We previously identified that tumor cells genetically modified with a 4-1BBL co-stimulatory molecule had anticancer effects in a CT26 mouse colorectal tumor model. To identify the distinction between immune cells in a mouse tumor model treated with tumor cells genetically modified with 4-1BBL or β-gal, we examined the immune cells in CT26-WT, CT26-βgal, and CT26-4-1BBL tumor bearing mice 21 days after tumor cell administration. The CD8+ T cells population in mice treated with tumor cells genetically modified with 4-1BBL was significantly increased on day 21 compared to that of tumor cells genetically modified with β-gal in the spleen and tumor tissue. The CD4+ T cell population was not different between the two mice groups. The Foxp3+CD25high CD4 T cell population decreased on day 21 in tumor tissues, but the decrease was not significant. We also found that CD8 T cells had pivotal roles in inhibiting tumor growth by treating mice with ant-CD4 and CD8 antibodies. These results suggest that tumor cells genetically modified with 4-1BBL could inhibit tumor growth by affecting on CD8 T lymphocytes.
Kim, Ji-Hyun;Lee, Ji-Young;Kim, Woo-Kap;Hwang, Woo-Ik
Applied Microscopy
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v.29
no.2
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pp.137-147
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1999
Comparative differences between the fine structure of cultured LL/2 cell in vitro and tumor cells in vivo which were induced in the lung by inoculation of LL/2 cells to C57 BL/6 mouse via tail vein during 21 days are not observed except for cell configuration which was changed spindle shape into oval shape. At first tumor cells appeared at lymphatic nodules and around capillary in the lung. Tumor cells divided actively by mitosis, so they became tumor nodules. The pulmonary aveoli around tumor nodules were observed somewhat flattened in shape but the cells in the aveoli appeared to be in normal condition. Furthermore the normal lung cells were observed in the tumor nodules and some apoptotic tumor cells appeared in the large tumor nodules. A lot of neutropiles were observed in the aveoli and tumor nodules of C57 BL/6 mouse lung after inoculation 22 days and 31days.
Background: The anti-tumor therapeutic effect of autologous tumor cell lysate pulseddendritic cells (DCs) was studied for non-immunogenic and immune suppressive lung cancer model. To test the possibility as an adjuvant therapy, minimal residual disease model was considered in mouse in vivo experiments. Methods: Syngeneic 3LL lung cancer cells were inoculated intravenously into the C57BL/6 mouse. Autologous tumor cell (3LL) or allogeneic leukemia cell (WEHI-3) lysate pulsed-DCs were injected twice in two weeks. Intraperitoneal DC injection was started one day (MRD model) after tumor cell inoculation. Two weeks after the final DC injection, tumor formation in the lung and the tumor-specific systemic immunity were observed. Tumor-specific lymphocyte proliferation and the IFN-${\gamma}$ secretion were analyzed for the immune monitoring. Therapeutic DCs were cultured from the bone marrow myeloid lineage cells with GM-CSF and IL-4 for 7 days and pulsed with tumor cell lysate for 18 hrs. Results: Compared to the saline treated group, tumor formation was suppressed in 3LL tumor cell lysate pulsed-DC treated group, while 3LL-specific immune stimulation was minimum. WEHI-3-specific immune stimulation occurred in WEHI-3 lysate-pulsed DC treated group, which had no correlation with tumor regression. Conclusion: The data suggest the possible anti-tumor effect of cultured DCs as an adjuvant therapy for minimal residual disease state of lung cancer. The significance of immune modulation in DC therapy including the possible involvement of NK cell as well as antigen-specific cytotoxic T cell activity induction was discussed.
Objective : This study was designed to investigate the anti-cancer effects of bee venom on melanoma in C57BL mice. Materials and Methods : For the induction of melanoma, C57BL mice were treated by DMBA(7, 12-dimethylbenz[a]anthracene). Each group of C57BL mouse was treated with DMBA $50{\mu}g$, $75{\mu}g$, $100{\mu}g$ respectively once a week for 15 weeks. Tumor generation in each group of 10 mice was observed. Cumulative curves were showed in the density and frequency of skin tumor generation. To know the effects of pre-treatment of bee venom on tumor generation by DMBA treatment(frequency of tumor generation), Each group of C57BL mouse was pretreated and treated with bee venom $5{\mu}{\ell}$, $25{\mu}{\ell}$, $50{\mu}{\ell}$ respectively once a week for 3 weeks, whereafter each mouse was treated with DMBA $100{\mu}g$ once a week for 15 weeks. Results and Conclusion (1) There was chemotherapeutic effect, but not chemopreventive effect. (2) Cpp32 activity was increased by $50{\mu}{\ell}$ bee venom treatment. (3) Bee venom treatment inhibited expression of cell-cycle regulating, growth-promoting genes such as c-Jun, c-Fos, and Cyclin Dl, and increased tumor suppressors p53 and p21/Wafl. (4) Bee venom treatment activated expression of a representative apoptosis-inducing gene Bax.
Endostatin, a proteolytic fragment of collagen XVIII, is a potent inhibitor of angiogenesis and the growth of several primary tumors. However, the opinions on the activity of endostatin derivatives deleted N- or C- terminal are still controversial. In this regard, we produced mouse endostatin and its derivatives in the prokaryotic system, and studied their anti-tumor activity. The [$^3H$]-thymidine incorporation assay demonstrated that N-terminal deleted mouse endostatin, and a C- and N-terminal deleted mutant, effectively inhibited the proliferation of human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). The biological activity of endostatin was also shown by its in vivo anti-angiogenic ability on the chorioallantoic membrane (CAM) of a chick embryo. Treatment of $200\;{\mu}g$ of mouse endostatin, or N-terminal deleted mouse endostatin, inhibited capillary formation of CAM 45 to 71%, which is comparative to a 80% effect of positive control, $1\;{\mu}g$ of retinoic acid. An in vivo mouse tumor growth assay showed that N-terminal deleted mouse endostatin, and the N-/C-terminal deleted mutant, significantly repressed the growth of B16F10 melanoma cells in mice as did the full-length mouse endostatin. According to these results, N-and N-/C-terminal deleted mouse endostatins are the potent inhibitors of tumor growth and angiogenesis.
Background: To perform the successful dendritic cell-based cancer immunotherapy one of the main issues to be solved is the source of antigen for DC pulsing. Limitations occur by using auto-tumor lysate due to the difficulties obtaining enough tumor tissue(s) quantitatively as well as qualitatively. In this study the possibility of allogeneic tumor cell lysate as a DC pulsing antigen has been tested in mouse melanoma pulmonary me tastasis model. Methods: B16F10 melanoma cells $(1{\timeS}10^5/mouse)$ were inoculated intra venously into the C57BL/6 mouse. Therapeutic DCs were cultured from the bone marrow myeloid lineage cells with GM-CSF and IL-4 (1,000 U/ml each) for 7 days and pulsed with lysate of either autologous B16F10 (B-DC), allogeneic K1735 (C3H/He origin; K-DC) or CloneM3 (DBA2 origin; C-DC) melanoma cells for 18 hrs. Pulsed-DCs $(1{\times}10^6/mouse)_{[CGP1]}$ were injected i.p. twice with one week interval starting from the day 1 after tumor cell inoculation. Results: Without observable toxicity, allogeneic tumor cell lysate pulsed-DC induced the significantly better anti-tumor response (tumor scale: $2.7{\pm}0.3,\;0.7{\pm}0.3\;and\;0.3{\pm}0.2$ for saline, B-DC and C-DC treated group, respectively). Along with increased tumor specific lymphocyte proliferations, induction of IFN-${\gamma}$ secretion against both auto- and allo-tumor cell lysates was observed from the DC treated mice. (w/B16F10-lysate: $44.97{\pm}10.31,\;1787.94{\pm}131.18,\;1257.15{\pm}48.27$, w/CloneM3 lysate: 0, $1591.13{\pm}1.83,\;1460.47{\pm}86.05pg/ml$ for saline, B-DC and C-DC treated group, respectively) Natural killer cell activity was also increased in the mice treated with tumor cell lysate pulsed-DC ($8.9{\pm}_{[CGP2]}0.1,\;11.6{\pm}0.8\;and\;12.6{\pm}0.7%$ specific NK activity for saline, B-DC and C-DC treated group, respectively). Conclusion: Conclusively, promising data were obtained that allogeneic-tumor cell lysate can be used as a tumor antigen for DC-based cancer immunotherapy.
Cancer immunotherapy using gene-modified tumor cells is safe and customized cancer treatment method. In this study, we made gene-modified tumor cells by transferring costimulatory molecules, 4-1BBL and OX40L, into tumor cells using lentivirus vector, and identified anti-cancer effect of gene-modified tumor cells in CT26 mouse colorectal tumor model. We construct pLVX-puro-4-1BBL, -OX40L vector for lentivirus production and optimized the transfection efficiency and transduction efficiency. The transfection efficiency is maximal at DNA:cationic polymer = 1:0.5 and DNA 2 ㎍ for lentivirus production. Then, the lentiviral including 4-1BBL and OX40L was used to deliver CT26 mouse tumor cells to establish optimal delivery conditions according to the amount of virus. The transduction efficiency is maximal at 500 μL volume of lentiviral stock without change in cell shape or growth rate. CT26-4-1BBL, CT26-OX40L significantly inhibited the tumor growth compare with CT26-WT or CT26-β-gal cell line. These data showed the possibility the use of genetically modified tumor cells with costimulatory molecule as cancer immunotherapy agent.
The Chaga mushroom (Inonotus obliquus) has been used in folk medicine to treat cancers. However, limited information exists on the underlying anticancer effects of the major component of I. obliquus in vivo. We hypothesize that the pure compounds ($3{\beta}$-hydroxy-lanosta-8,24-dien-21-al, inotodiol and lanosterol, respectively) separated from I. obliquus would inhibit tumor growth in Balbc/c mice bearing Sarcoma-180 cells (S-180) in vivo and growth of human carcinoma cells in vitro. To test this hypothesis, the growth inhibition of each subfraction isolated from I. obliquus on human carcinoma cell lines (lung carcinoma A-549 cells, stomach adenocarcinoma AGS cells, breast adenocarcinoma MCF-7 cells, and cervical adenocarcinoma HeLa cells) was tested in vitro. Then, after S-180 implantation, the mice were fed a normal chow supplemented with 0, 0.1 or 0.2 mg of subfraction 1, 2 or 3 per mouse per day. All of the subfractions isolated from I. obliquus showed significant cytotoxic activity against the selected cancer cell lines in vitro. Subfraction 1 was more active than subfraction 2 and subfraction 3 against the A549, AGS and MCF-7 cancer cell lines in vitro. In in vivo results, subfraction 1 isolated from I. obliquus at concentrations of 0.1 and 0.2 mg/mouse per day significantly decreased tumor volume by 23.96% and 33.71%, respectively, as compared with the control. Subfractions 2 and 3 also significantly inhibited tumor growth in mice bearing S-180 as compared with the control mouse tumor. Subfraction 1 isolated from I. obliquus showed greater inhibition of tumor growth than subfractions 2 and 3, which agrees well with the in vitro results. The results suggest that I. obliquus and its compounds in these subfractions isolated from I. obliquus could be used as natural anticancer ingredients in the food and/or pharmaceutical industry.
In this paper, we investigated the effects of the photodynamic therapy(PDT) for the tumor mass in mice. In the experimental method, we divided the mice into two control and test group which HepG2 and HeLa cell line induced cancer mass in mice. Photofrin was administered to the tumor-bearing mouse, followed 30 hours later by 630nm and 650nm laser light exposure. After photodynamic therapy we analyzed the two mice group for the tumor mass size, tumor growth, tumor cell necrosis, pathological anatomy change. According to the results, tumor cell necrosis was shown in the tissues which the reduce size of tumor and tumor cell necrotic change according to the irradiation time and light dose amount. The considerable difference, however, between the 630nm and 650nm wavelength was not found for the tumor cell necrotic change and other damage of normal tissue was not found.
Background: As a potent antigen presenting cell and a powerful inducer of antigen specific immunity, dendritic cells (DCs) are being considered as a promising anti-tumor therapeutic module. The expected therapeutic effect of DCs in renal cell carcinoma was tested in the mouse model. Established late-stage tumor therapeutic (E-T) and minimal residual disease (MRD) model was considered in the in vivo experiments. Methods: Syngeneic renal cell carcinoma cells (RENCA) were inoculated either subcutaneously (E-T) or intravenously (MRD) into the Balb/c mouse. Tumor cell lysate pulsed-DCs were injected twice in two weeks. Intraperitoneal DC injection was started 3 week (E-T model) or one day (MRD model) after tumor cell inoculation. Two weeks after the final DC injection, the tumor growth and the systemic immunity were observed. Therapeutic DCs were cultured from the bone marrow myeloid lineage cells with GM-CSF and IL-4 for 7 days and pulsed with RENCA cell lysate for 18 hrs. Results: Compared to the saline treated group, tumor growth (E-T model) or formation (MRD model) was suppressed in pulsed-DC treated group. RENCA specific lymphocyte proliferation was observed in the RENCA tumor-bearing mice treated with pulsed-DCs. Primary cytotoxic T cell activity against RENCA cells was increased in pulsed-DC treated group. Conclusion: The data suggest the possible anti-tumor effect of cultured DCs in established or minimal residual disease/metastasis state of renal cell carcinoma. Systemic tumor specific immunity including cytotoxic T cell activity was modulated also in pulsed-DC treated group.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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