Choi, Min-Yeon;Kang, Gum-Yong;Hur, Jae-Young;Jung, Jin Woo;Kim, Kwang Pyo;Park, Sang-Hyun
Molecules and Cells
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v.26
no.2
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pp.200-205
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2008
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling pathway is activated in response to extracellular stimuli and regulates various activities in eukaryotic cells. Following exposure to stimuli, MAPK is known to be activated via dual phosphorylation at a conserved TxY motif in the activation loop; both threonine and tyrosine residues are phosphorylated by an upstream kinase. However, the mechanism underlying dual phosphorylation is not clearly understood. In the budding yeast Saccharomyces cerevisiae, the Hog1 MAPK mediates the high-osmolarity glycerol (HOG) signaling pathway. Tandem mass spectrometry and phosphospecific immunoblotting were performed to quantitatively monitor the dynamic changes occurring in the phosphorylation status of the TxY motif of Hog1 on exposure to osmotic stress. The results of our study suggest that the tyrosine residue is preferentially and dynamically phosphorylated following stimulation, and this in turn leads to the dual phosphorylation. The tyrosine residue was hyperphosphorylated in the absence of a threonine residue; this result suggests that the threonine residue is critical for the control of signaling noise and adaptation to osmotic stress.
To understand the role of protein kinase C (PKC) in the regulation of chondrogenesis, we examined proteins which are phosphorylated by PKC. Stage 23/24 chick embryo wing mesenchymes were micromass-cultured to induce chondrogenesis and cell extracts were phosphorylated in a condition that activates PKC. Several proteins including 63 and 66 kDa proteins were phosphorylated. The 66 kDa protein was phosphorylated only in the presence of phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and phosphatidylserine CPS), and the phosphorylation was almost completely diminished by bisindolylmaleimide, a PKC inhibitor. In addition, partially purified PKC increased the phosphorylation of the 66 kDa protein. Treatment of cultures with lysophosphatidylcholine (LPC) promoted chondrogenesis and phosphorylation of 66 kDa protein, while PMA and thymeleatoxin inhibited both of the two events. Our results suggest that the 66 kDa protein is a putative substrate of PKC, and phosphorylation of the 66 kDa protein, probably by $PKC\alpha$ is required for chondrogenesis.
Glycinin, one of the predominant storage proteins in soybeans, was examined as to whether it could be used as a calcium-binding mediator after chemical phosphorylation and enzymatic hydrolysis. Glycinin is composed of six subunits. One of the proglycinin subunits $(A_{la}B_{lb})$ was overexpressed in E. coli to obtain nonphosphorylated proteins with homogeneity. To investigate the enhanced calcium-binding properties of the phosphopeptides, the proglycinin was purified, phosphorylated, and hydrolyzed with trypsin. The proglycinin expressed in E. coli was purified by ammonium sulfate precipitation, ion-exchange chromatography, and cryoprecipitation. Chemical phosphorylation by sodium trimetaphosphate was performed to obtain phosphorylated proglycinin. After the phosphorylation, one-dimensional isoelectric focusing gel electroanalysis confirmed the phosphorylation of the proglycinin. The phosphorylated peptides were then hydrolyzed with trypsin, followed by a binding reaction with calcium chloride. The calcium-bound phosphopeptides were finally separated using immobilized metal $(Ca^{2+})$ chromatography. Consequently, a limited tryptic hydrolysate of the isolated phosphopeptides exhibited an enhanced calcium-binding ability, suggesting the potential of glycinin phosphopeptides as a calcium-binding mediator with greater availability.
Amphetamine, a synthetic psychostimulant, is transported by the dopamine transporter (DAT) to the cytosol and increases the exchange of extracellular amphetamine by intracellular dopamine. Recently, we reported that the phosphorylation levels of ezrin-radixin-moesin (ERM) proteins are regulated by psychostimulant drugs in the nucleus accumbens, a brain area important for drug addiction. However, the significance of ERM proteins phosphorylation in response to drugs of abuse has not been fully investigated. In this study, using PC12 cells as an in vitro cell model, we showed that amphetamine increases ERM proteins phosphorylation and protein kinase C (PKC) ${\beta}$ inhibitor, but not extracellular signal-regulated kinase (ERK) or phosphatidylinositol 3-kinases (PI3K) inhibitors, abolished this effect. Further, we observed that DAT inhibitor suppressed amphetamine-induced ERM proteins phosphorylation in PC12 cells. These results suggest that $PKC{\beta}$-induced DAT regulation may be involved in amphetmaine-induced ERM proteins phosphorylation.
Protein phosphorylation is one of most important post-translational modifications (PTMs) and plays an important role in regulation of protein function. Here we develop a method for a global identification of phosphopeptides and phosphorylation sites using nano-LC MS/MS. We compared two separation methods, C4 and strong cation ion exchange (SCX). Before phosphopeptides enrichment with $TiO_2$, total proteins from Rat 1 cells have been separated using C4 column or tryptic peptides of proteins from the cells have been separated using SCX column. Finally, we have detected 52 phosphorylation sites on 41 proteins from SCX method and 375 phosphorylation sites on 252 proteins from C4 method, and determined the function and localization of identified phosphoproteins using DAVID software. In particular, we showed new phosphorylation sites from membrane proteins related to various cell signaling mechanisms. This method may contribute to study global signal networks induced by various signals including ligands and drugs.
Park, Jung-Gyu;Jo, Young-Ah;Kim, Yun-Taik;Yoo, Young-Sook
BMB Reports
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v.31
no.5
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pp.468-474
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1998
Membrane depolarization in PC12 cells induces calcium influx via an L-type voltage-sensitive calcium channel (L-VSCC) and increases intracellular free calcium, which leads to tyrosine phosphorylation of epidermal growth factor (EGF) receptor and the associated adaptor protein, She. This activated EGF receptor complex then can activate mitogen-activated protein (MAP) kinase, as in nerve growth factor (NGF) receptor activation. In the present study, we investigated the role of EGF receptor in the signaling pathway initiated by membrane depolarization of PC12 cells. Prolonged membrane depolarization induced phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) within 1 min in undifferentiated PC12 cells. Pretreatment of PC12 cells with the calcium chelator EGTA abolished depolarization-stimulated ERK phosphorylation, but NGF-induced phosphorylation of ERK was not affected. The chronic treatment of phorbol ester, which down-regulated the activity of protein kinase C (PKC), did not affect the phosphorylation of ERK upon depolarization. In the presence of an inhibitor of EGF receptor, neither depolarization nor calcium ionophore increased the level of ERK phosphorylation. These data imply that the EGF receptor is functionally necessary to activate ERK and neurite outgrowth in response to the prolonged depolarization in PC12 cells, and also that PKC is apparently not involved in this signaling pathway.
2-deoxy-D-glucose(2DG)-caused endoplasmic reticulum (ER) stress inhibits protein phosphorylation at tyrosine residues. However, the accurate regulatory mechanisms, which determine the inflammatory response of chondrocytes to ER stress via protein tyrosine phosphorylation, have not been systematically evaluated. Thus, in this study, we examined whether protein phosphorylation at tyrosine residues can modulate the expression and glycosylation of COX-2, which is reduced by 2DG-induced ER stress. We observed that protein tyrosine phosphatase (PTP) inhibitors, sodium orthovanadate (SOV), and phenylarsine oxide (PAO) significantly decreased expression of ER stress inducible proteins, glucose-regulated protein 94 (GRP94), and CCAAT/ enhancer-binding-protein- related gene (GADD153), which was induced by 2DG. In addition, we demonstrated that SOV and PAO noticeably restored the expression and glycosylation of COX-2 after treatment with 2DG. These results suggest that protein phosphorylation of tyrosine residues plays an important role in the regulation of expression and glycosylation during 2DG-induced ER stress in rabbit articular chondrocytes.
In budding yeast, G2/M transition is tightly correlated with bud morphogenesis regulated by Swel and septin that plays as a scaffold to recruits protein components. BNI5 isolated as a suppressor for septin defect is implicated in septin organization and cytokinesis. The mechanism by which Bni5 regulates normal septin function is not completely understood. Here, we show that Bni5 phosphorylation is required for mitotic entry regulated by Swel pathway. Bni5 modification was evident from late mitosis to G1 phase, and CIP treatment in vitro of affinity-purified Bni5 removed the modification, indicative of phosphorylation on Bni5. The phosphorylation-deficient mutant of BNI5 (bni5-4A) was defective in both growth at semi-restrictive temperature and suppression of septin defect. Loss of Bni5 phosphorylation resulted in abnormal bud morphology and cell cycle delay at G2 phase, as evidenced by the formation of elongated cells with multinuclei. However, deletion of Swel completely eliminated the elongated-bud phenotypes of both bni5 deletion and bni5-4A mutants. These results suggest that the bud morphogenesis and mitotic entry are positively regulated by phosphorylation-dependent function of Bni5 which is under the control of Swel morphogenesis pathway.
Phosphorylation plays the most important role in cell signaling mechanism. Various methods to identify the phosphorylation sites of proteins using tandem mass spectrometry (MS/MS) have been reported recently. Furthermore, the enrichment strategy such as Titanium dioxide ($TiO_2$) method should be combined with MS/MS analysis to effectively identify phosphorylation sites. It is necessary to optimize phosphopeptide-enrichment strategy, $TiO_2$ method in this study, due to the low amount of phosphorylated form followed by analyzing them by MS/MS. To evaluate the several conditions to enrich phosphopeptides using $TiO_2$ method, we used ${\apha}$-casein as a standard phosphoprotein and analyzed a representative phosphopeptide (VPQLEIVPNpSAEER) peak of MS spectrum. Batch is better than column method for binding and 300 g/l DHB in loading buffer is better than lower concentration of DHB. 3% TFA and pH 10.5 shows high efficiency of phosphopeptide-enrichment for washing and elution steps, respectively. Finally we identified various efficient conditions of phosphopeptide-enrichment method using $TiO_2$. This optimized method would assist in reliable identifying thousands of phosphorylation sites existed in low abundance from various complex proteins.
Lee Soon-Youl;Lee Jae-Hag;Kang Kwon Kyoo;Hwang Sue-Yun;Choi Kang Duk;Oh Uhtaek
Archives of Pharmacal Research
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v.28
no.4
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pp.405-412
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2005
A vanilloid receptor (VR1, now known as TRPV1) is an ion channel activated by vanilloids, including capsaicin (CAP) and resiniferatoxin (RTX), which are pungent ingredients of plants. Putative endogenous activators (anandamide and metabolites of arachidonic acid) are weak activators of VR1 compared to capsaicin and RTX, and the concentrations of the physiological condition of those activators are not sufficient to induce significant activation of VR1. One way to overcome the weak activation of endogenous activators would be the sensitization of VR1, with the phosphorylation of the channel being one possibility. The phosphorylation of VR1 by several kinases has been reported, mostly by indirect evidence. Here, using an in vivo phosphorylation method, the VR1 channel was shown to be sensitized by phosphorylation of the channel itself by multiple pathways involving PKA, PKC and acid. Also, in sensitizing VR1, BK appeared to show activation of PKC for the sensitization of VR1 by phosphorylation of the channel.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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