The tremendous changes of uterine endometrium are observed during early pregnancy and protease and their inhibitors are involved in regulation of cell proliferation and remodeling of the tissues through remodeling the extracellular matrix (ECM). Some of the proteases and protease inhibitors have been suspected to a factor in endometrial changes but many parts of their expression profiles and the physiological roles are not uncovered. To evaluate the functional roles of them, in this study the expression profiles of proteases and protease inhibitors were analyzed using real-time quantitative PCR analysis. Mmp9 (matrix metalloproteinase 9) mRNA levels peaked on day 4 at the time of implantation. On the other hand, Ela2 (neutrophil elastase, NE) mRNA levels were peaked on day 2 of pregnancy. Its expression were decreased until day 4 of pregnancy but increased rapidly until day 7 of pregnancy and decreased again. NE inhibitor Slpi (secretory leukocyte protease inhibitor, SLPI) mRNA levels were related with the implantation stage and with the levels of Ela2. At the time of implantation the expression levels of Slpi mRNA were about 5 times higher than the Ela2 mRNA in the uterus. In the implantation stage embryos, Mmp9 specific mRNA was only detected at the blastocyst. On the other hand, the expression level of SLPI was higher than that of the Ela2 mRNA at blastocyst and 4.5 day p.c. embryos. Based on these results it is suggested that MMP9, SLPI, and NE have important physiological role in embryo implantation both in uterus and embryos.
Three kinds of serine protease inhibitors, members of the Bowman-Birk trypsin inhibitor, were purified from Dolichos lablab seeds and named Dolichos protease inhibitor 1, 2 and 3 (DI-1, DI-2 and DI-3), respectively. Each inhibitor showed a single band with gel mobility at around 15.9, 12.1 and 14.6 kDa on 20% SDS-PAGE under reducing conditions. To characterize inhibitory specificity, the inhibition constant (Ki) for these inhibitors was measured against several known serine proteases. All three Dolichos protease inhibitors (DI-1, DI-2 and DI-3) inhibited the activity of trypsin and plasmin, but had no effect on thrombin and kallikrein (either for human plasma kallikrein or for porcine pancreas kallikrein). DI-1 inhibited chymotrypsin most effectively (Ki = $3.6{\times}10^{-9}\;M$), while DI-2 displayed inhibitory activity for porcine pancreatic elastase (Ki = $6.2{\times}10^{-8}\;M$). Pre-treatment of the 33 mg/kg of DI-mixture (active fractions from $C_{18}$ open column chromatography that included DI-1, DI-2 and DI-3) inhibited the induction of pseudomonal elastase-induced septic hypotension and prevented an increase in bradykinin generation in pseudomonal elastase-treated guinea pig plasma. Also, the increase of kallikrein activity, by injection of pseudomonal elastase, was inhibited by the pretreatment of the DI-mixture in a guinea pig. Since the DI-mixture had no inhibitory effect on kallikrein activity when Z-Phe-Arg-MCA was used as a substrate in vitro, its inhibitory activity in the pseudomonal elastase-induced septic hypotension model might not be due to a direct inhibition of plasma kallikrein in the activation cascade of the Hageman factor and prekallikrein system. These results suggest that the Dolichos DI-mixture might be used as an inhibitor in pathogenic bacterial protease-induced septic shock.
Apicidin, a histone-deacetylase inhibitor, has been successfully used to inhibit the growth of cancer cells. In this study, the apoptotic potential and mechanistic insights of apicidin were investigated in human myeloid leukemia U937 cells. Treatment of U937 cells with apicidin resulted in a decrease of cell viability with apoptotic characteristics, including chromatin condensation and ladder-pattern fragmentation of genomic DNA. Apicidin converted the procaspase-3 protease to catalytically active effector protease, resulting in subsequent cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) and inhibitor of caspase-activated deoxyribonuclease (ICAD). In addition, apicidin induced the activation of caspase-9 protease and the cytosolic release of mitochondrial cytochrome c with mitochon-drial membrane potential transition. Moreover, apicidin transiently increased the expression of Fas and Fas ligand proteins. Taken together, the results suggest that apicidin induces apoptosis of U937 cells through activation of intrinsic caspase cascades and Fas/FasL system with mitochondrial dysfunction.
Lee, Kye-Joon;Kim, In-Seop;Kim, Hyoun-Tae;Ward, Alan-C.;Goodfellow, Michael
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제2권3호
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pp.220-225
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1992
Chemotaxonomic and numerical identification were carried out for an isolate of Streptomyces strain SMF13 producing thiol protease inhibitor. Fifty taxonomic unit characters were tested and the data were analyzed numerically using the TAXON program. The isolate SMF13 was identified to be a member of the cluster 5 of Streptomyces and best matched to Streptomyces omiyaensis which is a synonym of Streptomyces exfoliatus. Therefore. it was concluded that the isolate was identified to be a strain of Streptomyces exfoliatus.
The LB71350,(3S, 4R)-Epoxy-(5S)-[[N-(1-methylethoxy)carbonyl]-3-(methylsulfonyl)-L-valinyl]amino]-N-[2-methyl-(1R)-[(phenyl)carbonylpropyl-6-phenylhexanamide, is a novel HIV protease inhibitor. Its equilibrium solubility at room temperature was less than $40{\mu}g/mL.$ It was speculated that the low aqueous solubility might be due to the high crystalline lattice energy resulting from intermolecular hydrogen bonds. The present study was carried out to learn the solid-state characteristics of LB71350 using analytical methods such as NMR, FT-IR and XRD. $^{13}C$ Solid-state NMR, solution NMR, and FT-IR spectra of the various solid forms of LB71350 were used to identify the conformation and structure of the solid forms. The chemical shifts of $^{13}C$ solid-state NMR spectra suggest that the crystalline form might have 3 intermolecular hydrogen bondings between monomers.
The $Ca^{2+}-activated$ neutral protease calpain induced proteolysis has been suggested to play a role in certain cell growth regulatory proteins. Cyclin proteolysis is essential for cell cycle progression. D-type cyclins, which form an assembly with cyclin-dependent kinases (cdk4 and cdk6), are synthesized earlier in G1 of the cell cycle and seem to be induced in response to external signals that promote entry into the cell cycle. Here we show that cyclin D3 protein levels are regulated at the posttranscriptional level by calpain protease. Treatment of human breast carcinoma MDA-MB-231 cells with lovastatin and actinomycin D resulted in a loss of cyclin D3 protein that was completely reversible by the peptide aldehyde calpain inhibitor, LLnL. The specific inhibitor of the 26S proteasome, lactacystin, the lysosome inhibitors, ammonium chloride and chloroquine, and the serine protease inhibitor, phenylmethylsulfonylfluoride (PMSF), did not block the degradation of cyclin D3 by lovastatin and actinomycin D. Results of in vitro degradation of cyclin D3 by purified calpain showed that cyclin D3 protein is degraded in a $Ca^{2+}-dependent$ manner, and the half-life of cyclin D3 protein was dramatically increased in LLnL treated cells. These data suggested that cyclin D3 protein is regulated by the $Ca^{2+}-activated$ protease calpain.
Kim, Hyung Jun;Lee, Hyun Ji;Park, Sung Hwan;Jeon, You-Jin;Kim, Jin-Soo;Heu, Min Soo
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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제48권2호
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pp.178-186
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2015
Protease inhibitors (PI) of trypsin and papain as target proteases from the roe of bastard halibut Paralichthys olivaceus were fractionated out using ammonium sulfate precipitation (A), DEAE 650M anion exchange chromatography (D), and Sephacryl S-300 gel filtration (S). The recovery percentages of the fractions with the strongest inhibitory activity for each fractionation method were 13% for the A4 fraction, 21.2% for the D3 fraction, and 21.3% for the S2 fraction, with specific inhibitory activities of the fractions toward trypsin and casein of 168, 139, and 218 U/mg, respectively, while no inhibition of papain was observed. The $IC_{50}$ for the trypsin-specific substrate $N{\alpha}$-benzoyl-$\small{L}$-arginine-p-nitroanilide (BAPNA) was 0.65, 1.55, 2.26, and 2.85 mg/mL for the A4, S2, A3, and D3 fractions, respectively. These results suggest that chromatographic fractionation methods (D and S) based on the molecular mass and charge of the protein were more effective at fractionating PI than was ammonium sulfate precipitation based on protein solubility, and that the bastard halibut roe extract acts as a serine protease inhibitor. Therefore, the PI fraction from fish roe might be useful for inhibiting proteases in foodstuffs, and could constitute an alternative food-grade inhibitor for the surimi industry.
Quintero, David;Carrafa, Jamie;Vincent, Lena;Kim, Hee Jong;Wohlschlegel, James;Bermudes, David
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제28권12호
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pp.2079-2094
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2018
Sunflower trypsin inhibitor (SFTI) is a 14-amino-acid bicyclic peptide that contains a single internal disulfide bond. We initially constructed chimeras of SFTI with N-terminal secretion signals from the Escherichia coli OmpA and Pseudomonas aeruginosa ToxA, but only detected small amounts of protease inhibition resulting from these constructs. A substantially higher degree of protease inhibition was detected from a C-terminal SFTI fusion with E. coli YebF, which radiated more than a centimeter from an individual colony of E. coli using a culture-based inhibitor assay. Inhibitory activity was further improved in YebF-SFTI fusions by the addition of a trypsin cleavage signal immediately upstream of SFTI, and resulted in production of a 14-amino-acid, disulfide-bonded SFTI free in the culture supernatant. To assess the potential of the secreted SFTI to protect the ability of a cytotoxic protein to kill tumor cells, we utilized a tumor-selective form of the Pseudomonas ToxA (OTG-PE38K) alone and expressed as a polycistronic construct with YebF-SFTI in the tumor-targeted Salmonella VNP20009. When we assessed the ability of toxin-containing culture supernatants to kill MDA-MB-468 breast cancer cells, the untreated OTG-PE38K was able to eliminate all detectable tumor cells, while pretreatment with trypsin resulted in the complete loss of anticancer cytotoxicity. However, when OTG-PE38K was co-expressed with YebF-SFTI, cytotoxicity was completely retained in the presence of trypsin. These data demonstrate SFTI chimeras are secreted in a functional form and that co-expression of protease inhibitors with therapeutic proteins by tumor-targeted bacteria has the potential to enhance the activity of therapeutic proteins by suppressing their degradation within a proteolytic environment.
Plasminogen activator (PA)-plasmin system in follicular fluid is involved in the process leading to follicular rupture at ovulation. It is well known that PA is closely associated with cellular differentiation and tissue remodeling on evidences from the study of normal and malignant tissues. This study was designed to ascertain a potential role of PA in the ovarian folliculogenesis. Immature Sprague-Dawley rats were injected with pregnant mare serum gonadotropin, followed by injection of serine protease inhibitor (SPI; mixture of 1 mol/L benzamidine and 1 mol/L amino-caproic acid) into the unilateral ovarian bursa. In the control study, mechanical effect of bursal injection and contralateral ovarian effect SPI were ruled out. Total antral follicular areas relative to total ovarian cross-sectional areas was siginificantly lower in SPI-injected ovary than in saline-injected ovary. SPI injection decreased the relative antral follicular area by 33 % respectively. Electron microscopic finding of granulosa cell in the atretic follicle showed the presence of pyknotic nucleus, blurring of neucleolemma, degeneration of mitochondria and dilation of endoplasmic reticulum. After induction of ovulation with hCG, the number of oocytes released was significantly decreased in SPI-injected oviduct than in saline-injected oviduct. From above results, author discussed that PA may play a role not only in ovulation but also in some processes of folliculogenesis.
Human tissue-type plasminogen activator (tPA) is a valuable thrombolytic agent used to successfully treat acute myocardial infarction, thromboembolic stroke, peripheral arterial occlusion, and venous thromboembolism. Recombinant tPA is accumulated as an inactive form in inclusion bodies of E. coli and is refolded in vitro, which is accompanied by extensive aggregation. In the present study, a tPA protease domain was expressed in an active soluble form in the cytosol of E. coli Rosetta-gami cells, which allowed disulfide bond formation and supplied the tRNA molecules required for six rarely used codons in E. coli. This strategy increased the amount of soluble protease domain protein and avoided the cumbersome refolding process. The purified protease domain not only degraded tPA substrate peptides but also formed a covalently bound complex with plasminogen activator inhibitor-1, as does full-length tPA. Soluble expression and purification of tPA domains may aid in functional analyses of this multi-domain protein, which has been implicated in many physiological and pathological processes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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