Excessive extracellular matrix (ECM) accumulation is the main feature of chronic renal disease including diabetic nephropathy. Plasminogen activator inhibitor (PAI)-1 is known to play an important role in renal ECM accumulation in part through suppression of plasmin generation and matrix metalloproteinase (MMP) activation. The present study examined the effect of PAI-1 antisense oligodeoxynucleotide (ODN) on fibronectin upregulation and plasmin/MMP suppression in primary mesangial cells cultured under high glucose (HG) or transforming growth factor (TGF)-${\beta}1$, major mediators of diabetic renal ECM accumulation. Growth arrested and synchronized rat primary mesangial cells were transfected with $1\;{\mu}M$ phosphorothioate-modified antisense or control mis-match ODN for 24 hours with cationic liposome and then stimulated with 30 mM D-glucose or 2 ng/ml TGF-${\beta}1$. PAl-1 or fibronectin protein was measured by Western blot analysis. Plasmin activity was determined using a synthetic fluorometric plasmin substrate and MMP-2 activity analyzed using zymography. HG and TGF-${\beta}1$ significantly increased PAI-1 and fibronectin protein expression as well as decreased plasmin and MMP-2 activity. Transient transfection of mesangial cells with PAI-1 antisense ODN, but not mis-match ODN, effectively reversed basal as well as HG- and TGF-${\beta}1$-induced suppression of plasmin and MMP-2 activity. Both basal and upregulated fibronectin secretion were also inhibited by PAI-1 antisense ODN. These data confirm that PAI-1 plays an important role in ECM accumulation in diabetic mesangium through suppression of protease activity and suggest that PAI-1 antisense ODN would be an effective therapeutic strategy for prevention of renal fibrosis including diabetic nephropathy.
Vascular endothelial growth factor (VEGF) and hepatocyte growth factor (HGF) are potent angiogenic factors that have been used clinically to induce angiogenesis. To enable migration and invasion, cells must proliferate and secrete proteinases, which degrade the surrounding extracellular matrix. The goal of this study was to investigate the cell proliferation; matrix metalloproteinase-2 (MMP-2), MMP-9, and plasmin secretion; and migration and invasion of glioma-derived U-373-MG cells induced by VEGF and HGF treatment. An additional goal was to test the hypothesis that elevated secretion of MMP-2, MMP-9, and plasmin contributed directly or indirectly to the proliferation, migration, and invasion of U-373-MG cells. Cell proliferation, migration, and invasion and MMP-2, MMP-9, and plasmin secretion were significantly increased in the VEGF and HGF-treated U-373-MG cells. To elucidate the role of the increased secretion of MMP-2, MMP-9, and plasmin in cell proliferation, migration, and invasion of the U-373-MG cells, they were treated with MMPs inhibitor (BB-94) and plasmin inhibitor (α2AP) prior to VEGF or HGF stimulation. The BB-94 and α2AP treatment resulted in a significant reduction in the cell proliferation, migration, and invasion of the U-373-MG cells as compared with the VEGF- and HGF-treated groups. The results indicate that inhibition of MMPs and plasmin reduce the cell proliferation, migration, and invasion of U-373-MG cells.
Fibroblast growth factor-2 (FGF-2) is known to modulate numerous cellular functions in various cell types, including cell proliferation, differentiation, survival, adhesion, migration, and motility, and also in processes such as wound healing, angiogenesis, and vasculogenesis. FGF-2 regulates the expression of several molecules thought to mediate critical steps during angiogenesis. This study examines the mechanisms underlying FGF-2-induced cell migration, using human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). FGF-2 induced the nondirectional and directional migration of endothelial cells, which are inhibited by MMPs and plasmin inhibitors, and induced the secretion of matrix metalloproteinase-3 (MMP3) and MMP-9, but not MMP-l and MMP-2. FGF-2 also induced the secretion of the tissue inhibitor of metalloproteinase-l (TIMP-I), but not of TIMP- 2. Also, the pan-PKC inhibitor inhibited FGF-2-induced MMP-9 secretion. It is, therefore, suggested that FGF-2 induces the migration of cultured endothelial cells by means of increased MMPs and plasmin secretion. Furthermore, FGF-2 may increase MMP-9 secretion by activating the PKC pathway.
Cai, Mudan;Jung, Inho;Kwon, Huiyoung;Cho, Eunbi;Jeon, Jieun;Yun, Jeanho;Lee, Young Choon;Kim, Dong Hyun;Ryu, Jong Hoon
Biomolecules & Therapeutics
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v.28
no.2
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pp.131-136
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2020
Hippocampal synaptic dysfunction is a hallmark of Alzheimer's disease (AD). Many agents regulating hippocampal synaptic plasticity show an ameliorative effect on AD pathology, making them potential candidates for AD therapy. In the present study, we investigated spinosin as a regulating agent of synaptic plasticity in AD. Spinosin attenuated amyloid β (Aβ)-induced long-term potentiation (LTP) impairment, and improved plasmin activity and protein level in the hippocampi of 5XFAD mice, a transgenic AD mouse model. Moreover, the effect of spinosin on hippocampal LTP in 5XFAD mice was prevented by 6-aminocaproic acid, a plasmin inhibitor. These results suggest that spinosin improves synaptic function in the AD hippocampus by regulating plasmin activity.
A Potent inhibitor of trypsin and other various serine proteases including chymotrypsin, elastase, kallikrein, plasmin and subtilisin, has been purified to homogeneity from chick skeletal muscle by convendonal chromatographic procedures. The Inhibitor has an apparent molecular weight of 66, 000 dalton as determined by gel filtration. When the purified inhibitor was electrophoresed in the presence of sodium dodecyl sulfate, there appeared rwo protein bands having molecular weights of 66, 000 and 64, 000 dalton. The 64, 000 dalton protein seems to be the product of 66, 000 dalton protein by a lin'ited proteolysis during the purification procedure or in viuo. Thus, it seems to consist of a single polypeptide. The inhibitor appeared to be glycoprotein and have an isoelectric point of 7.4. It contains relatively large amount (8.33 mole%) of cysteine residues.
By adding sodium chloride (2.5%) into a Bacillus amyloliquefaciens DJ-4 culture broth, two serine-type fibrinolytic proteases with a molecular weight of 29 (subtilisin DJ-4) and 38-kDa were stimulated on the SDS-fibrin zymogram or inhibitor gels. B. amyloliquefaciens DJ-4 showed the highest proteolytic activity (5.52 plasmin NIH unit/ml) on the fibrin plate based on the molar ratio when cells were subjected to the 2.5% NaCl. Using a fibrin plate, the secreted protease from this strain in the presence of 5% NaCl showed that about 49% of the enzyme's activity remained after incubation at $60^{\circ}C$ for 30 min, but as the salt concentration was increased (10% NaCl) the activity nearly disappeared (0.14 plasmin NIH unit/ml). However, through a fibrin zymography assay, three fibrinolytic enzymes (38, 53 and 80-kDa) from the cells in the presence of 10% NaCl were detected. Also, two salt-activated serine-type fibrinolytic professes (29 and 38kDa) showed thermostability from 65 to $70^{\circ}C$ for 30 min. Furthermore, these professes also showed stability, pH 6-11. In particular, 29-kDa (subtilisin DJ-4) was very stable in the pH range of 4-11 at $4^{\circ}C$ for 48 h.
Plasminogen activator (PA)-plasmin system in follicular fluid is involved in the process leading to follicular rupture at ovulation. It is well known that PA is closely associated with cellular differentiation and tissue remodeling on evidences from the study of normal and malignant tissues. This study was designed to ascertain a potential role of PA in the ovarian folliculogenesis. Immature Sprague-Dawley rats were injected with pregnant mare serum gonadotropin, followed by injection of serine protease inhibitor (SPI; mixture of 1 mol/L benzamidine and 1 mol/L amino-caproic acid) into the unilateral ovarian bursa. In the control study, mechanical effect of bursal injection and contralateral ovarian effect SPI were ruled out. Total antral follicular areas relative to total ovarian cross-sectional areas was siginificantly lower in SPI-injected ovary than in saline-injected ovary. SPI injection decreased the relative antral follicular area by 33 % respectively. Electron microscopic finding of granulosa cell in the atretic follicle showed the presence of pyknotic nucleus, blurring of neucleolemma, degeneration of mitochondria and dilation of endoplasmic reticulum. After induction of ovulation with hCG, the number of oocytes released was significantly decreased in SPI-injected oviduct than in saline-injected oviduct. From above results, author discussed that PA may play a role not only in ovulation but also in some processes of folliculogenesis.
Thrombin activatable fibrinolysis inhibitor (TAFI) also known as plasma procarboxypeptidase B or U is a 60 kD glycoprotein, which is the major modulator of fibrinolysis in plasma. TAFI is a proenzyme, which is activated by proteolytic cleavage to an active carboxypeptidase B-like enzyme (TAFIa, 35.8 kD) by thrombin/thrombomodulin and plasmin. Modulation of fibrinolysis occurs when TAFIa enzymatically removes C-terminal lysine residues of partially degraded fibrin, thereby inhibiting the stimulation of tissue plasminogen activator (t-PA) modulated plasminogen activation. TAFIa undergoes a rapid conformational change at $37{^{\circ}C}$ to an inactive isoform called TAFIai. Potato tuber carboxypetidase inhibitor (PTCI) was shown to specifically bind to TAFIa as well as TAFIai. In this study, a novel immunoassay TAFIa/ai ELISA was used for quantitation of the two TAFI activation isoforms TAFIa and TAFIai. The ELISA utilizes PTCI as the capture agent and a double antibody sandwich technique for the detection. Low levels of TAFIa/ai antigen levels were detected in normal plasma and elevated levels were found in hemophilia A plasmas. TAFIa/ai antigen represents a novel marker to monitor fibrinolysis and TAFIa/ai ELISA may be a valuable assay for studying the role of TAFI in normal hemostasis and in pathological conditions.
Three kinds of serine protease inhibitors, members of the Bowman-Birk trypsin inhibitor, were purified from Dolichos lablab seeds and named Dolichos protease inhibitor 1, 2 and 3 (DI-1, DI-2 and DI-3), respectively. Each inhibitor showed a single band with gel mobility at around 15.9, 12.1 and 14.6 kDa on 20% SDS-PAGE under reducing conditions. To characterize inhibitory specificity, the inhibition constant (Ki) for these inhibitors was measured against several known serine proteases. All three Dolichos protease inhibitors (DI-1, DI-2 and DI-3) inhibited the activity of trypsin and plasmin, but had no effect on thrombin and kallikrein (either for human plasma kallikrein or for porcine pancreas kallikrein). DI-1 inhibited chymotrypsin most effectively (Ki = $3.6{\times}10^{-9}\;M$), while DI-2 displayed inhibitory activity for porcine pancreatic elastase (Ki = $6.2{\times}10^{-8}\;M$). Pre-treatment of the 33 mg/kg of DI-mixture (active fractions from $C_{18}$ open column chromatography that included DI-1, DI-2 and DI-3) inhibited the induction of pseudomonal elastase-induced septic hypotension and prevented an increase in bradykinin generation in pseudomonal elastase-treated guinea pig plasma. Also, the increase of kallikrein activity, by injection of pseudomonal elastase, was inhibited by the pretreatment of the DI-mixture in a guinea pig. Since the DI-mixture had no inhibitory effect on kallikrein activity when Z-Phe-Arg-MCA was used as a substrate in vitro, its inhibitory activity in the pseudomonal elastase-induced septic hypotension model might not be due to a direct inhibition of plasma kallikrein in the activation cascade of the Hageman factor and prekallikrein system. These results suggest that the Dolichos DI-mixture might be used as an inhibitor in pathogenic bacterial protease-induced septic shock.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.279-279
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1994
Fibrinolytic proteases, piscivorase I (PI) and piscivorase II (PII), were isolated from Agkistrodon piscivorus piscivorus (eastern cotonmouth moccasin) venom using gel filtration on Bio-Gel P100 and ion-exchange chromatography on CM-Sepharose. The molecular welghts of two proteases were approximately 23400 and 29000. Their isoelectric points 6.6 and 8.5, respectively. The partial amino acid sequences of PI were characterized by tryptic digestion. PI readily cleaves the A${\alpha}$-and B${\beta}$-chaln of fibronogen, but PII rapidly cleaves A${\alpha}$-chain and more slowly the B${\beta}$-chain, They were activated by Ca$\^$2+/, Mg$\^$2+/ and Ba$\^$2+/, but inhibited by Zn$\^$2+/, Cu$\^$2+/ and Mn$\^$2+/. Two enzymes were also inhibited by cysten, ${\beta}$-mercapto -ethanol, and by metal chelators such as EDTA and EGTA, but not by benzamidine, PMSF, soybean trypsin inhibitor and aprotinin. They did not act like thrombin, plasmin and kallikrein, using specific chromogenllc substrates. Two protease did not induce platelet aggregation. PI showed low hemorrhagic activity at dosage of 50 $\mu\textrm{g}$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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