Papenfussiella kuromo (PK) is a marine plant and an abundant ecological resource for the future; it is found in almost 80% of the terrestrial biosphere. The aim of this study was to investigate the antibacterial activity of PK against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), multidrug-resistant pathogen. The minimum inhibitory concentrations (MICs) of PK hexane fraction (PKH) against 7 strains of MRSA ranged from 1.0 to 2.0 mg/mL. In the checkerboard dilution method, a synergistic effect of the PKH and the antibiotics (oxacillin and norfloxacin) was seen. PKH markedly reduced the MIC of each of the 4 antibiotics against MRSA. The time-kill assay showed that the synergistic activity of PKH and an antibiotic reduced the bacterial counts below the lowest detectable limit after 24 h. These findings suggest that PKH has antibacterial activity, and may be important baseline data in future extensive studies of living marine resources as a source of compounds active against MRSA.
Cho, Hye Hyun;Kwon, Gye Cheol;Kim, Semi;Koo, Sun Hoe
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.7
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pp.1154-1162
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2015
The emergence of carbapenem resistance among Pseudomonas aeruginosa is an increasing problem in many parts of the world. In particular, metallo-$\beta$-lactamases (MBLs) and AmpC $\beta$lactamases are responsible for high-level resistance to carbapenem and cephalosporin. We studied the diversity and frequency of $\beta$-lactamases and characterized chromosomal AmpC $\beta$lactamase from carbapenem-resistant P. aeruginosa isolates. Sixty-one carbapenem-resistant P. aeruginosa isolates were collected from patients in a tertiary hospital in Daejeon, Korea, from January 2011 to June 2014. Minimum inhibitory concentrations (MICs) of four antimicrobial agents were determined using the agar-dilution method. Polymerase chain reaction and sequencing were used to identify the various $\beta$-lactamase genes, class 1 integrons, and chromosomally encoded and plasmid-mediated ampC genes. In addition, the epidemiological relationship was investigated by multilocus sequence typing. Among 61 carbapenem-resistant P. aeruginosa isolates, 25 isolates (41.0%) were MBL producers. Additionally, 30 isolates producing PDC (Pseudomonas-derived cephalosporinase)-2 were highly resistant to ceftazidime (MIC50 = $256{\mu}g/ml$) and cefepime (MIC50 = $256{\mu}g/ml$). Of all the PDC variants, 25 isolates harboring MBL genes showed high levels of cephalosporin and carbapenem resistance, whereas 36 isolates that did not harbor MBL genes revealed relatively low-level resistance (ceftazidime, p < 0.001; cefepime, p < 0.001; imipenem, p = 0.003; meropenem, p < 0.001). The coexistence of MBLs and AmpC $\beta$-lactamases suggests that these may be important contributing factors for cephalosporin and carbapenem resistance. Therefore, efficient detection and intervention to control drug resistance are necessary to prevent the emergence of P. aeruginosa possessing this combination of $\beta$-lactamases.
Gang, Il Yeong;Kim, Sang Yeol;Kim, Ho Sik;Kim, Jong Dae;Heo, Geun
Journal of the Korean Chemical Society
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v.34
no.2
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pp.189-196
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1990
8-Acyl-2-hydroxyphenazine-5,10-dioxides and 8-acyl-2-aminophenazine-5,10-dioxides were synthesized by the reaction of hydroquinone and 4-aminophenol with 6-acylbenzofuroxans which had been obtained from acetanilide and n-acyl chlorides bearing butanoyl, hexanoyl and octanoyl groups. The antimicrobial activities of these phenazine dioxide derivatives were investigated in terms of minimum inhibitory concentration by the common twofold dilution technique. It was observed that the antimicrobial activity of the phenazine dioxide derivatives bearing octanoyl group was stronger than that of those bearing butanoyl and hexanoyl groups in gram positive microorgamisms, but it was observed that the antimicrobial activity and the number of the carbon atom of acyl groups did not have any relation in gram negative microorganisms. When the activity of xanthine oxidase which is the key enzyme in the generation of superoxide anion radical ($O_2^-$), was measured in the presence of phenazine dioxide derivatives, the inhibitory action of the enzyme activity of 8-acyl-2-hydroxyphenazine-5,10-dioxides was increased in accordance with the number of the carbon atom of acyl groups.
The aim of this study was to investigate the antimicrobial effect of (-)-epigalocatechin on Fusobacterium nucleatum, Prevotella intermedia, and Porphyromonas gingivalis. To test the antimicrobial effect of (-)-epigalocatechin, the minimum inhibitory concentration (MIC) of against 4 strains of F. nucleatum, 2 strains of P. intermedia, and 2 strains of P. gingivalis was measured by broth dilution method. Time-kill curves were assessed for susceptible bacteria, testing $0{\times}MIC$ (control group), $0.5{\times}MIC$, $1{\times}MIC$, and $2{\times}MIC$ for (-)-epigalocatechin, by counting viable bacteria after 3, 90, 180, 360, 720, 1440 minutes. The MIC of (-)-epigalocatechin was 0.312-0.625, 0.625, and 0.625 mg/ml on the strains of F. nucleatum, P. intermedia, and P. gingivalis, respectively. Time-kill curves demonstrated (-)-epigalocatechin had bactericidal activity on P. intermedia ATCC $25611^T$, P. gingival is ATCC 53978, and F. nucleatum subsp. fusiforme ATCC $51190^T$. The results suggest that (-)-epigalocatechin can be useful in developing the oral hygiene product such as tooth past and gargling solution for the prevention of periodontal diseases.
The aim of this study was to evaluate the anti-helicobacter activity of the ethanol extract of Sohamhyoongtang (Coptidis Rhizoma, Pinelliae Tuber and Trichosanthis Semen) and Coptidis Rhizoma total alkaloids, which is one of the components of Sohamhyoongtang. Crude ethanol extract of Sohamhyoongtang (ESHHT) and Coptidis Rhizoma total alkaloids (CRTA) were used for this experiment. Five different types of H. pylori (including H. pylori 26695) were used as test strain. To determine anti-helicobacter activity, minimum inhibitory concentration (MIC) was determined by agar dilution method. The effect of ESHHT and CRTA on the gene expression of H. pylori was investigated by quantitative realtime-PCR (qRT-PCR). MICs of ESHHT against five H. pylori strains were $250{\sim}500{\mu}g/ml$ and MICs of CRTA against five H. pylori strains were $50{\sim}200{\mu}g/ml$. Four representative virulence genes of H. pylori, cagA, ureA, ureB and ureI were tested as target genes for qRT-PCR. According to the qRT-PCR results, both ESHHT and CRTA markedly repressed the expression of cagA gene of H. pylori 26695 (6.91 and 20 folds respecively). These results showed that the ESHHT and CRTA demonstrated antihelicobacter properties, suggesting their potential use in gastritis or duodenal ulcer.
We extracted essential oils from four species (Pinus densiflora, Larix kaempferi, Pinus koraiensis, and Abies holophylla) in the family Pinaceae to investigate their antibacterial activities against respiratory tract bacteria (Klebsiella pneumoniae, Haemophillus influenzae, Streptococcus pyogenes, Streptococcus pneumonia, and Neisseria meningitides). Among the tested oils, that from A. holophylla was showed strong activity based on disc diffusion and broth medium dilution (minimum inhibitory concentration, MIC) assays. Qualitative analysis of A. holophylla oil was carried out by GC-MS; ${\alpha}$-pinene, camphene, ${\beta}$-pinene, 3-carene, limonene, bornyl acetate, borneol, ${\beta}$-caryophyllene, ${\alpha}$-caryophyllene, caryophyllene oxide, and ${\alpha}$-bisabolol were identified as its major constituents. Fractionation by silica gel chromatography was performed to analyze the active constituents of the crude oil. In particular, one fraction containing caryophyllene oxide as the major constituent showed stronger antibacterial activity than the crude oil of A. holophylla. Growth rates of bacterial strains exposed to fraction D were explored by optical density (OD600) measurements while morphology was examined by optical microscopy observations ( ${\times}1000$). OD600 of K. pneumoniae decreased from 0.2582 to 0.005 in response to treatment with fraction D at a MIC value of $0.31{\mu}{\ell}/m{\ell}$.
In this study, we investigated the efficacy of Salmonella phage P22 combined with antibiotics to inhibit antibiotic-resistant S. Typhimurium CCARM 8009. The synergistic effect of phage P22 and antibiotics was evaluated by using disk diffusion and broth dilution assays. The development of Antimicrobial resistance was determined after time-kill assay. The antibiotic susceptibility assay showed the inhibition zone sizes around the antibiotic disks were increased up to 78.8% in the presence of phage (cefotaxime; 13.6%, chloramphenicol; 19.3%, ciprofloxacin; 12.7% and erythromycin; 78.8%). The minimum inhibitory concentration values of the combination treatment significantly decreased from 256 to 64 mg/mL for tetracycline, 8 to 4 mg/mL for chloramphenicol, 0.0156 to 0.0078 mg/mL for ciprofloxacin, 128 to 64 mg/mL for erythromycin and 512 to 256 mg/mL for streptomycin. The number of S. Typhimurium CCARM 8009 was approximately 4-log lower than that of the control throughout the combination treatment with phage P22 and ciprofloxacin delete at 37℃ for 20 h. The results indicate that the development of antimicrobial resistance in S. Typhimurium could be reduced in the presence of phage treatment. This study provides promising evidence for the phage-antibiotic combination as an effective treatment to control antibiotic-resistant bacteria.
The enterotoxin production and antimicrobial susceptibility on hemolytic strains from stools of diarrheal pigs was investigated in this study. Through morphological observation, gyrB nucleotide sequence, and API kit analysis, the selected potential pathogenic strain BY06 was identified as Bacillus cereus. Because the characteristic of enterotoxin symptoms were widely caused by Bacillus cereus strains, a PCR test was carried out in order to check the enterotoxin genes (hblA) in this strain. According to the results, this strain was an enterotoxin positive strain containing the hblA gene. The minimum inhibitory concentrations of 10 different antimicrobial agents were screened by the agar dilution test, indicating that this strain was resistant to penicillin G and intermediate to erythromycin; however, it susceptible to cephalothin, vancomycin, clindamycin, fusidic acid, gentamicin, ciprofloxacin, tetracycline and rifampin. These results suggest that the B. cereus BY06 isolated from pig feces has a potential risk of producing enterotoxin and is resistant to penicillin G, but susceptible to various antimicrobial agents.
Objectives : Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) has a cephalosporin and beta-lactam antibiotic-resistant strains. MRSA is one of the major pathogens causing hospital infection and the isolation ratio of MRSA has gradually increased. Consequently, increased resistance to antibiotics is causing serious problems in the world. Therefore, there is a need to develop alternative antimicrobial drugs for the treatment of infectious diseases. Methods : The antibacterial activities of Ipyo-san were evaluated against 2 strains of MRSA and 1 standard Methicillin-susceptible staphylococcus aureus (MSSA) strain by using the disc diffusion method, minimal inhibitory concentrations (MIC) assay, colorimetric assay using MTT test, checkerboard dilution test and time-kill assay performed under dark. Results : The MIC of Ipyo-san water extract against S. aureus strains ranged from 1000 to $2,000{\mu}g/ml$, so we confirmed that it had a strong antibacterial effect. Also, the combinations of Ipyo-san water extract and conventional antibiotics exhibited improved inhibition of MRSA with synergy effect. We suggest that Ipyo-san water extract against MRSA has antibacterial activity so it has potential as alternatives to antibiotic agents. For the combination test, we used Triton X-100 (TX) and DCCD for measurement of membrane permeability and inhibitor of ATPase. As a result, antimicrobial activity of Ipyo-san water extract was affected by the cell membrane. Conclusions : We suggest that the Ipyo-san water extract lead the treatment of bacterial infection to solve the resistance and remaining side-effect problems that are the major weak points of traditional antibiotics.
The Journal of the Korean Society for Microbiology
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v.22
no.4
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pp.377-392
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1987
Monoclonal antibody to the Escherichia coli heat-stable enterotoxin(ST) was produced to develop a rapid and convenient diagnostic method to the ST. The toxin was purified from culture supernatant of enterotoxigenic E. coli O148H28($ST^+/LT^+$) and conjugated to bovine serum albumin(BSA). The ST-BSA conjugate was used to immunize BALB/c mice and the immune spleen cells from these mice were fused with $P3{\times}63$ Ag8.V653 plasmacytoma cells. Hybridomas were screened by ELISA and positive hybridomas were cloned by limiting dilution. Finally, one stable clone (AS36) specific to ST was selected for further growth and characterization. Antibody titers of culture supernatant and ascitic fluid from BALB/c mice were 1:1,024 and 1:20,480 respectively in ELISA. The isotype and subclass of monoclonal antibody was IgG1 in sandwich ELISA. To test the neutralizing effect of monoclonal antibody on toxin activity of ST, mixture of ascitic fluid and ST was assayed by infant mouse assay and this monoclonel antibody was proved to be a neutralizing antibody. The titer of ascitic fluid which completely neutralized biological activity of 4 units of ST was 1:4. Purified ST was quantitatively measured by competitive ELISA and minimum amount of ST detectable by this assay was 250pg, which was an amount six-fold smaller than that detectable by infant mouse assay. Four reference strains of enterotoxigenic E. coli from WHO were detected by competitive ELISA and highly specific, sensitive and reproducible result was obtained.
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