in Escherichia coli, maintained the enzymatic activity and was immunoprecipitated efficiently with H8. The tagged $p56^{lck}$ fragment, synthesized in an in vitro translation system, was also immunoprecipitated specifically with H8. These results demonstrate that the amino acid sequence of the preS2 region can be used efficiently for the epitope tagging approach.
Serum from mouse orally ingested with tissue cyst forming stain (Me49) of Toxoplasma gondii was assayed by Western blot and immunofluorescene assay (IFA) to establish early responses in antigenicity of the parasite in mouse model of foodborne toxoplasmosis. Sera were collected weekly to blot the RH antigen transferred onto nitrocellulose paper after being separated by 12% SDS-PAGE. With the second week serum, 34 kDa protein (p34) was detected uniquely, and all antigens of T.gondii were detected with the sera from 3 or 4 weeks. p34 was not a member of the major surface membrane proteins and confirmed to be localized in the rhoptry by IFA. It was secreted into parasitophorous vacuolar membrane (PVM) during the entry into host cells. 10.3% of sera detected p34, while all the ELISA positive sera detected the band. It has diagnostic usefulness of presumed T.gondii infection. We suggest the name of the p34 protein as ROP9.
After invasion of red blood cells, malaria matures within the cell by degrading hemoglobin avidly. For enormous protein breakdown in trophozoite stage, many efficient and ordered proteolysis networks have been postulated and exploited. In this study, a potential interaction of a 60-kDa Plasmodium falciparum (Pf)-heat shock protein (Hsp60) and Pf-calpain, a cysteine protease, was explored. Pf-infected RBC was isolated and the endogenous Pf-Hsp60 and Pf-calpain were determined by western blot analysis and similar antigenicity of GroEL and Pf-Hsp60 was determined with anti-Pf-Hsp60. Potential interaction of Pf-calpain and Pf-Hsp60 was determined by immunoprecipitation and immunofluorescence assay. Mizoribine, a well-known inhibitor of Hsp60, attenuated both Pf-calpain enzyme activity as well as P. falciparum growth. The presented data suggest that the Pf-Hsp60 may function on Pf-calpain in a part of networks during malaria growth.
Protein modifications of recombinant pharmaceuticals have been observed both in vitro and in vivo. These modifications may result in lower efficacy, as well as bioavailability changes and antigenicity among the protein pharmaceuticals. Therefore, the contents of modification should be monitored for the quality and efficacy of protein pharmaceuticals. The interface of EPO and its receptor was visualized, and potential amino acids interacting on the interface were also listed. Two different types of modifications on the interface were identified in the preparation of rHu-EPO BRP. A UPLC/Q-TOF MS method was used to evaluate the modification at those variants. The modification of the oxidized variant was localized on the Met54 and the deamidated variants were localized on the Asn47 and Asn147. The extent of oxidation at Met54 was 3.0% and those of deamidation at Asn47 and Asn147 were 2.9% and 4.8%, respectively.
In this studies, we isolated a kind of protein from Alisma Canaliculatum by the saline extraction. This protein was found to have a strong protective effects on the denaturation of ${\alpha}-chymotrypsin$ in the solution state. The obtained important results during the studies were as follows, 1. This protein was never hydrolyzed by the ${\alpha}-chymotrypsin$. 2. The denaturation of ${\alpha}-chymotrypsin$ was strongly protected by this sample protein. 3. Isoelectric point of this sample was about 4.7. 4. This sample protein was determined as an antigen but very weak antigenicity was indicated on rabbit.
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