Hesperidin has been shown to possess a potential inhibitory effect on vascular formation in endothelial cells. However, the fundamental mechanism for the anti-angiogenic activity of hesperidin is not fully understood. In the present study, we evaluated whether hesperidin has anti-angiogenic effects in mouse embryonic stem cell (mES)-derived endothelial-like cells, and human umbilical vascular endothelial cells (HUVECs), and evaluated their mechanism via the AKT/mammalian target of rapamycin (mTOR) signaling pathway. The endothelial cells were treated with several doses of hesperidin (12.5, 25, 50, and $100{\mu}M$) for 24 h. Cell viability and vascular formation were analyzed using the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide and tube formation assay, respectively. Alteration of the AKT/mTOR signaling in vascular formation was analyzed by western blot. In addition, a mouse aortic ring assay was used to determine the effect of hesperidin on vascular formation. There were no differences between the viability of mES-derived endothelial-like cells and HUVECs after hesperidin treatment. However, hesperidin significantly inhibited cell migration and tube formation of HUVECs (P<0.05) and suppressed sprouting of microvessels in the mouse aortic ring assay. Moreover, hesperidin suppressed the expression of AKT and mTOR in HUVECs. Taken together, these findings suggest that hesperidin inhibits vascular formation by blocking the AKT/mTOR signaling pathways.
Kim, Young-Il;Oh, In-Suk;Park, Seung-Moon;Kim, Hwan-Gyu
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.11
no.5
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pp.402-407
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2006
Vascular endothelial cells release proteinases that degrade the extracellular matrix (ECM), thus enabling cell migration during angiogenesis and vasculogenesis. Sildenafil citrate stimulates the nitric oxide-cyclic guanosine monophosphate pathway through inhibition of phosphodiesterase type V (PDE5). In this report, we examined the mechanisms underlying sildenafil citrate-induced cell migration using cultured mouse aortic endothelial cells (MAECs). Sildenafil citrate induced migration and proteinase secretion by murine endothelial cells. Sildenafil citrate induced the secretion of matrix metalloproteinase-2 (MMP-2) and MMP-9, which is inhibited by $NF-{\kappa}B$ inhibitors. Sildenafil citrate also induced the secretion of plasmin, which is inhibited by PI 3'-kinase inhibitors. It is suggested that sildenafil citrate-induced migrating activity in endothelial cells may be accomplished by increased secretion of proteinases.
Cho, Young-Eun;Choi, Jee-Eun;Alam, Md. Jahangir;Lee, Man-Hyo;Sohn, Ho-Yong;Beattie, John H.;Kwun, In-Sook
Nutrition Research and Practice
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v.2
no.2
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pp.74-79
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2008
Zinc plays a protective role in anti-atherosclerosis but the clear mechanism has not been proposed yet. In the present study, we evaluated whether zinc modulates atherosclerotic markers, VACM-1 and ICAM-1 and cell viability both in endothelial cells in vitro and mouse aortic cell viability ex vivo. In study 1, as in vitro model, endothelial EA.hy926 cells were treated with $TNF{\alpha}$ for 5 hours for inducing oxidative stress, and then treated with Zn-adequacy ($15\;{\mu}M$ Zn) or Zn-deficiency ($0\;{\mu}M$ Zn) for 6 hours. Pro-atherosclerosis factors, VCAM-1 and ICAM-1 mRNA expression and cell viability was measured. In study 2, as ex vivo model, mouse aorta ring was used. Mourse aorta was removed and cut in ring then, cultured in a 96-well plate. Aortic ring was treated with various $TNF{\alpha}$ (0-30 mg/ml) and intracellular zinc chelator, N, N, N', N', -tetrakis (2-pyridylmethyl) ethylenediamine (TPEN, $0-30\;{\mu}M$) for cellular zinc depletion for 2 days and then cell viability was measured. The results showed that in in vitro study, Zn-adequate group induced more VCAM-1 & ICAM-1 mRNA expression than Zn-deficient group during 6-hour zinc treatment post-5 hour TNF-$\alpha$ treatment, unexpectedly. These results might be cautiously interpreted that zinc would biologically induce the early expression of anti-oxidative stress through the increased adhesion molecule expression for reducing atherosclerotic action, particularly under the present 6-hour zinc treatment. In ex vivo, mouse aortic ring cell viability was decreased as TNF-$\alpha$ and TPEN levels increased, which suggests that mouse aortic blood vessel cell viability was decreased, when oxidative stress increases and cellular zinc level decreases. Taken together, it can be suggested that zinc may have a protective role in anti-atherosclerosis by cell viability in endothelial cells and aorta tissue. Further study is needed to clarify how pro-atherosclerosis molecule expression is modulated by zinc.
This study aimed to investigate the effects and potential mechanisms of Chikusetsusaponin V (CsV) on endothelial nitric oxide synthase (eNOS) and vascular endothelial cell functions. Different concentrations of CsV were added to animal models, bovine aorta endothelial cells (BAECs) and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) cultured in vitro. qPCR, Western blotting (WB), and B ultrasound were performed to explore the effects of CsV on mouse endothelial cell functions, vascular stiffness and cellular eNOS mRNA, protein expression and NO release. Bioinformatics analysis, network pharmacology, molecular docking and protein mass spectrometry analysis were conducted to jointly predict the upstream transcription factors of eNOS. Furthermore, pulldown and ChIP and dual luciferase assays were employed for subsequent verification. At the presence or absence of CsV stimulation, either overexpression or knockdown of purine rich element binding protein A (PURA) was conducted, and PCR assay was employed to detect PURA and eNOS mRNA expressions, Western blot was used to detect PURA and eNOS protein expressions, cell NO release and serum NO levels. Tube formation experiment was conducted to detect the tube forming capability of HUVECs cells. The animal vasodilation function test detected the vasodilation functions. Ultrasonic detection was performed to determine the mouse aortic arch pulse wave velocity to identify aortic stiffness. CsV stimulus on bovine aortic cells revealed that CsV could upregulate eNOS protein levels in vascular endothelial cells in a concentration and time dependent manner. The expression levels of eNOS mRNA and phosphorylation sites Ser1177, Ser633 and Thr495 increased significantly after CsV stimulation. Meanwhile, CsV could also enhance the tube forming capability of HUVECs cells. Following the mice were gavaged using CsV, the eNOS protein level of mouse aortic endothelial cells was upregulated in a concentration- and time-dependent manner, and serum NO release and vasodilation ability were simultaneously elevated whereas arterial stiffness was alleviated. The pulldown, ChIP and dual luciferase assays demonstrated that PURA could bind to the eNOS promoter and facilitate the transcription of eNOS. Under the conditions of presence or absence of CsV stimulation, overexpression or knockdown of PURA indicated that the effect of CsV on vascular endothelial function and eNOS was weakened following PURA gene silence, whereas overexpression of PURA gene could enhance the effect of CsV upregulating eNOS expression. CsV could promote NO release from endothelial cells by upregulating the expression of PURA/eNOS pathway, improve endothelial cell functions, enhance vasodilation capability, and alleviate vessel stiffness. The present study plays a role in offering a theoretical basis for the development and application of CsV in vascular function improvement, and it also provides a more comprehensive understanding of the pharmacodynamics of CsV.
Redox factor-1 (Ref-1) is essential for repair of oxidatively damaged DNA and also govern the reductive activation of many transcription factors. In this study, we examined the effect of overexpressed Ref-1 on AKT activation for nitric oxide (NO) production in mouse aortic endothelial (MAE) cells. Adenoviral-mediated overexpression of Ref-1 enhanced NO production in unstimulated- as well as bradykinin-stimulated MAE cells. Importantly, forced overexpression of Ref-1 induced direct phosphorylation of AKT in cells. And, a PI3K inhibitor wortmannin completely abolished the increase in AKT phosphorylation by stimulation of bradykinin and/or overexpressed Ref-1. In addition, inhibition of AKT activity with HA-tagged activation-deficient AKT suppressed Ref-1-induced endothelial NO synthase (eNOS) phosphorylation and resulted in a corresponding inhibition of unstimulated- and bradykinin-stimulated NO production. These results suggest that Ref-1 stimulates direct phosphorylation of AKT for eNOS enzyme activity in murine endothelial cells.
Hesperetin has been shown to possess a potential anti-angiogenic effect, including vascular formation by endothelial cells. However, the mechanisms underlying the potential anti-angiogenic activity of hesperetin are not fully understood. In the present study, we evaluated whether hesperetin has anti-angiogenic effects in human umbilical vascular endothelial cells (HUVECs). HUVECs were treated with 50 ng/mL vascular endothelial growth factor (VEGF) to induce proliferation as well as vascular formation, followed by treatment with several doses of hesperetin (25, 50, and $100{\mu}M$) for 24 h. Cell proliferation and vascular formation were analyzed using the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide and tube formation assay, respectively. In addition, cell signaling related to cell proliferation and vascular formation was analyzed by western blot. Furthermore, a mouse aorta ring assay was performed to confirm the effect of hesperetin on vascular formation. Hesperetin treatment did not cause differences in HUVECs proliferation. However, hesperetin significantly inhibited VEGF-induced cell migration and tube formation of HUVECs (P<0.05). Moreover, hesperetin suppressed the expression of ERK, p38 MAPK, and PI3K/AKT in the VEGF-induced HUVECs. In an ex vivo model, hesperetin also suppressed microvessel sprouting of mouse aortic rings. Taken together, the findings suggest that hesperetin inhibited vascular formation by endothelial cells via the inhibition of the PI3K/AKT, ERK and p38 MAPK signaling.
Excessive salt intake induces hypertension, but several gamma-aminobutyric acid (GABA) supplements have been shown to reduce blood pressure. GABA-salt, a fermented salt by L. brevis BJ20 containing GABA was prepared through the post-fermentation with refined salt and the fermented GABA extract. We evaluated the effect of GABA-salt on hypertension in a high salt, high cholesterol diet induced mouse model. We analyzed type 1 macrophage (M1) polarization, the expression of M1 related cytokines, GABA receptor expression, endothelial cell (EC) dysfunction, vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation, and medial thicknesses in mice model. GABA-salt attenuated diet-induced blood pressure increases, M1 polarization, and TNF-α and inducible nitric oxide synthase (NOS) levels in mouse aortas, and in salt treated macrophages in vitro. Furthermore, GABA-salt induced higher GABAB receptor and endothelial NOS (eNOS) and eNOS phosphorylation levels than those observed in salt treated ECs. In addition, GABA-salt attenuated EC dysfunction by decreasing the levels of adhesion molecules (E-selectin, Intercellular Adhesion Molecule-1 [ICAM-1], vascular cell adhesion molecule-1 [VCAM-1]) and of von Willebrand Factor and reduced EC death. GABA-salt also reduced diet-induced reductions in the levels of eNOS, phosphorylated eNOS, VSMC proliferation and medial thickening in mouse aortic tissues, and attenuated Endothelin-1 levels in salt treated VSMCs. In summary, GABA-salt reduced high salt, high cholesterol diet induced hypertension in our mouse model by reducing M1 polarization, EC dysfunction, and VSMC proliferation.
Proceedings of the Korean Vacuum Society Conference
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2015.08a
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pp.227.2-227.2
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2015
세포를 부착하는 기술은 세포를 배양하기 위한 가장 기초적이며 중요한 기술이다. 세포 부착기술은 대상물과 세포 간의 다양한 생물학적, 물리화학적 연관 관계가 있으나 세포와 부착 대상물 간의 복잡한 상호작용 때문에 완벽히 예측하기는 어렵다. 우리는 이 연구에서 siloxane 성분을 포함하고 있는 전구체인 tetrakis(trimethylsilyloxy)silane과 hydro-carbon을 포함하고 있는 전구체인 cyclohexane을 혼합하여 플라즈마 중합 박막을 만들고 그 박막에서의 mouse embryonic fibroblast cells과 bovine aortic endothelial cell 부착의 정도를 확인하였다. 플라즈마 중합 박막을 제작하기 위해 capacitively coupled plasma chemical vapor deposition system을 사용하였고 carrier gas로는 Ar을 사용하였다. Plasma RF power는 13.56MHz 70W를 사용하였다. Bubbler에서 기화된 전구체를 포함하고 있는 Ar carrier gas가 process chamber에서 혼합되고 두 전구체의 비율을 조절하기 위해 carrier gas를 0 에서 150sccm으로 변화시켜 플라즈마 중합 박막을 제작하였다. 플라즈마 중합 박막의 화학적 조성은 Fourier transform infrared absorption spectroscopy와 X-ray photoelectron spectroscopy를 이용하여 측정하였고, 생물학적 세포 부착 정도는 현미경을 통해 관찰하였다. 또한, 물과 박막의 접촉각(Water contact angle)을 측정함으로써 본 박막과 세포 부착에서의 친, 소수성의 연관성을 확인하였다. Tetrakis(trimethylsilyloxy)silane를 전구체를 사용한 박막에서 세포 부착 억제 표면특성이 관찰되었고, 주입되는 cyclohexane 비율이 늘어날수록 세포부착 가능한 표면 특성을 보였다. 결과적으로, 전구체인 tetrakis(trimethylsilyloxy)silane와 cyclohexane의 비율을 조절함으로써 세포의 부착정도를 제어할 수 있음을 확인하였다.
Although arginase primarily participates in the last reaction of the urea cycle, we have previously demonstrated that arginase II is an important cytosolic calcium regulator through spermine production in a p32-dependent manner. Here, we demonstrated that rhaponticin (RPT) is a novel medicinal-plant arginase inhibitor and investigated its mechanism of action on Ca2+-dependent endothelial nitric oxide synthase (eNOS) activation. RPT was uncompetitively inhibited for both arginases I and II prepared from mouse liver and kidney. It also inhibited arginase activity in both aorta and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Using both microscope and FACS analyses, RPT treatments induced increases in cytosolic Ca2+ levels using Fluo-4 AM as a calcium indicator. Increased cytosolic Ca2+ elicited the phosphorylations of both CaMKII and eNOS Ser1177 in a time-dependent manner. RPT incubations also increased intracellular L-arginine (L-Arg) levels and activated the CaMKII/AMPK/Akt/eNOS signaling cascade in HUVECs. Treatment of L-Arg and ABH, arginase inhibitor, increased intracellular Ca2+ concentrations and activated CaMKII-dependent eNOS activation in ECs of WT mice, but, the effects were not observed in ECs of inositol triphosphate receptor type 1 knockout (IP3R1-/-) mice. In the aortic endothelium of WT mice, RPT also augmented nitric oxide (NO) production and attenuated reactive oxygen species (ROS) generation. In a vascular tension assay using RPT-treated aortic tissue, cumulative vasorelaxant responses to acetylcholine (Ach) were enhanced, and phenylephrine (PE)-dependent vasoconstrictive responses were retarded, although sodium nitroprusside and KCl responses were not different. In this study, we present a novel mechanism for RPT, as an arginase inhibitor, to increase cytosolic Ca2+ concentration in a L-Arg-dependent manner and enhance endothelial function through eNOS activation.
Endothelial dysfunction-induced lipid retention is an early feature of atherosclerotic lesion formation. Apoptosis of vascular smooth muscle cells (VSMCs) is one of the major modulating factors of atherogenesis, which accelerates atherosclerosis progression by causing plaque destabilization and rupture. However, the mechanism underlying VSMC apoptosis mediated by endothelial dysfunction in relation to atherosclerosis remains elusive. In this study, we reveal differential expression of several genes related to lipid retention and apoptosis, in conjunction with atherosclerosis, by utilizing a genetic mouse model of endothelial nitric oxide synthase (eNOS) deficiency manifesting endothelial dysfunction. Moreover, eNOS deficiency led to the enhanced susceptibility against pro-apoptotic insult in VSMCs. In particular, the expression of aggrecan, a major proteoglycan, was elevated in aortic tissue of eNOS deficient mice compared to wild type mice, and administration of aggrecan induced apoptosis in VSMCs. This suggests that eNOS deficiency may elevate aggrecan expression, which promotes apoptosis in VSMC, thereby contributing to atherosclerosis progression. These results may facilitate the development of novel approaches for improving the diagnosis or treatment of atherosclerosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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