Transgenic plants have been studied as delivery system for edible vaccine against various diseases. Edible plant vaccines have several potential advantages as follows: an inexpensive source of antigen, easy administration, reduced need for medical personnel, economical to mass produce and easy transport, heat-stable vaccine without refrigerator, generation of systemic and mucosal immunity and safe antigen without fetal animal-virus contaminants. The amount of recombinant antigens in transgenic plants ranged from 0.002 to 0.8% in total soluble protein, depending on promoters for the expression of interested genes and plants to be used for transformation. Throughout the last decade, edible plant vaccine made notable progresses that protect from challenges against virus or bacteria. However edible plant vaccines have still problems that could be solved. First, the strong promoter or inducible promoter or strategy of protein targeting could be solved to improve the low expression of antigens in transgenic plants. Second, the transformation technique of target plant should be developed to be able to eat uncooked. Third, marker-free vector could be constructed to be more safety. In this review we describe advances of edible plant vaccines, focusing on the yields depending on plants/promoters employed and the results of animal/clinical trials, and consider further research for the development of a new plant-derived vaccine.
Kim, Hyun A;Kwon, Suk Yoon;Yang, Moon Sik;Choi, Pil Son
Journal of Plant Biotechnology
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제41권1호
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pp.50-55
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2014
Plant-based vaccines possess some advantages over other types of vaccine biotechnology such as safety, low cost of mass vaccination programs, and wider use of vaccines for medicine. This study was undertaken to develop the transgenic maize as edible vaccine candidates for humans. The immature embryos of HiII genotype were inoculated with A. tumefaciens strain C58C1 containing the binary vectors (V662 or V663). The vectors carrying nptII gene as selection marker and scEDIII (V662) or wCTB-scEDIII (V663) target gene, which code EIII proteins inhibite viral adsorption by cells. In total, 721 maize immature embryos were transformed and twenty-two putative transgenic plants were regenerated after 12 weeks selection regime. Of them, two- and six-plants were proved to be integrated with scEDIII and wCTB-scEDIII genes, respectively, by Southern blot analysis. However, only one plant (V662-29-3864) can express the gene of interest confirmed by Northern blot analysis. These results demonstrated that this plant could be used as a candidated source of the vaccine production.
Plants have considerable advantages for the production of antigenic proteins because they provide an inexpensive source of protein and an easy administration of vaccine. Since a publication describing edible plant vaccine of HBsAg in 1992, a number of laboratories around the world have studied the use of plants as the bioreactor to produce antigenic proteins of human or animal pathogens. Over the last ten years, these works have been mainly focused on three major strategies for the production of antigenic proteins in plants: stable genetic transformation of either the nuclear or plastid genome, or transient expression in plants using viral vectors. As many antigenic proteins have been expressed in tobacco, also several laboratories have succeeded to express genes encoding antigenic proteins in other crop plants: potato, tomato, maize, carrot, soybean and spinach. At present many works for the production of edible plant vaccine against bacteria-mediated diseases have mostly performed the studies of enterotoxins and adhesion proteins. Also the development of new-type antigens (pili, flagella, surface protein, other enterotoxin and exotoxin etc.) is required for various targets and more efficacy to immunize against microorganism pathogens. Many works mostly studied in experimental animals had good results, and phase I clinical trial of LTB clearly indicated its immunogenic ability. On the other hand, edible plant vaccines have still problems remained to be solved. In addition to the accumulation of sufficient antigen in plants, human health, environment and agriculture regulation should be proven. Also oral tolerance, the physiological response to food antigens and commensal flora is the induction of a state of specific immunological unresponsiveness, needs to be addressed before plant-derived vaccine becomes a therapeutic option.
Kim Young-Sook;Kim Mi-Young;Kang Tae-Jin;Kwon Tae-Ho;Jang Yong-Suk;Yang Moon-Sik
Journal of Plant Biotechnology
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제7권2호
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pp.97-103
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2005
This study was carried out to obtain basic information for gene manipulation in potent edible tobacco (Nicotiana tabacum cv. TI 516). N. tabacum cv. TI 516 is a plant for a possible candidate to use as an edible vaccine, since it contains a low level of nicotine. The effective plant regeneration system through leaf disc culture was achieved using a MS basal medium supplemented with 0.1 mg $1^{-1}$ NAA and 0.5 mg $1^{-1}$ BA. In order to transform the N. tabacum cv. TI 516 with the green fluorescent protein (GFP) gene, Agrobacterium tumefaciens LBA 4404 containing the GFP gene was used. Genomic PCR confirmed the integration of the GFP gene into nuclear genome of transgenic plants. Expression of the GFP gene was identified in callus, apical meristem and root tissue of transgenic N. tabacum cv. TI 516 plants using fluorescence microscopy. Western blot analysis revealed the expression of GFP protein in the transgenic edible tobacco plants. The amount of GFP protein detected in the transgenic tobacco plants was approximately 0.16% of the total soluble plant protein (TSP), which was determined by ELISA.
As the capture fishing industry has declined, the aquaculture industry has become an important source of seafood. With this tendency all fish farming will be performed by large-scale farms where the fish are cultivated in much high density and as a result the incidence of infectious diseases increases. Therefore, vaccination has become an increasingly important part of aquaculture as a cost effective method of controlling various diseases. The early fish vaccines were the formalin inactivated bacteria or virus cultures, which were administered by either immersion or injection. Recombinant DNA biotechnology allowed us to develop orally administrated DNA and recombinant vaccines. In terms of the manufacturing process and cost, Lemna and Spirodela is the most efficient and reliable plant expression system for the production of edible vaccine.
Helicobacter pylori is the etiologic agent of human gastritis and peptic ulceration and produces urease as the major protein component on its surface. H. pylori urease is known to serve as a potent immunogen as well as major virulence factor. In order to express the recombinant urease in tobacco plants, a DNA fragment containing the minimal H. pylori urease gene cluster was subcloned into a plant expression vector. The recombinant vector was transformed to tobacco plants. The integration of the recombinant plasmids into tobacco chromosomal genome was verified by genomic PCR. Expression to mRNA was confirmed by Northern blot analysis, and expression to recombinant urease protein was observed by Western blot analysis. These results showed that the recombinant urease can be produced in tobacco plants and will be tested for immune response to use as an edible vaccine.
Cotyledonary leaves of tomato cv. Megha were transformed with the hepatitis B virus 's' gene, which encodes surface antigen. Six plant expression cassettes (pHBS, pHER, pEFEHBS, pEFEHER, pSHER and pEFESHER) were used to assay the possible expression levels by agroinfiltration. The maximum transient expression level of 489.5 ng/g D.W. was noted in pEFEHER-infiltrated cotyledonary leaves. Transgenic tomato plants with pEFEHBS and pEFEHER expression cassettes were regenerated and characterized by molecular analysis. The expression of the antigen in the fruits was confirmed by RT-PCR and ELISA analysis. This is the first report on the expression of hepatitis B surface antigen in tomato.
Kim, Hyun-Soon;Jeon, Jae-Heung;Kim, Cheol-Jung;Hyouk Joung
Journal of Plant Biotechnology
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제4권4호
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pp.155-161
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2002
The HCV gene was expressed in potato plants under the control of the constitutive CaMV 355 promoter or tuber-specific patatin promoter. Solanum tuberosum plants carrying a plant expression vector harboring the encoding region of HCV gene were generated by Agrobacterium tumefaciens-mediated in vitro transformation methods. The presence of HCV gene in the plant genome was detected by PCR and DNA hybridization experiments. We obtained the 5 lines of transgenic potato with the pMBPHCV construct and 4 lines of transgenic potato with the pATHCV construct. The HCV transgenic stably integrated into the potato genome, as well as their transcription. HCV mRNA was identified in leaf and tuber tissues of transgenic plants by Northern blot analysis. The transgenic potato plants produced the expected transcript, and the corresponding HCV protein accumulated in individual transgenic plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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