Huntington's disease (HD) is an autosomal dominant neurodegenerative disorder characterized by motor, cognitive, and psychiatric symptoms, accompanied by marked cell death in the striatum and cortex. Stereotaxic injection of quinolinic acid (QA) into striatum results in a degeneration of GABAergic neurons and exhibits abnormal motor behaviors typical of the illness. The objective of this study was carried out to obtain basic information about whether parthenogenetic mouse embryonic stem (PmES) cells are suitable for cell replacement therapy of HD. To establish PmES cell lines, hybrid F1 (C57BL/6xCBA/N) mouse oocytes were treated with 7% ethanol for 5 min and cytochalasin-B for 4 hr to initiate spontaneous cleavage. Thus established PmES cells were induced to differentiate using bFGF (20ng/ml) followed by selection of neuronal precursor cells for 8 days in N2 medium. After selection, cells were expanded at the presence of bFGF (20 ng/ml) for another 6 days, then a final differentiation step in N2 medium for 7 days. To establish recipient animal models of HD, young adult mice (7 weeks age ICR mice) were lesioned unilaterally with a stereotaxic injection of QA (60 nM) into the striatum and the rotational behavior of the animals was tested using apomorphine (0.1mg/kg, IP) 7 days after the induction of lesion. Animals rotating more than 120 turns per hour were selected and the differentiated PmES cells (1$\times$10$^4$cells/ul) were implanted into striatum. Four weeks after the graft, immunohistochemical studies revealed the presence of cells reactive to anti-NeuN antibody. However, only a slight improvement of motor behavior was observed. By Nissl staining, cell mass resembling tumor was found at the graft site and near cortex which may explain the slight behavioral improvement. Detailed experiment on cell viability, differentiation and migration explanted in vivo is currently being studied.
핵이식 방법을 이용하여 성공적인 복제를 이루기 위해서 인위적인 활성화 처리는 필수적인 요소이다. 본 연구는 전기자극에 의해 활성화된 난자를 chemical agent를 이용하여 추가적인 활성화 처리를 하였을 때 돼지 단위발생란의 발달에 미치는 영향을 알아보고자 수행되었다. 체외에서 $40{\sim}44$시간 동안 배양된 난자를 전기자극(E)으로 활성화 처리한 후 Thimerasol + Dithiothreitol(Thi+DTT), 6-Dimethylaminopurine(6-DMAP) 및 Cycloheximide(CH)를 사용하여 추가 활성화 처리를 하였다. 활성화 방법(E, E+Thi+DTT, E+6-DMAP 및 E+CH)에 따른 단위발생란의 배반포까지의 발달율을 조사한 결과, chemical agent에 의해 추가 활성화된 단위발생란이 전기자극만으로 처리된 구의 단위발생란보다 유의적으로 높은 발달율을 보였다($21.5{\sim}28.1%$ vs. 18.0%, P<0.05). 특히, E+Thi+DTT를 이용하였을 때 발달율이 유의적으로 높게 나타났다(28.1%, P<0.05). 활성화 처리별 전핵 형성율을 조사한 결과, chemical agent에 의해 추가 활성화 처리된 구에서 하나의 극체(1PN) 형성률은 처리별로 차이를 보이지 않았으나$(59.9{\sim}64.7%)$, 2PN 형성율은 추가 활성화 처리구에서 전기자극만을 사용하였을 때보다 유의적으로 높게 나타났다($7.2{\sim}9.7%$ vs. 4.3%, P<0.05). 이상의 결과를 살펴볼 때, 전기자극 후 chemical agent를 이용한 추가 활성화는 단위발생란의 배반포까지의 발달능력을 증가시키는 것으로 생각된다.
In this study, to improve the in vitro development of various cells including cloned embryos, the effects that isoproterenol and melatonin have on in vitro development of porcine parthenogenetic oocytes were investigated. Parthenogenetic activation was induced with electrical stimulation, BSA and 6-DMAP treatment. $10^{-7}M$ of melatonin and isoproterenol ($10^{-10}$, $10^{-12}$ and $10^{-14}M$) were supplemented for in vitro maturation (IVM) and in vitro culture (IVC) medium, with different concentrations. When isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, there was no significant (P<0.05) difference of maturation rate in the treatment groups as well as in that of only melatonin. As isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, blastocyst rates of isoproterenol $10^{-12}M$ treatment group (37.1%) were significantly (P<0.05) higher than control group (26.0%). Isoproterenol and melatonin were supplemented in IVC medium with different concentrations, then the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (82.2%) was significantly (P<0.05) higher than the group that melatonin was only supplemented (70.9%). There was no difference of blastocyst rate between the treatment groups. When isoproterenol and melatonin were supplemented for IVM+IVC medium with different concentrations, the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (92.5%) was significantly (P<0.05) higher than the control group (82.8%) and the group that melatonin was only treated (81.6%). The blastocyst rate of $10^{-12}M$ as 45.6% was significantly (P<0.05) higher than control group (25.2%) and melatonin treatment group (31.2%). The cell number of blastocyst in $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group $35.5{\pm}3.4$ was significantly (P<0.05) highest. The results of this study showed that the development rate of IVC when both isoproterenol and melatonin were supplemented was higher than when melatonin was only supplemented. Therefore, it is concluded that isoproterenol is rather effective in the activation of melatonin. $10^{-7}M$ melatonin and $10^{-12}M$ isoproterenol were considered suitable concentration.
Sa, S. J.;Park, C. K.;H. T. Cheong;B. K. Yang;Kim, C. I.
한국가축번식학회지
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제25권3호
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pp.243-250
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2001
본 연구는 미성숙 돼지 난포 난자의 체외성숙에 있어서 catalase (0.1 mg/$m\ell$)와 xanthine (5 mM)의 역할에 대하여 검토하였다. 그 결과, 체외에서 성숙배양 48시간 후 metaphase-II 단계로 발육한 난자의 비율은 xanthine (54%) 첨가 보다는 대조구 (72%), catalase (73%) 및 catalase+xanthine (70%) 첨가구에서 유의적으로 높은 성숙율을 나타냈다 (P<0.05). 한편, 체외에서 30시간 동안 성숙배양한 경우 모든 실험구에서 성숙율의 유의적인 차이는 인정되지 않았으나, 성숙배양 36, 42 및 48시간 후 xanthine의 첨가 여부에 관계없이 catalase 무첨가 (29~50%) 보다는 첨가시 (49~70%)에 유의적으로 높은 성숙율을 나타냈다 (P<0.05). 체외에서 xanthine의 첨가 또는 무첨가시 배양시간의 연장이 난자의 성숙에 미치는 영향을 검토한 결과 배양 72시간에서 높은 성숙율을 나타냈으며, 퇴행난자의 비율은 배양 120시간에서 catalase무첨가(47%)에 비하여 첨가시 (28%) 유의적으로 낮게 나타났으나 xanthine이 첨가된 배양액내에서 catalase첨가유무에 의한 차이는 인정되지 않았다. 또한 xanthine을 첨가하여 72시간 배양한 경우 단위발생란이 처음으로 관찰되었지만 catalase의 첨가 유무에 의한 차이는 인정되지 않았지만 배양시간이 길어짐에 따라 발생비율이 증가하였다. 이와 같은 결과에서 돼지 난포난자는 catalase와 xanthine을 첨가한 배양액내에서 배양 72시간까지 성숙율이 증가할 수 있으며, 배양기간의 연장시 catalase에 의하여 난자의 퇴행을 억제하며 단위발생란의 증가를 가져오는 것으로 생각된다.
The suitable electric stimulation is essential for activation and fusion of oocytes before or after nuclear transplantation The present study was undertaken to determine the optirnal condition for the parthenogenetic activation of in vitro rnatured(IVM) bovine oocytes by electric stimulation. Different direct current(DC) electric voltage of 1.0, 1.5 and 2.0 kV/cm and pulse duration of 30, 60 and 120 $\mu$sec were applied to the JVM nocytes in 0.3 M mannitol solution containing each 100 $\mu$M CaCl$_2$ and MgCl$_2$. IVM occytes at 24, 28 and 32 hours Post-maturation(hpm) were also electrically stimulated at 1.5 kV /cm, for 60 $\mu$ sec. The stimulated nocytes were then co-cultured in TCM-199 solution containing 10% fetal calf serum with bovine oviductal epithelial cells for 7~9 days in a 5% $CO_2$ incubator at 39$^{\circ}C$ ~ Their activation and in vitro development to morula and blastocyst were assessed under an inverted microscope. The higher activation rates 62.8 and 63.4% and in vitro de- velopment rates to morula and blastocyst 5.1 and 10.9% were shown in the oocytes stimulated at the voltage of 1.0 and 1.5 kV/cm than 2.0 kV/cm, respectively. No signifi- cantly(P<0.05) different activation rate was shown in JVM oocytes stimulated for 30, 60 and 120 $\mu$sec, but developmental rates to morula and blastocyst was significantly(P<0.05) higher in the oocytes stimulated for 30 $\mu$sec(6~3%) and 60 $\mu$sec(10~0%) than 120 $\mu$sec(0~ 0%). The aged oocytes at 28 and 30 hpm showed significantly(P<0.05) higher activation rates(72~7 and 79.7%) than the oocytes at 24 hpm(50~9%)~ Also, their developmental rates to morula and blastocyst were significantly(P<0.05) higher in the nocytes at 28(14.3%) and 32 hpm(15.9%) than 24 hpm(3.6%). From these results, it can be suggested that the optimal electric stimulation for IVM bovine occytes is a DC voltage between 1.0 and 1.5 kV/cm, pulse duration of 30 or 60 $\mu$sec, and the optimal age of IVM oocytes for electric activation is at 32 hpm.
Objective: cAMP and mature promoting factor (MPF) play critical roles during the maturation of mammalian oocytes. The aim of this study was to produce the offspring from denuded oocytes (DOs) in mice by regulating cAMP and MPF. Methods: In this study, we used DOs at the germinal vesicle (GV) stage in mice and regulated levels of cAMP and MPF in DOs by adding Forskolin and PD166285 during in vitro maturation without follicle stimulating hormone and luteinizing hormone, respectively. Results: Combined use of $50{\mu}M$ Forskolin for 3 h and $2.5{\mu}M$ PD166285 for additional 21 h enhanced the developmental competence of DOs, maturation rate of DOs was $76.71%{\pm}4.11%$, blastocyst rate was $18.33%{\pm}4.44%$ after parthenogenetic activation (PA). The DOs could successfully be fertilized with sperm in vitro, cleavage rate was $17.02%{\pm}5.82%$ and blastocyst rate was $5.65%{\pm}3.10%$. Besides, 2-cell in vitro fertilization embryos from DOs produced 4 normal live offspring (4/34). Conclusion: The results confirmed that the combination of Forskolin and PD166285 can induce DOs to complete meiosis process and produce normal offspring.
본 연구의 목적은 돼지난자의 체외성숙, 수정 및 단위발생시 일어나는 표층과립의 분포를 살펴보고, 그것들의 역할을 규명해 보고자 실시하였다. 난자의 표층과립은 형광염색을 실시한 후 laser scanning confocal microscope를 이용하여 관찰하거나 transmission electron microscope를 사용하여 관찰하였다. Germinal vesicle 단계의 돼지난자에서는 표층과립은 난자피질에 비교적 두꺼운 형태로 발견되었는데, germinal vesicle breakdown이 일어난 직후 피질 부근으로 표층과립의 움직임이 관찰되었다. Microfilaments의 중합화를 방해하는 cytochalasin B를 처리하였을 때 표층과립의 움직임은 관찰되지 않았다. 무 처리군의 수정 및 단위발생을 유도한 난자에서는 표층과립 내용물들이 위란강내에 균질하게 관찰되었으나, cytochalasin B를 처리한 난자에서는 비정상적인 cortical granule의 움직임을 관장하고 이러한 움직임이 수정시 다정자 침입을 막고 표층과립 반응에 영향을 미치는 것으로 사료된다.
Park, Chun-Gyu;Park, Jin-Ki;Kim, Sung-Woo;Lee, Ju-Young;Han, Joo-hee;Lee, Seung-Eun;Baek, Kyung-Nye;Chang, Won-Kyung
한국동물번식학회:학술대회논문집
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한국동물번식학회 2004년도 춘계학술발표대회
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pp.259-259
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2004
Porcine sperm extract (PSE) supporting Ca/sup 2+/ osillation was microinjected into the in vitro matured porcine oocytes. In the presence of the capacitative Ca/sup 2+/ entry mechanism which can activate MII oocytes, preparation methods of sperm extraction were studied by many researchers. Such as freeze-thaw cycle, homogenation, sonication of boar sperm was used for certification of their activity of calcium signals. (omitted)
This study investigated whether the addition of porcine sperm cytosolic factor (SCF) at fusion/activation affects in vitro development of porcine parthenogenetic(PA) and nuclear transfer (NT) embryos. To determine the optimum concentration of SCF, control group of oocytes was activated with 0.3M mannitol (1.0 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$), other three groups of oocytes were parthenogentically activated with the fusion medium (0.1mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$) supplemented with 100, 200 or 300 ${\mu}$g/ml SCF, respectively. Matured oocytes were activated with two electric pulses (DC) of 1.2 kv/cm for 30 ${\mu}$sec. The activated embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. Oocytes activated in the presence of SCF showed a significantly higher blastocyst rate than control (p<0.05). Apoptosis rate was significantly lower in 100 ${\mu}$g/ml SCF group than other groups (p<0.05). Cdc2 kinase activity in control and SCF treatment group of oocytes was determined using MESACUP cdc2 kinase assay kit at 1, 5, 10, 15, 30, 45 and 60 min after activation. Cdc2 kinase activity was significantly decreased (p<0.05) in SCF group than MII oocytes or control within 5 min. For NT embryo production, reconstructed oocytes were fused in the fusion medium supplemented with 0.1 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ (T1), 1.0 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ (T2) and 0.1 mM $CaCl_2{\cdot}2H_2O$ with 100 ${\mu}$g/ml SCF (T3). Fused embryos were cultured in PZM-3 under 5% $CO_2$ in air at $38.5^{\circ}C$ for 6 days. Developmental rate to blastocyst stage was significantly higher in T3 than other groups (23.0% vs. 13.5 to 15.2%) (p<0.05). Apoptosis rate was significantly lower in T3 than T1 or T2 (p<0.05). The relative abundance of Bax-${\alpha}$/Bcl-xl was significantly lower in in vivo or SCF group than that of control (p<0.05). Moreover, the expression of p53 and caspase3 mRNA was significantly lower in in vivo or SCF group than that of control (p<0.05). These results indicate that the addition of SCF at fusion/activation might improve in vitro development of porcine NT embryos through regulating cdc2 kinase level and expression of apoptosis related genes.
Park, Hye-Bin;Park, Yeo-Reum;Lee, Hwa-Yeon;Bae, Hyo-Kyung;Lee, Seunghyung;Park, Choon-Keun;Yang, Boo-Keun;Cheong, Hee-Tae
한국수정란이식학회지
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제32권1호
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pp.25-31
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2017
This study was conducted to investigate the effect of activation method on the endoplasmic reticulum (ER) stress induction, apoptosis and in vitro development of porcine parthenogenetic embryos. Porcine in vitro matured oocytes were activated by four activation methods; 1) electric stimulus (ES) (E), 2) $ES+10{\mu}M$ Ca-ionophore (A23187) treatment (EC), 3) ES+2 mM 6-dimethylaminopurine (6-DMAP) treatment (ED), or 4) ES+A23187 and 6-DMAP treatments (ECD). Parthenogenetic embryos were sampled to analyze x-box binding protein 1 (Xbp1) mRNA, ER stress-associated genes and apoptosis genes at 3 h after ES and the 1-cell and blastocyst stages. In the EC group, the band intensity of spliced Xbp1 (Xbp1s) mRNA was higher than those of the other groups at the 3 h and 1-cell stage, and higher than that of the E group at the blastocyst stage. Four ER stress-associated genes were expressed at the highest level in the EC group and weakly expressed in the ED group at 3 h after activation. However, most of the genes were highly expressed at the 1-cell and blastocyst stages with some variation in the EC and ECD groups. Expression of Bcl-2-associated X protein (Bax) and caspase-3 mRNA was significantly higher in the EC group than in the other groups at all development stages. The developmental rates to the blastocyst stage were higher in the ED and ECD groups than in the E and EC groups. These results suggest that the intracellular ER stress of parthenogenetic porcine embryos is affected by the activation method and subsequently lead to the apoptosis of embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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