Bunsueb, Sudtida;Tangsrisakda, Nareelak;Wu, Alexander T.H.;Iamsaard, Sitthichai
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제47권3호
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pp.180-185
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2020
Objective: Tyrosine phosphorylation is an essential process in many biological systems, including the male reproductive system. The presence of tyrosine-phosphorylated (TyrPho) proteins has been well documented in male reproductive organs, but research in fertile females is still limited. Methods: The ovary, oviduct, and uterus of adult female Sprague-Dawley rats in the estrus phase were used to localize TyrPho proteins using an immunohistochemical technique. These proteins were separated and their expression patterns were examined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and Western blot analysis, respectively. Results: TyrPho proteins were localized in the cytoplasm of the oocyte except the antral fluid; in the granulosa cells, theca cells, and stromal cells of the ovary; at the apical surface of oviductal epithelial cells; and in the basal epithelium and submucosa of the uterine wall. Moreover, we found that 72-, 43-, and 28-kDa TyrPho proteins were localized in the ovary, while 170-, 55-, and 43-kDa proteins were localized in the oviduct. In the uterus, we detected four major bands, corresponding to 61-, 55-, 54-, and 43-kDa TyrPho proteins. Conclusion: Given that these TyrPho proteins were found in major reproductive organs in the estrus phase, these proteins may play important roles in female fertility.
The mammalian oviduct is a place where ontogeny of an animal begins. Nowadays, however, it is possilbe to manipulate a part of physiological events occurring in the oviduct so that fertilization of gametes and early embryonic development of zygotes could proceed outside oviductal environment. Rabbit zygotes readily develop to blastocysts in a conventional culture condition. Most of the mouse fertilized eggs do so when cultured under a specific environment, e.g., in a medium containing ethylenediamine tetraacetic acid. Similarly, a significant number of zygotes from rat, sheep, pig or cattle can develop to blastocysts if they are cultured in the presence of particular component which appear to be somewhat species-specific. Instead of changing the components of medium, somatic cells including oviductal epithelial cells, have widely been used to improve mammalian embryonic development in vitro. Many investigators have reported that mammalian zygotes, whether fertilized in vivo or in vitro, could develop to blastocysts when they were cultured on a monolayer of various kinds of somatic cells or even in a somatic cell-conditioned medium. While little is known about the nature of embryotrophic factor(s) produced in vitro by somatic cells, the existence fo oviduct-specific protein(s) has consistently been demonstrated in many laboratories. Some of these proteins are reported to be associated with oviductal eggs. However, the physiological role of these proteins has still to be determined. Recently we observed that the perivitelline space of mouse oocytes was fluorescently stained with various fluorochrome-protein conjugates following ovulation into the oviducts or upon their expossure to oviductal extracts. Furthermore, it was also found that cattle or pig oviductal fluid gave similar results when examined using mouse ghost ZP. These observations lead to suggest that mammalian oviduct induces changes of biochemical properties of oocytes. Further studies are needed to clarify the nature of oviductal factor(s) and the physiological meaning of the reaction.
The developmental capacity of bovine oocytes under three different culture systems was investigated in this experiment ; One was culture in TCM199 with bovine oviductal epithelial cells(BOEC) for in vitro culture, another was culture in TCM199 with BOEC for 2 days and then transfer of 4~8cell embryos to rabbit oviduct(RO) and the other was transfer of 1 or 2cell embryos to RO for in vivo culture. And the other concern of this experiment was to investigate the effect of culture period and transfer site on recovery. Immature bovine oocytes were cultured in TCM199 with granulosa cells for 22-24hrs and then fertilized in vitro using frozen-thawed semen treated with BO-caffine and BO-BSA. Fifteen to 18hrs after in vitro fertilization oocytes were cultured in TCM199 with BOEC or transferred to RO for 5 days. The rate of development to the morula or blastocyst was higher in transfer of 1 or 2cell embryos to RO(23.1%) than culture in TCM199 with BOEC(11.7%). But, there was no difference between transfer of 1 or 2cell embryos and transfer of 4~8cell embryos to RO(12.8%). Recovery under different culture periods in RO was significantly higher in 90~95hrs(70.1%) than 122~125hrs(50.9%, p<0.05) and recovery significantly increased when oocytes were transferred deeper in RO(2.5cm>, 47.7% ; 2.5~4.5cm, 63.9% ; 4.5cm<, 77.3%, p<0.05). The results show that transfer of 1 or 2cell embryos to RO is an effective means of supporting the further development of in vitro matured and fertilized bovine oocytes than culture in TCM199 with BOEC or transfer of 4~8cell embryos to RO, and recovery from RO increases when oocytes are transferred deeper and incubated shorter in RO.
The studies were carried out to investigate the effects of co-culture with cumulus cells and oviduct epithelial cells on the in vitro fertilization and cleavage rate of bovine follicular cocytes and to determine the optimum thawing temperature and equilibration time on in vitro developmental rate of frozen bovine embryos. The ovaries were obtained from slaughtered Korean native cows. The follicular oocytes were cultured in TGM-199 medium containing 10 IU /ml의 PM SG, 10 IU /ml의 hCG, ip g/ml의 $\beta$-estradiol and 10% FCS for 24~48 hrs in incubator with 5% $CO_2$ in air at 38.5$^{\circ}C$. The bovine embryos following dehydration by cryoprotective agents and a various concentration of sucrose were directly plunged into liquld nitrogen and thawed in 3$0^{\circ}C$ water. Survival rate was defined as developmental rate on in vitro culture or FDA-test. The results are sunanarized as followes :1. The in vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes co-cultured with cumulus cells in TCM499 medium were 75.0~76.8% and 17.3~27.6%, respect-ively. And in-vitro fertilization rates of cumulus-enclosed oocytes(55.4%)were significantly(p<0.05) higher than cumulus-denuded oocytes (23.1%). 2. The in vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes co-cultured with l$\times$ l04cells /ml, 1 x l06cells /ml, lx l08cells /ml and 1 x l015cells /ml oviduct epithelial cells in TCM-199 medium were 74.5~77.8% and 15.7~21.20 respectively.3. The in-vitro fertilization and in vitro developmental rates of bovine oocytes cocultured in '1CM-199 media containing PMSG, hCG, PMSG+hCG. PMSG+$\beta$-estradiol, hCG+$\beta$-estradiol 0 to 40 hrs after insemination were 74.0~77.4% and l8.9~23.l%, re-spectiv ely.4.The survival rates of bovine embryos thawed after rapid freezing in the freezing medium containing a various concentration of sucrose added 1.5M and 2.OM glycerol,DMSO and propanediol were 23.5~31.4% and 20.6~34.l%, respectively. 5. The temperature thawed at 3$0^{\circ}C$ after rapid freezing of bovine embryos resulted in a significantly higher embryos survival rate than did at 2$0^{\circ}C$ and 35$^{\circ}C$.6. The equilibration time on the survival rates of bovine embryos was attained after short period of time(2.5~5 min.) in the freezing medium higher than long period of time (10~20min.). (Key words : bovine embryos, co-culture, freezing, in vitro development)
NUCB2/nesfatin-1 known to regulate appetite and energy homeostasis is expressed not only in the hypothalamus, but also in various organs and tissues. Our previous reports also demonstrated that NUCB2/nesfatin-1 was expressed in the reproductive organs, including the ovaries, uterus, and testes of mice. However, it is yet known whether NUCB2/nesfatin-1 is expressed in the oviduct and how its expression is regulated. Therefore, we investigated the expression of NUCB2/nesfatin-1 in the oviduct and its expression is regulated by gonadotropin. Immunohistochemical staining results showed that nesfatin-1 protein was localized in epithelial cells of the oviduct. As a result of quantitative real-time PCR (qRT-PCR) and Western blot, NUCB2/nesfatin-1 was detected strongly in the oviducts. During the estrus cycle, NUCB2/nesfatin-1 expression in the oviducts was markedly higher in the proestrus stage than in other estrus stages. In order to elucidate whether the expression of NUCB2 mRNA is controlled by the gonadotropins, we injected PMSG and hCG and measured NUCB2 mRNA level in the oviduct after injection. Its level was increased in the oviduct after PMSG injection, but no significant change after hCG injection. In addition, NUCB2 mRNA levels were markedly reduced after ovariectomy, while recovered after 17β-estradiol (E2) injection, but not by progesterone (P4). This study demonstrated that NUCB2/nesfatin-1 is highly expressed in the oviduct of mouse and its expression is regulated by E2 secreted by the ovaries. These results suggest that NUCB2/nesfatin-1 expressed by the oviduct may affect the function of the oviduct regulated by the ovaries.
This study was conducted to investigate nuclear remodeling and developmental rate following nuclear transfer of fetal fibroblast cells, ear skin cells and oviduct epithelial cells into porcine recipient oocytes. To test par-thenogenetic activation, oocytes were treated with a 6-dimethylaminopurine (6-DMAP), a single DC-pulse (DC), calcium ionomycin (ionomycin), DC+6-DMAP and ionomycin + 6-DMAP after in vitro maturation. For nuclear transfer, in vitro matured oocytes were enucleated, and donor cells were transferred into oocytes. Cloned embryos were fused and stimulated with 6-DMAP for 4 h and cultured in vitro for 6 days. Among treatments for parthenogenesis, the activation rate of DC +6-DMAP treatment was significantly higher than that of single treatment roups (p<0.01), except for DC treatment group. However, the difference was not significant in activation rate compared to other complex treatment groups. Nuclear swelling of the cloned embryos was initiated at 60 min after stimulation and increased afterwards. Fusion rates were not different among different donor cells. Cleavage rates of DC treatment groups were significantly higher than those of DC+6-DMAP treatment groups (p<0.05) in case that fetal fibroblast and ear cells were used for nuclear donor. The cloned embryos from developed to blastocysts in oviduct epithelial cell nuclear transfer with DC+6-DMAP treatment was significantly higher compared to those with DC only treatment (p<0.05). However, no blastocyst was developed from nuclear transfer of fetal fibroblast and ear cells regardless of activation treatments. Based on these results, a proper activation stimulation may be necessary to increase the activation rate and the development to blastocyst in cloned porcine embryos.
난관상피세포와 그 배양액에서 분비된 고분자 분획이 소정자의 수정능력에 어떠한 영향을 미치는지 알아보고자 실시한 실험에서 다음과 같은 결론을 얻었다. 1. 난관상피세포배양액으로부터 MW 5 kDa cut-off bucket을 사용하여 탈염 및 농축을 실시, 단백질/고분자분획을 회수하고 이를 체외수정용 배양액에 첨가하고 난관상피세포 monolayer와 공배양을 통해 체외수정을 실시한 결과 고분자분획첨가 및 난관상피세포 공배양(OM+OEC)군이 고분자분획첨가(OM) 군에 비하여 유의적으로 높은 분할율을 나타내었으며 난관상피 세포 공배 양(OEC)군 및 OM 군 모두 대조군에 비해서는 유의적으로 높은 분할율을 나타내었다(p〈0.01). 2. 난관상피세포와 전배양한 정자의 체외수정능을 조사한 결과 정자와 OEC를 4시간 동안 전배양한 후 체외수정한 군이 난자와 정자를 동시에 배양한 군에 비하여 유의적으로 높은 분할율을 나타내었다(p〈0.01). 이상의 결과에서 소 정자의 체외수정능은 난관 상피세포와의 접촉 및 분비액유래 고분자단백분획의 공동효과에 의한 것으로, 난관상피세포와의전배양은 체외에서 수정능획득을 유도하는 것으로 판단된다.
동면기 (11월부터 3월까지) 동안의 한국산 관박쥐(Rhinolophus ferrumequinum korai) 자성 생식도관 내의 정자저장, 정자 생존 여부 및 정자이동을 알아보기 위하여 전자현미경으로 관찰한 결과는 다음과 같았다. (1) 자궁내강, 자궁선내의 정자들은 다수의 백혈구들에 의해 포식되고 소멸되었다. (2)정자들은 수란관 미측 협부에서만 저장되었고, 정자들의 두부는 상피세포쪽을 향하고 있었다. 이는 교미기(10월 초-중순경)에 사출된 정자들이 긴 동면기 동안에 수란관 미측 협부에서만 생존 가능함을 의미하며, 수란관의 미측 협부가 정자의 수정능 획득(capacitation)에 필요한 최적의 장소임을 의미한다. (3) 동면후기인 3월의 수란관 미측협부에는 정자들이 관찰되지 않았다. 이는 배란기인 4월에 난자를 만나기 위해 정자들이 수정부위인 팽대부 쪽으로 이행하였음을 의미한다. 이상의 결과로 미루어 보아, 긴 동면기 동안의 자성 생식도관 내에서의 정자의 장기저장과 생존여부 및 정자이동은 수정을 위한 일종의 mechanism이라 여겨진다.
Beta-catenin (CTNNB1, catenin (cadherin-associated protein), beta 1) is involved in various biological processes, including embryogenesis, tumorigenesis, angiogenesis and progression of metastasis. CTNNB1, as a multifunctional and oncogenic protein, has important roles in adhesion between Sertoli cells through an N-cadherin-dependent manner and in various cancer types through its over-activation. In addition, CTNNB1 can interact with estrogen/estrogen receptor alpha complex, which regulates the transcription of WNT (wingless-type MMTV integration site family)/CTNNB1 target genes. Recently, we investigated the functional roles and expression pattern of CTNNB1 during the morphological changes of embryonic gonads of chickens and the estrogen-dependent regulation of CTNNB1 in oviduct development and potential functions as a biomarker of CTNNB1 in human epithelial ovarian cancer using the chicken as a biological research model. Therefore, in this review, we provide a new insight of potential role of CTNNB1 in the development of the female reproductive tract during early embryogenesis and ovarian carcinogenesis of laying hen models.
This stduy was carried out to find a reliable method for the production of in vitro fertilized embryos having more excellent development capacity and freezability in the rabbit and cattle. The greatest number of rabbit oocytes was recovered 6hrs after HCG injection(P<0.05). The maturation rate in vitro was slightly higher in the oocytes(6-h-oocytes) from 6h than those (8-h-oocytes)from 8 hrs after HCG injection and the beneficial effect of FSH during oocyte maturation was significantly great in the oocytes from large follicles. The cleavage rate into 2-to-6-cell stage was not differ between the 6-h-oocytes and 8h-oocytes, but the cleavage of these oocytes was greatly promoted by FSH addition to maturation medium and the cleavge of 8-h-oocytes matured without FSH was significantly low. The embryo development into 16-cell to morula was not promoted by the co-culture with rabbit oviduct epithelial cells. The freezability by embryo stages was ovidusly high at 4-cell and morula stage in 6-h-oocytes and the viability of 16-cell embryos from 8h-oocytes was similar to that of morula stage. The implantation sites after surgical tranfer of fresh rabbit embryos were not implanted. In bovine experiment, the in vitro development into 16-cell and morula after in vitro maturation and fertilization in the follicular oocytes was slightly improved by the co-culture with granulosa cells compared to that with oviduct epithelial cells and the frozen-thawed viability rate of these embryos ranged from 14 to 40%. The excellent fresh embryos were transferred nonsurgically to 6 recipients, but were not pregnant.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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