The ubiquitin-proteasome system is one of the major protein turnover mechanisms that plays important roles in the regulation of a variety of cellular functions. It is composed of E1 (ubiquitin-activating enzyme), E2 (ubiquitin-conjugating enzyme), and E3 ubiquitin ligases that transfer ubiquitin to the substrates that are subjected to degradation in the 26S proteasome. The Skp1, Cullin, F-box protein (SCF) E3 ligases are the largest E3 gene family, in which the F-box protein is the key component to determine substrate specificity. Although the SCF E3 ligase and its F-box proteins have been extensively studied in the model yeast Saccharomyces cerevisiae, only limited studies have been reported on the role of F-box proteins in other fungi. Recently, a number of studies revealed that F-box proteins are required for fungal pathogenicity. In this communication, we review the current understanding of F-box proteins in pathogenic fungi.
Proteolysis in eukaryotic cells is mainly mediated by the ubiquitin (Ub)-proteasome system (UPS) and the autophagy-lysosome system (hereafter autophagy). The UPS is a selective proteolytic system in which substrates are recognized and tagged with ubiquitin for processive degradation by the proteasome. Autophagy is a bulk degradative system that uses lysosomal hydrolases to degrade proteins as well as various other cellular constituents. Since the inception of their discoveries, the UPS and autophagy were thought to be independent of each other in components, action mechanisms, and substrate selectivity. Recent studies suggest that cells operate a single proteolytic network comprising of the UPS and autophagy that share notable similarity in many aspects and functionally cooperate with each other to maintain proteostasis. In this review, we discuss the mechanisms underlying the crosstalk and interplay between the UPS and autophagy, with an emphasis on substrate selectivity and compensatory regulation under cellular stresses.
Enterotoxigenic Bacteroides fragilis (ETBF)는 염증성장 질환과 대장암을 유발하며 아연 의존성 metalloprotease인 B. fragilis toxin (BFT)를 분비한다. BFT는 epithelial cell의 E-cadherin을 80 kDa ectodomain과 33 kDa intracellular domain으로 분절을 유도한다. 생성된 E-cadherin intracellular domain은 순차적으로 γ-secretase에 의해 분절되어 28 kDa E-cadherin intracellular fragment은 아직까지 밝혀지지 않는 기작으로 분해된다. 본 연구에서는 BFT 유도 E-cadherin 분절로 인해 생성된 28 kDa E-cadherin intracellular fragment는 proteasome에 의해서 분해된다는 것을 확인하였다. 또한 BFT 유도 E-cadherin 분절 기작이 대장암 세포가 아닌 인간 유방암 세포주 BT-474 세포에서도 동일한 기작으로 일어남을 확인하였다. 마지막으로 staurosporine은 인간 유방암 세포주 MCF7 세포에서 E-cadherin의 분절을 유도하고 γ-secretase에 의한 E-cadherin intracellular domain의 분절이 일어났으나 proteasome에 의한 분해는 일어나지 않았다. 이러한 결과는 ETBF가 서식하는 대장이 아닌 유방에서도 BFT에 의한 E-cadherin 분절이 일어날 수 있으며 ETBF가 대장암 이외의 다른 암에도 관여할 수 있음을 시사한다.
Background: The ubiquitin-proteasome system (UPS) is an important pathway of proteolysis in pathologic hypertrophic cardiomyocytes. We hypothesize that MG132, a proteasome inhibitor, might prevent hypertrophic cardiomyopathy (CMP) by blocking the UPS. Nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells ($NF-{\kappa}B$) and androgen receptor (AR) have been reported to be mediators of CMP and heart failure. This study drew upon pathophysiologic studies and the analysis of $NF-{\kappa}B$ and AR to assess the cardioprotective effects of MG132 in a left ventricular hypertrophy (LVH) rat model. Methods: We constructed a transverse aortic constriction (TAC)-induced LVH rat model with 3 groups: sham (TAC-sham, n=10), control (TAC-cont, n=10), and MG132 administration (TAC-MG132, n=10). MG-132 (0.1 mg/kg) was injected for 4 weeks in the TAC-MG132 group. Pathophysiologic evaluations were performed and the expression of AR and $NF-{\kappa}B$ was measured in the left ventricle. Results: Fibrosis was prevalent in the pathologic examination of the TAC-cont model, and it was reduced in the TAC-MG132 group, although not significantly. Less expression of AR, but not $NF-{\kappa}B$, was found in the TAC-MG132 group than in the TAC-cont group (p<0.05). Conclusion: MG-132 was found to suppress AR in the TAC-CMP model by blocking the UPS, which reduced fibrosis. However, $NF-{\kappa}B$ expression levels were not related to UPS function.
The 26S proteasome is a 2-MDa complex with a central role in protein turn over. The 26S proteasome is comprised of one 20S core particle and two 19S regulatory particles (RPs). The RPN12a protein, a non-ATPase subunit of the 19S RP, was previously shown to be involved in cytokinin signaling in Arabidopsis. To further investigate cellular roles of RPN12a, RNAi transgenic plants of RPN12a were constructed. As expected, the 35S:RNAi-RPN12a plants showed cytokinin signaling defective phenotypes, including abnormal formation of leaves and inflorescences. Furthermore, RNAi knock-down transgenic plants exhibited additional unique phenotypes, including concave and heart-shape cotyledons, triple cotyledons, irregular and clustered guard cells, and defects in phyllotaxy, all of which are typical for defective cytokinin signaling. We next examined the mRNA level of cytokinin signaling components, including type-A ARRs, type-B ARRs, and CRFs. The expression of type-A ARRs, encoding negative regulators of cytokinin signaling, was markedly reduced in 35S:RNAi-RPN12a transgenic plants relative to that in wild type plants, while type-B ARRs and CRFs were unaffected. Our results also indicate that in vivo stability of the ARR5 protein, a negative regulator of cytokinin signaling, is mediated by the 26S proteasome complex. These results suggest that RPN12a participates in feedback inhibitory mechanism of cytokinin signaling through modulation of the abundance of ARR5 protein in Arabidopsis.
Estrogen-induced proliferation in estrogen receptor (ER)-positive breast cancer cells is primarily mediated through two distinct intracellular receptors, $ER{\alpha}$ and $ER{\beta}$. Although tumor necrosis factor alpha ($TNF{\alpha}$) and $E2/ER{\alpha}$ are known to exert opposing effects on cell proliferation in MCF-7 cells, the mechanism by which $TNF{\alpha}$ antagonizes $E2/ER{\alpha}$-mediated cell proliferation is not well understood. The present study suggests that reduced cell survival in response to $TNF{\alpha}$ treatment in MCF-7 cells may be associated with the down-regulation of $ER{\alpha}$ protein. The decrease in $ER{\alpha}$ protein level was accompanied by an inhibition of $ER{\alpha}$ gene transcription. Cell viability was decreased synergistically by the combined treatment with $ER{\alpha}$-siRNA and $TNF{\alpha}$. Furthermore, pretreatment of cells with the PI3-kinase (PI3K)/ Akt inhibitor, LY294002, markedly enhanced $TNF{\alpha}$-induced down-regulation of the $ER{\alpha}$ protein, suggesting that the PI3K/Akt pathway might be involved in control of the $ER{\alpha}$ level. Moreover, down-regulation of $ER{\alpha}$ by $TNF{\alpha}$ was not inhibited in cells that were pretreated with the proteasome inhibitors, MG132 and MG152, which suggests that proteasome-dependent proteolysis does not significantly influence $TNF{\alpha}$-induced down-regulation of $ER{\alpha}$ protein. In contrast, the effect of the PI3K/Akt inhibitor on $ER{\alpha}$ was blocked in cells that were treated with LY294002 in the presence of the proteasome inhibitors. Collectively, our findings show that the $TNF{\alpha}$ may partly regulate the growth of MCF-7 breast cancer cells through the down-regulation of $ER{\alpha}$ expression, which is primarily mediated by a PI3K/Akt signaling.
Previously we showed that CHIP, a co-chaperone of Hsp70 and E3 ubiquitin ligase, can promote the degradation of mutant SOD1 linked to familial amyotrophic lateral sclerosis (fALS) via a mechanism not involving SOD1 ubiquitylation. Here we present evidence that CHIP functions in the interaction of mutant SOD1 with 26S proteasomes. Bag-1, a coupling factor between molecular chaperones and the proteasomes, formed a complex with SOD1 in an hsp70-dependent manner but had no direct effect on the degradation of mutant SOD1. Instead, Bag-1 stimulated interaction between CHIP and the proteasome-associated protein VCP (p97), which do not associate normally. Over-expressed CHIP interfered with the association between mutant SOD1 and VCP. Conversely, the binding of CHIP to mutant SOD1 was inhibited by VCP, implying that the chaperone complex and proteolytic machinery are competing for the common substrates. Finally we observed that mutant SOD1 strongly associated with the 19S complex of proteasomes and CHIP over-expression specifically reduced the interaction between S6/S6' ATPase subunits and mutant SOD1. These results suggest that CHIP, together with ubiquitin-binding proteins such as Bag-1 and VCP, promotes the degradation of mutant SOD1 by facilitating its translocation from ATPase subunits of 19S complex to the 20S core particle.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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