Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.24
no.5
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pp.771-778
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1995
This study was carried out to produce the oligosaccharides(G2~G7) directly from the culture broth of Bacillus cereous IAM1072. The maximal production of oligosaccharides was obtained after cultivation at $30^{\circ}C$ for 24hrs in the mixture of 12% soluble starch, 1.5% peptone and 0.25% $K_2HPO_4$ adjusted to pH 7.0. Among the oligosaccharides produced $G_5$ oligosaccharide was purified. After methylation, the result of GC analysis was suggested to be oligosaccharide consisting of 5 glucose unit with ${\alpha}-1,4-glucosidic$ bond.
For the purpose of production of oligosaccharides from alginates, a bacterium was isolated from seaweed, and then an enzyme which degraded alginates was obtained from the bacterium. A specific activity of the enzyme was shown in G-rich block and Na-alginate (Wako Co.) as a result of reaction between the enzyme and six types of alginates (G-rich block, M-rich block and 4 commercial Na-alginate). Degradation products were prepared from the Na-alginate (Wako Co.) by the enzyme. The oligosaccharides were fractioned by Sephadex G-25 and Bio-gel P-2 and identified on a thin layer chromatography (TLC). Degree of polymerization (DP) of the oligosaccharides was shown from 2.6 to 7.5.
The effective diffusion coefficients of glucose, sucrose and fructo-oligosaccharides in Ca-alginate gel beads at high concentration of sucrose solutions were investigated at $50^{\circ}C$. A mathematical model for the kinetics of fructo-oligosaccharide production using immobilized cells was proposed and compared with experimental results varying the bead size, the substrate concentration and the bead ratio. Very low values of diffusion coefficients ranging $1.2-7.6\times10^{-7}\textrm{cm}^2$/sec were obtained, and the predicted results were in good agreement with experimental ones in all cases tested.
Bone marrow cell proliferating arabinogalactan-like polysaccharide (ALR-3IIa-1-1) has been purified from rhizomes of Atractylodes lancea DC. In order to characterize the essential structure of ALR-3IIa-1-1 for expression of the activity, sequential enzymatic digestion using ego-$\alpha$-L-arabinofurasidase (AFase) and ego-$\beta$-D-(1longrightarrow3)-galactanase (GNase) was employed. After ALR-3IIa-1-1 was digested with the AFase, the GNase digestion cleaved only 10% and 23% of 3-linked and 3,6-branched galactose, respectively, from arabinose-trimmed ALR-3IIa-1-1 (AT-ALR-3IIa-1-1), and gave small amounts of intermediate size (AT-G-2) and shorter oligosaccharides (AT-G-3) fractions in addition to a large amount of the GNase resistant fraction (AT-G-1). When AT-G-1 was redigested gradually with the AFase and GNase, it released trace amounts of oligosaccharides in addition to a large amount of the resistant fraction. When the final enzyme-resistant fraction from AT-G-1 was digested simultaneously with both AFase and GNase, the resistant fraction was significantly degraded into two long fragments (3AT-3G-1 and 2). The mixture of digestion products from the first GNase digestion of AT-ALR-3IIa-1-1 showed a significantly decreased bone marrow cell proliferation activity to about 30% of the activity of ALR-3IIa-1-1, but the GNase resistant fraction (AT-7-1) still had significant activity. Although the second gradual enzymatic digestion of AT-G-1 showed a marginal decrease in activity, the resulting fragments (3AT-3G-1 and 2) by the final simultaneous enzymatic digestion lost most of the activity. Component sugar, methylation and FAB-MS analyses indicated that the digestion products (AT-G-21 AT-G-31 2AT-2G-2 and 2AT-2G-3) released from AT-ALR-3IIa-1-1 by the sequential enzymatic digestion contained galactose-containing oligosaccharides mainly comprising 6-linked galactose, that some of which were partially arabinosylated, and these oligosaccharides were attached to $\beta$-D-(1longrightarrow3)-galactan backbone in its non-reducing terminal side as side chains.
Kim, Woo-Jung;Lee, Hye-Yeon;Won, Moo-Ho;Yoo, Sang-Ho
Food Science and Biotechnology
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v.14
no.4
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pp.498-502
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2005
Three Korean soybean varieties - Shinpaldal-2, Seomoktae and Seoritae - were investigated for changes in their physical properties and the amount of functional components (i.e. isoflavones and oligosaccharides), during germination. Soybeans were germinated at $20^{\circ}C$ for 96 hr in complete darkness. The dry weights of cotyledone, hypocotyl, seed coat, and hilum of Seoritae were heavier than those of other varieties. The dry weights of the three bean varieties decreased steadily in spite of root growth. The largest amount of isoflavone content was observed from Shinpaldal-2 (1.824 mg/g), followed by Seoritae (1.216 mg/g) and Seomoktae (1.125 mg/g). Total isoflavone content increased by 13% during initial germination, and then decreased thereafter. Aglycone types such as daidzein and genistein dominated the increase in isoflavone contents. The increase in genistein content of Shinpaldal-2 was 17.5 fold compared with ungerminated soybean, while the amount of daidzein was 6.7 times as much as ungerminated Shinpaldal-2 over an 18-hr germination period. Oligosaccharide contents such as raffinose (Raf) and stachyose (Sta) rapidly decreased during germination, while the sucrose (Sue) content remained constant until 36-48 hr of germination. From these results, it was clearly shown that the germination process significantly changed the contents of functional nutrients in soybeans. Therefore, the optimization of germination process should be considered to improve the biological functionality of soybeans in food processing.
Cellooligosaccharides were prepared from microcrystalline cellulose by acetolysis, deacetylation, and chromatographic fractionation, to determine the optimum time of treatment with acetolysis mixture. The fractionation was accomplished by ethanol-water gradient elution on chromatographic column composed of stearic acid-treated mixture of charcoal and Celite. The amount of initial acetolysis product was increased with the reaction period, however, the acetylated mixture of longer reaction period appeared to contain the greater bulk of methanol-insoluble material. Better yields of most of oligosaccharides were obtained with 3-hr acetolysis. When the reaction time was extended to 4-hr, yields of shorter chain oligosaccharides increased at the expense of the The yields obtained with 3-hr acetclys is from 68.2g of Sigmacell Type 19 were : cellotriose, 1.36g(2.0%) ; -tetraose, 1.64g(2.4%) ; -pentaose, 1.16g(1.7%) ; -hexaose, 0.82g(1.2%) ; and -heptaose, 0.21g(0.3%).
Kim, Yeong-Mi;Sinha, Jayanta;Park, Jong-Pil;Yun, Jong-Won
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.583-586
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2000
Many different oligosaccharides were produced by transferring the fructose residue of sucrose to maltose, cellobiose, lactose and sucrose (self-transfer), where their yields of fructosylated acceptor products accounted for $26{\sim}30%$ (w/w). The maximum conversion yield (30%) was obtained in fructosyl cellobioside formation with 500 g sucrose/l (substrate) and 200 g cellobiose/l (acceptor). These four acceptors gave various products having DP (degree of polymerization) $2{\sim}7$ by successive transfer reactions.
A simple, fast and reproducible quantitative analysis method for sugar concentration composed in oligosaccharide mixture was developed. Two glass TLC plates were prepared per sample. After dipping one plate into the copper bicinchoninate reagent and the other plate into 5% sulfuric acid solution, both plates were baked in microwave oven until sugar spots were developed or the surface temperature of TLC plate becomes 60 to 70 $^{\circ}C$. The corrective factor values [F value =(the value of total sugar concentration converted as glucose unit/the value of reducing sugar concentration converted as glucose unit)/(polymerization degree of sugar)] of different molecular weight sugars were determined. Within the concentration of 0.25∼1.0 $\mu\textrm{g}$ in each sample loaded, the fructose-F (corrective factor value of fructose) was 0.45, yet for the higher concentration (2.5∼7.5 $\mu\textrm{g}$) fructose-F was 1.0. In case of glucose, in the range of 0.5∼7.5 $\mu\textrm{g}$, glucose-F was same as fructose-F, 1.0. However, as the molecular weight of sugar was increased, the F values were decreased in both maltodextrin and isomaltodextrin oligosaccharides in 0.5∼7.5 $\mu\textrm{g}$ of each sample loaded. Interestingly, F values were equal for the same molecular weight sugars, although the structures were different from each other. Using F value of each sugar, we could determine and compare the exact total sugar concentration of different molecular weight maltooligosaccharide and isomaltooligosaccharide. We also could determine if the unknown sugar was a reducing or non-reducing compound by using optimized TLC with microwave oven method.
Chemical composition, total dietary fiber(TDF), oligosaccharide, isoflavone and phytic acid contents of seven domestic and three imported soybean cultivars were determined. TDF contents were ranged from 16.83 to 21.71%(w/w) without remarkable differences among soybean cultivars. Phytic acid contents of domestic cultivars such as Geomjongkong 1 (3.02%) and Dawonkong (2.92%) were higher than imported ones such as Canadian (2.07%) and American (2.22%) soybeans for soybean sprout and US No. 1 (2.16%). The phytic acid contents of cotyledon parts were 1.5 to 2 times higher than those of hypocotyl parts. Isoflavone contents in whole seed were wide ranged from 371 to 2,398 $\mu\textrm{g}$/g among cultivars and it were existed mainly as glucoside isomers. Profiles of isoflavone aglycones were composed of 52% genistein, 36% daidzein and 11% glycitein. Hwanggumkong, Dawonkong, Geomjongkong 1 and American soybean for sprout contained lower isoflavone than others. Hypocotyl parts of soybeans contained from 6120.1 to 16921.1 $\mu\textrm{g}$/g isoflavone with ratio of 48% glycitein, 35% daidzein and 10% genistein. Isoflavone contents of cotyledon parts were ranged 375-2393 $\mu\textrm{g}$/g, composition of which had no glycitein, 55% genistein and 38% daidzein. Oligosaccharide contents were similar among cultivars. Stachyose of 3.0-3.9%, raffinose of 0.8-1.2%, sucrose of 4.5-7.8% and fructose of 0.3-0.8% were determined.
Pre-pulping extracts were found to contain a dilute amount of xylo-oligosaccharides and acetic acid as the major components, and many minor components including other organic acids, lignin-derived phenolics, and sugar degradation products. Once separated from the pulp, a secondary hydrolysis step was required to hydrolyze oligomeric hemicellulose sugars into monomeric sugars before fermentation. The following study detailed the extent of hemicellulose recovery by pre-pulping using hot water extraction and characterized the hydrolysis of the extract with respect to comparing acid and enzymatic hydrolysis. The secondaryhydrolysis of hot water extracts made at an H-Factor of 800 was tested for a variety of acid and enzyme loading levels using the sulfuric acid and xylanases. The maximum fermentable sugar yield from acid and enzyme hydrolysis of the extract was 18.7 g/${\ell}$ and 17.7 g/${\ell}$ representing 84.6% and 80.1% of the maximum possible yield, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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