Lee, Shin-Woo;Lee, Soo Jin;Han, Eun-Hee;Shin, Yong-Wook;Kim, Yun-Hee
Journal of Plant Biotechnology
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v.48
no.2
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pp.71-76
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2021
Angelica is a perennial plant used widely for medicinal purposes. Information on the genetic diversity of Angelica populations is important for their conservation and germplasm utilization. Although Angelica is an important medicinal plant genus registered in South Korea, no molecular markers are currently available to distinguish individual species from other similar species in different countries, in particular, China and Japan. In this study, we developed single nucleotide polymorphism (SNP) markers derived from internal transcribed spacer regions of the nuclear ribosomal DNA to identify a distinct domestic species, Angelica gigas Nakai, via a high-resolution melting (HRM) curve analyses. We also performed HRM curve analysis of intentionally mixed genomic DNA samples from five Angelica species. Finally, we investigated A. gigas Nakai and A. sinensis using varying ratios of mixed genomic DNA templates. The SNP markers developed in this study are useful for rapidly identifying A. gigas species from different countries.
Polymerase chain reaction (PCR) is a powerful technique in molecular biology and is widely used in various fields. By amplifying DNA fragments, PCR has facilitated gene cloning procedures, as well as molecular genotyping. However, the extraction of DNA from samples often acts as a limiting step of these reactions. In particular, the extraction of PCR-compatible genomic DNA from higher plants requires complicated processes and tedious work because plant cells have rigid cell walls and contain various endogenous PCR inhibitors, including polyphenolic compounds. We recently developed a novel solution, referred to as AnyDirect, which can amplify target DNA fragments directly from whole blood without the need for DNA extraction. Here, we developed a simple lysis system that could produce an appropriate template for direct PCR with AnyDirect PCR buffer, making possible the direct amplification of DNA fragments from plant leaves. Thus, our experimental procedure provides a simple, convenient, non-hazardous, inexpensive, and rapid process for the amplification of DNA from plant tissue.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.130-130
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2003
Gummy stem blight pathogen is very difficult not only to monitor the inoculum levels prior to host infection, and also it is destructive and hard to control in field condition. We have applied RAPD technique to elucidate the genetic diversity of the genomic DNA of Didymella bryoniae and also to generate specific diagnostic DNA probe useful for identification and detection. The 40 primers produced clear bands consistently from the genomic DNA of twenty isolates of Didymella bryoniae, and two hundred seventy-three amplified fragments were produced with 40 primers. The combined data from 273 bands was analyzed by a cluster analysis using UPGMA method with an arithmetic average program of NTSYS-PC (Version 1.80) to generate a dendrogram. At the distance level of 0.7, two major RAPD groups were differentiated among 20 strains. RAPD group (RG) I included 8 isolates from watermelon except one isolate from melon. RAPD group (RG) IV included 12 isolates from squash, cucumber, watermelon and melon.. In amplification experiment with SCAR specific primer RG1F-RG1R resulted in a single band of 650bp fragment only for 8 isolates out of 20 isolates that should be designated as RAPD Group 1. However, same set of experiment done with RGIIF-RGIIR did not result in any amplified product.. Our attempts to detect intraspecific diversity of ITS region of rDNA by amplifying ITS region and 17s rDNA region for 20 isolates and restriction digestion of amplified fragment with 12 enzymes did not reveal polymorphic band. In order to develop RAPD markers for RGIV specific primer, a candidate PCR fragment( ≒1.4kb) was purified and Southern hybridized to the amplified fragment RGIV isolates. This promising candidate probe recognized only RGIV isolates
Small GTP-binding proteins are divided into three major group: Ras, Rho and Ypt/Rab. They have the conserved regions designed G1 to G5 that are critical in GDP/GTP exchange, GTP-induced conformational change and GTP hydrolysis. We isolated and characterized genomic DNA or cDNAfragments encoding G1 to G3 domains of small GTP-binding protein Rab and Rho from several plant species using two different PCR-based cloning strategies. Seven rab DNA fragments were isolated from 4 different plants, mung-bean, tobacco, rice and pepper using two degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1 and G3 in small GTP-binding proteins. The amino acid sequences among these rab DNA fragments and other known small GTP-binding proteins shows that they belong to the Ypt/Rab family. Six rho DNA fragments were isolated from 5 different plants, mung-bean, rice, Arabidopsis, Allium and Gonyaulax using the nested PCR method that involves four degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1, G3 and G4. The rho DNA fragments cloned show more than 90% homology to each other. Sequence comparison between plant and other known Rho family genes suggests that they are closely related (67 to 82% amino acid identity). Sequence analysis and southern blot analysis of rab and rho in mung-bean suggest than thses genes are encoded by multigene family in mung-bean.
Rice black-streaked dwarf virus (RBSDV) and Maize rough dwarf virus (MRDV) are closely related viruses. Since the two viruses produce identical symptoms on maize, barley, and wheat, diagnosis of infected plants is difficult. Previously, we reported that partial cDNA clones of RBSDV S5 and S6 from the Japanese isolate (RBSDV-H) have lower sequence homology to MRDV than do cDNA clones from other genomic segments. In order to test whether cDNA clones of RBSDV-H S5 and S6 can be used for molecular diagnosis, RBSDV field isolates from Korea and from Hokkaido, Japan were tested in dot blot hybridizations probed with RBSDV-H S5 and S6 cDNA colnes. Hybridization with these probes was more intense against the RBSDV genome than against the MRDV genome. Therefore, RBSDV-H S5 and S6 cDNA clones can be used to differentiate between the two viruses. Furthermore, RBSDV-H S5 and S6 clones reacted more strongly against the viruses from stunted maize plants from Korean fields than to MRDV, indicating that RBSDV may be the causal disease agent in maize plants in Korea.
The genetic variation of random amplified polymorphic DNA (RAPD) patterns of genomic DNAs was investigated in dioecious plant Rumex acetosa L., which carries different sex chromosome complements in female (2n=12A+XX) and male (2n=12A+XY$_1$Y$_2$). One hundred and twenty random primers consisted of 10-mer were used for PCR amplification. Polymorphic bands were found in 24 primers. Specific bands for female and male were 16 and 18, respectively. Especially, a band of 1,440 bp from the OPC-10 primer was male specific. These sex specific RAPD markers are used to understanding the sex determination mechanism in plants.
Simple sequence repeats (SSR) are widely dispersed throughout eukaryotic genomes, highly polymorphic, and easily typed using polymerase chain reaction (PCR). The objective of this study was to determine the polymorphism of different Chlamydomonas reinhartdtii strains and to determine the mode of inheritance of the SSR locus in Chlamydomonas. A genomic DNA library of C. reinhardtii was constructed and screened with a radiolabeled $(AC)_{11}$ probe for the selection of (CA/GT)n repeat clone. Selected clone was seqeuenced, and PCR primer set flanking (CA/GT)n sequence was constructed. PCR was used to specifically amplify the SSR locus from multiple isolates of C. reinhardtii. The locus was polymorphic in some of the C. reinhardtii isolates. However, the locus was amplified only 4 of 6 isolates of C. reinhardtii, not in other 2 isolates of C. reinhardtii, suggesting that this locus is not extensively conserved. A simple Mendelian inheritance pattern was found, which showed 2:2 segregation in the tetrads resulting from a cross between C. reinhardtii and C. smithii. Our results suggest that this simple sequence repeat DNA polymorphism will be useful for identity testing, population studies, linkage analysis, and genome mapping in Chlamydomonas.
Polymerase chain reaction (PCR) is used in a wide array of researches in plant molecular genetics and breeding. However, considerable time and cost are still required for the preparation of DNA suitable for reliable PCR results, especially in plant species containing high amounts of polyphenols. To reduce time and effort for PCR-based analysis, a simplified but reliable method was developed by a combinational employment of a simple and fast DNA extraction procedure and BLOTTO (Bovine Lacto Transfer Technique Optimizer) in reaction mixture. Genomic DNAs prepared by one-step extraction method from recalcitrant plant species such as Rubus coreanus, apple, grape and lettuce were successfully amplified by random primers in the reaction mixture containing 2 to 4% BLOTTO. Successful amplification of ${\gamma}$-TMT transgene in lettuce transformants by the specific primers was also achieved in the same condition, making rapid screening of positive transformants possible. Our results suggest that use of a simple DNA extraction procedure and incorporation of BLOTTO in reaction mixture in combination can reduce time and effort required for the analyses of a large number of germplasms and transformants by PCR-based techniques.
Geon-Woo Lee;Sang-Tae Seo;Byeongjin Cha;Sang-Sub Han
Research in Plant Disease
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v.29
no.4
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pp.420-424
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2023
In 2020, within the Dongbaekdongsan area in Jeju Island, a Septobasidium sp. associated with a felt disease in Castanopsis sieboldii (Makino) Hatus. ex T. Yamaz. & Mashiba was identified. The symptom included the presence of brown, thin, and silk-like mycelial mats attached to the tree's bark, displaying variations in size from large to small. To induce hyphal growth, the samples collected were incubated in a moist chamber, and the newly formed hyphae were subjected to genomic DNA extractions. The nucleotide sequences of the internal transcribed spacer and small subunit rDNA genes were determined, and molecular characteristics among the isolates were investigated through polymerase chain reaction-based restriction fragment length polymorphism analysis. This Septobasidium sp. exhibited distinct morphological and phylogenetic features compared to those that were previously reported in South Korea. Consequently, this strain is taxonomically classified as a provisionally novel species of Septobasidium. Furthermore, the observed felt disease exhibited a high degree of host specificity, as it was exclusively identified in C. sieboldii without occurrence in other tree species at the time of observation.
Twenty isolates of Didymella bryoniae were isolated from infected cucurbit plants in various growing areas of southern Korea in 2001 and 2002. Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) group [RG] I of D. bryoniae was more virulent than RG IV to watermelon. Virulence of the RG I isolate was strong to moderate to cucumber, whereas that of the RG IV varied from strong, moderate to weak. Two hundred seventy-three amplified fragments were produced with 40 primers, and were analyzed by a cluster analysis using UPGMA method with an arithmetic average program of NTSYSPC. At the distance level of 0.7, two major genomic DNA RAPD groups were differentiated among 20 isolates. The RG I included 7 isolates from watermelon and one isolate from melon, whereas the RG IV included 12 isolates from squash, cucumber, watermelon and melon. Amplification of internal transcribed spacer (ITS) region and small subunit rRNA region from the 20 isolates yielded respectively a single fragment. Restriction pattern with 12 restriction enzymes was identical for all isolates tested, suggesting that variation in the ITS and small subunit within the D. bryoniae were low. Amplification of the genomic DNAs of the tested isolates with the sequence characterized amplified regions (SCAR) primer RG IF-RG IR specific for RG I group resulted in a single band of 650bp fragment for 8 isolates out of the 20 isolates. Therefore, these 8 isolates could be assigned into RG I. The same experiments done with RG IIF-RG IIR resulted in no amplified PCR product for the 20 isolates tested. An about 1.4 kb-fragment amplified from the RG IV isolates was specifically hybridized with PCR fragments amplified from genomic DNAs of the RG IV isolates only, suggesting that this PCR product could be used for discriminating the RG IV isolates from the RG I isolates as well other fungal species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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