Experiments initiated 30 years ago to obtain selectable markers have led to a series of studies of Trp biosynthesis and anthranilate synthase (AS) the control enzyme using largely plant tissue cultures since they have experimental properties that can be readily exploited. Enzymological and compound feeding studies provided evidence that AS is the control point in the Trp biosynthesis branch and that altering the AS feedback control by the selection of mutants resistant to the Trp analog 5-methyl-tryptophan (5MT) can lead to the overproduction of this important amino acid. Plants regenerated from these Trp overproducing lines of most species also had high free Trp levels but Nicotiana tabaum (tobacco) plants expressed the feedback altered AS only in cultured cells and not in the regenerated plants. further tests by transient and stable expression of the cloned promoter for the naturally occurring tobacco feedback-insensitive AS, denoted ASA2, confirmed the tissue culture specific nature of the expression control. The 5MT caused by the expression of a feedback-insensitive AS from tobacco has been used to select protoplast fusion hybrids with several species since the resistance is expressed dominantly. Recently the ASA2 gene has been used successfully as a selectable marker to select transformed Astragalus sinicus and Glycine max hairy roots induced by Agrobactetium rhizogenes. These results show that the ASA2y-subunit can interact with the y-subunit of another species to form active feedback-insensitive enzyme that may be useful for selecting transformed cells. Plastid DNA transformation of tobacco has also effectively expressed ASA2 in the compartment in which Trp biosynthesis is localized in the cell.
The transcription factor E2F1 is active during G1 to S transition and is involved in the cell cycle and progression. A recent study reported that increased E2F1 is associated with DNA damage and tumor development in several tissues using transgenic models. Here, we show that E2F1 expression is regulated by tristetraprolin (TTP) in prostate cancer. Overexpression of TTP decreased the stability of E2F1 mRNA and the expression level of E2F1. In contrast, inhibition of TTP using siRNA increased the E2F1 expression. E2F1 mRNA contains three AREs within the 3'UTR, and TTP destabilized a luciferase mRNA that contained the E2F1 mRNA 3'UTR. Analyses of point mutants of the E2F1 mRNA 3'UTR demonstrated that ARE2 was mostly responsible for the TTP-mediated destabilization of E2F1 mRNA. RNA EMSA revealed that TTP binds directly to the E2F1 mRNA 3'UTR of ARE2. Moreover, treatment with siRNA against TTP increased the proliferation of PC3 human prostate cancer cells. Taken together, these results demonstrate that E2F1 mRNA is a physiological target of TTP and suggests that TTP controls proliferation as well as migration and invasion through the regulation of E2F1 mRNA stability.
To maximize the production of aminoglycoside-3'-phosphotransferase of E. coli ATCC 21990 carrying R factor which encodes aminoglycoside-3'-phosphotransferase (APH(3')) phosphorylating the 3'-hydroxyl group of aminoglycoside, mutants M1 and M2, media composition and several factors affecting the enzyme production during fermentation were studied. Although the specific activity of APH(3') produced by a mutant M1 was increased as much as four times than that of E. coii ATCC 21990, the growth rate was decreased. The increase of the enzyme production was obtained by increased biomass during fermentation. A mutant M2 was obtained to increase the cell growth rate. Mutant M2 cells were cultivated with optimal media and pure oxygen gas in a fed-batch mode of fermentor operation. The specific activity of APH(3') was decreased, but total enzyme activity of APH(3') was increased as much as two point five times than that of mutant MI.
N-acetylglucosamine kinase (GlcNAc kinase or NAGK; EC 2.7.1.59) is highly expressed and plays a critical role in the development of dendrites in brain neurons. In this study, the authors conducted structure-function analysis to verify the previously proposed 3D model structure of GlcNAc/ATP-bound NAGK. Three point NAGK mutants with different substrate binding capacities and reaction velocities were produced. Wild-type (WT) NAGK showed strong substrate preference for GlcNAc. Conversion of Cys143, which does not make direct hydrogen bonds with GlcNAc, to Ser (i.e., C143S) had the least affect on the enzymatic activity of NAGK. Conversion of Asn36, which plays a role in domain closure by making a hydrogen bond with GlcNAc, to Ala (i.e., N36A) mildly reduced NAGK enzyme activity. Conversion of Asp107, which makes hydrogen bonds with GlcNAc and would act as a proton acceptor during nucleophilic attack on the ${\gamma}$-phosphate of ATP, to Ala (i.e., D107A), caused a total loss in enzyme activity. The overexpression of EGFP-tagged WT or any of the mutant NAGKs in rat hippocampal neurons (DIV 5-9) increased dendritic architectural complexity. Finally, the overexpression of the small, but not of the large, domain of NAGK resulted in dendrite degeneration. Our data show the effect of structure on the functional aspects of NAGK, and in particular, that the small domain of NAGK, and not its NAGK kinase activity, plays a critical role in the upregulation of dendritogenesis.
The first ORF of the ARV S1133 S1 segment encodes the nonstructural protein p10, which is responsible for the induction of cell syncytium formation. However, p10-dependent signaling during syncytium formation is fully unknown. Here, we show that dominant negative RhoA, Rho inhibitor C3 exoenzyme, ROCK/Rho-kinase inhibitor Y-27632 and Rac1 inhibitor NSC23766 inhibit p10-mediated cell fusion. p10 over-expression is concomitant with activation and membrane translocation of RhoA and Rac1, but not cdc42. RhoA and Rac1 downstream events, including JNK phosphorylation and transcription factor AP-1 and $NF-{\kappa}B$ activation, as well as MLC expression and phosphorylation are simultaneously activated by p10. p10 point mutant T13M possessed 20% fusion-inducing ability and four p10 fusion-deficient mutants V15M, V19M, C21S and L32A reduced or lost their ability to activate RhoA and Rac1 signaling. We conclude that p10-mediated syncytium formation proceeds by utilizing RhoA and Rac1-dependent signaling.
The epipyrone (EPN) biosynthetic gene cluster of Epicoccum nigrum is composed of epnC, epnB, and epnA, which encode cytochrome P450 oxidase, glycosyltransferase, and highly reducing polyketide synthase, respectively. Gene inactivation mutants for epnA, epnB, and epnC were previously generated, and it was found that all of them were incapable of producing EPN and any of its related compounds. It was also reported that epnB inactivation abolished epnA transcription, generating ΔepnAB. This study shows that the introduction of native epnC readily restored EPN production in ΔepnC, suggesting that epnC is essential for polyketide release from EpnA and implies that EpnC works during the polyketide chain assembly of EpnA. Introduction of epnC promoter-epnA restored EPN production in ΔepnA. The ΔepnB genotype was prepared by introducing the epnA expression vector into ΔepnAB, and it was found that the resulting recombinant strain did not produce any EPN-related compounds. A canonical epnB inactivation strain was also generated by deleting its 5'-end. At the deletion point, an Aspergllus nidulans gpdA promoter was inserted to ensure the transcription of epnA, which is located downstream of epnB. Examination of the metabolite profile of the resulting ΔepnB mutant via LC-mass spectrometry verified that no EPN-related compound was produced in this strain. This substantiates that C-glycosylation by EpnB is a prerequisite for the release of EpnA-tethered product. In conclusion, it is proposed that cytochrome P450 oxidase and glycosyltransferase work in concert with polyketide synthase to generate EPN without the occurrence of any free intermediates.
Sam Woong Kim;Sang Wan Gal;Won-Jae Chi;Woo Young Bang;Tae Wan Kim;In Gyu Baek;Kyu Ho Bang
Journal of Life Science
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v.34
no.2
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pp.86-93
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2024
Since replication of plasmids must be strictly controlled, plasmids that generally perform rolling circle replication generally maintain a constant copy number by strictly controlling the replication initiator Rep at the transcriptional and translational levels. Plasmid pJB01 contains three orfs (copA, repB, repC or repABC) consisting of a single operon. From analysis of amino acid sequence, pJB01 CopA was homologous to the Cops, as a copy number control protein, of other plasmids. When compared with a CopG of pMV158, CopA seems to form the RHH (ribbon-helix-helix) known as a motif of generalized repressor of plasmids. The result of gel mobility shift assay (EMSA) revealed that the purified fusion CopA protein binds to the operator region of the repABC operon. To examine the functional role of CopA on transcriptional level, 3 point mutants were constructed in coding frame of copA such as CopA R16M, K26R and E50V. The repABC mRNA levels of CopA R16M, K26R and E50V mutants increased 1.84, 1.78 and 2.86 folds more than that of CopA wt, respectively. Furthermore, copy numbers owing to mutations in three copA genes also increased 1.86, 1.68 and 2.89 folds more than that of copA wt, respectively. These results suggest that CopA is the transcriptional repressor, and lowers the copy number of pJB01 by reducing repABC mRNA and then RepB, as a replication initiator.
In filamentous fungi, velvet complex associated with the veA gene plays pivotal roles in development and secondary metabolism. In a model fungus Aspergillus nidulans, many proteins that can interact with VeA, including two methyltransferases VipB and VipC, have been isolated and characterized. In this study, we isolated homologs of the vipB and vipC genes in the human opportunistic pathogenic fungus Aspergillus fumigatus and named AfuvipB and AfuvipC. The AfuvipB gene, annotated as Afu3g14920 in the Aspergillus Genome Database (AspGD) database, consists of 1,510 bp interrupted with 10 introns yielding 336 amino acid-long putative methyltransferase protein. Similarly, AfuvipC, which is Afu8g01930, has 10 introns and encodes a polypeptide with 339 amino acids having a methyltransferase domain in the middle of the protein. To characterize the function of the genes in A. fumigatus, knock-out mutants were generated and the phenotypes were observed. Deletion of AfuvipB gene caused no obvious phenotypic change on point inoculation but showed smaller colony than wild-type when the mutant was subjected to culture on single spore-driven culture condition. However, AfuvipC deletion mutant demonstrated no phenotypic difference from wild type both in point inoculation and streaking cultures. These results indicate that the two methyltransfereases might have a redundant role and could be dispensable in normal culture conditions.
Analysis of the complete genome of Neurospora crassa reveals that at least 19 proteins contain tetratricopeptide repeat (TPR) motifs. One of them shows over $60\%$ homology to Ssn6 of Saccharomyces cerevisiae, a universal repressor that mediates repression of genes involved in various cellular processes. Mutant strains generated by RIP (repeat-induced point mutation) process showed four distinctive vegetative growth patterns and slow growth in various rates. Firstly, a mutant showed denser mycelial growth, yellow, csp, and looked like ropy mutant. Secondly, slower growth, dense mycelial, and conidial phenotype. Thirdly, extremely slower growth and aconidial. And finally, flat, tittle aerial hyphae, acon, and similar with a rco-1 RIP mutant. They are all male-fertile, yet female-sterile and produced little or no perithecium. It seems that various phenotypes were occurred depending upon mostly likely, the degree of RIP. These results indicate that this gene may be involved in several cellular possess during vegetative growth, and asexual and sexual development. Therefore it is pleiotropic. Sequence analysis of cDNA shows that it encodes a putative 102 kDa protein composed of 917 amino acids, and has six introns. It is designated rcm-1 (regulation of conidiation and morphology).
To study the functional genomic analysis of a crenachaeon Sulfolobus acidocaldarius, we have constructed an auxotrophic mutant based on pyrEF, which encodes the pyrimidine biosynthetic enzymes orotate phosphoribosyltransferase and orotidine-5'-monophosphate decarboxylase. S. acidocaldarius was shown to be sensitive to 5-fluoroorotic acid (5-FOA), which can be selected for mutations in pyrEF genes within a pyrimidine biosynthesis cluster. Spontaneous 5-FOA-resistant mutants by ultraviolet, KH1U and KH2U, were found to contain two point mutations and a frame shift mutation in pyrE, respectively. Mutations at these sites from KH1U and KH2U decreased the activity of orotate phosphoribosyltransferase encoded by the pyrE gene and blocked the degradation of 5-FOA into toxic 5-FOMP and 5-FUMP that kill the cells. Therefore, KH1U and KH2U were uracil auxotrophs. Transformation of Sulfolobus-Escherichia coli shuttle vector pC bearing pyrEF genes from S. solfataricus P2 into S. acidocaldarius mutant KH2U restored 5-FOA sensitivity and overcame the uracil auxotrophy. This study establishes an efficient genetic strategy towards the systematic knockout of genes in S. acidocaldarius.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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