Kim, Byong-Kak;Shim, Mi-Ja;Choi, Eung-Chil;Park, Young-In
Korean Journal of Pharmacognosy
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v.6
no.1
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pp.9-13
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1975
To isolate ergot strains which are capable of growing and producing alkaloids in submerged culture, strains were isolated from the sclerotia parasitizing the Graminae plants in Korea and the experiments of submerged culture of these strains yielded the following results: 1) The mycelia which were respectively isolated from the sclerotia parasitizing Agropyron semicostatum $N_{EES}$, Arundinella hirta $T_{ANAKA}$ var. ciliata $K_{OIDSUMI}$, Ischaemum anthephoroides $M_{IQ}$. var. eriostachyum $H_{ONDA}$, and Phleum pretense L. grew in Medium D by submerged culture. 2) When the strain of the ergot of Agropyron semicostatum was inoculated into six different nutrient solutions for submerged culture, its mycelium grew well in Media C, D and F, but produced alkaloids only in Medium C, indicating that Medium C is relatively suitable for the strain. 3) The extraction of the alkaloids from the culture broth by ether and T.L.C. analysis of the extract showed that it contained at least two types of alkaloids.
Bacteriophages of Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum which causes soft rot on diverse vegetables had been isolated from 6 major Chinese cabbage cultivation areas in Korea. In order to isolate bacteriophages, total 15 different strains of P. carotovorum subsp. carotovorum isolated from nation-wide of Korea had been used as a host. When we tested 30 different soil samples individually from Pyeongchang and Taebaek with 15 different strains as a host, Taebek soil samples showed bacteriophage plaques with almost all different indicator strains but Pyeongchang soil samples showed plaques only with P. carotovorum subsp. carotovorum Pcc2 and Pcc3 strains. Especially, P. carotovorum subsp. carotovorum Pcc3 strain was able to produce plaques with almost all soil samples. Thus, this strain can be used as an indicator strain for P. carotovorum subsp. carotovorum bacteriophage screening. Electron microscope observation revealed P. carotovorum subsp. carotovorum bacteriophages isolated in Korea were belonged to three different families, Myoviridae, Siphoviridae and Podoviridae in order Caudovirales.
Kim, Hye-Sook;Sang, Mee-Kyung;Myung, Inn-Shik;Chun, Se-Chul;Kim, Ki-Deok
The Plant Pathology Journal
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v.25
no.1
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pp.62-69
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2009
In this study, we characterized the bacterial strain KJ2C12 in relation with its biocontrol activity against Phytophthora capsici on pepper, and identified this strain using morphological, physiological, biochemical, fatty acid methyl ester, and 16S rRNA gene sequence analyses. Strain KJ2C12 significantly (P=0.05) reduced both final disease severity and areas under the disease progress curves of 5-week-old pepper plants inoculated with P. capsici compared to buffer-treated controls. As for the production of antibiotics, biofilms, biosurfactant, extracellular enzyme, HCN, and swarming activity, strain KJ2C12 produced an extracellular enzyme with protease activity, but no other productions or swarming activity. However, Escherichia coli produced weak biofilm only. Strain KJ2C12 could colonize pepper roots more effectively in a gnotobiotic system using sterile quartz sand compared to E. coli over 4 weeks after treatments. However, no bacterial populations were detected in 10 mM $MgSO_4$ buffer-treated controls. Strain KJ2C12 produced significantly higher microbial activity than the $MgSO_4$-treated control or E. coli over 4 weeks after treatments. Bacterial strain KJ2C12 was identified as Bacillus luciferensis based on morphological, physiological, and biochemical characteristics as well as FAME and 16S rRNA gene sequence analyses. In addition, these results suggested that B. luciferensis strain KJ2C12 could reduce Phytophthora blight of pepper by protecting infection courts through enhanced effective root colonization with protease production and an increase of soil microbial activity.
During the fermentation process of Saccharomyces cerevisiae, yeast cells must rapidly respond to a wide variety of external stresses in order to survive the constantly changing environment, including ethanol stress. The accumulation of ethanol can severely inhibit cell growth activity and productivity. Thus, the response to changing ethanol concentrations is one of the most important stress reactions in S. cerevisiae and worthy of thorough investigation. Therefore, this study examined the relationship between ethanol tolerance in S. cerevisiae and a unique protein called alcohol sensitive RING/PHD finger 1 protein (Asr1p). A real-time PCR showed that upon exposure to 8% ethanol, the expression of Asr1 was continuously enhanced, reaching a peak 2 h after stimulation. This result was confirmed by monitoring the fluorescence levels using a strain with a green fluorescent protein tagged to the C-terminal of Asr1p. The fluorescent microscopy also revealed a change in the subcellular localization before and after stimulation. Furthermore, the disruption of the Asr1 gene resulted in hypersensitivity on the medium containing ethanol, when compared with the wild-type strain. Thus, when taken together, the present results suggest that Asr1 is involved in the response to ethanol stress in the yeast S. cerevisiae.
Jeon, In-Hwa;Cho, Geon-Yeong;Han, Song-Ih;Yoo, Sun Kyun;Whang, Kyung-Sook
Korean Journal of Microbiology
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v.49
no.4
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pp.369-376
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2013
We isolated the ${\beta}$-glucosidase producing bacteria (BGB) in ginseng root system (rhizosphere soil, rhizoplane, inside of root). Phylogenetic analysis of the 28 BGB based on the 16S rRNA gene sequences, BGB from rhizosphere soil belong to genus Stenotrophomonas (3 strains), Bacillus (1 strain), and Pseudoxanthomonas (1 strain). BGB isolates from rhizoplane were Stenotrophomonas (16 strains), Streptomyces (1 strain) and Microbacterium (1 strain). BGB from inside of root were categorized into Stenotrophomonas (3 strains) and Lysobacter (2 strains). Especially, Stenotrophomonas comprised the largest portion (approximately 90%) of total isolates and Stenotrophomonas was a dominant group of the ${\beta}$-glucosidase producing bacteria. We selected strain 4KR4, which had high ${\beta}$-glucosidase activity (108.17 unit), could transform ginsenoside Rb1 into Rd, Rg3, and Rh2 ginsenosides. In determining its relationship on the basis of 16S rRNA sequence, 4KR4 strain was most closely related to Stenotrophomonas rhizophila e-$p10^T$ (AJ293463) (99.62%). Therefore, on the basis of these polyphasic taxonomic evidence, the ginsenoside Rb1 converting bacteria 4KR4 was identified as Stenotrophomonas sp. 4KR4 (=KACC 17635).
EPS producing bacteria were enumerated in ginseng root system (rhizosphere soil, rhizoplane, inside of root). EPS producing bacterial density of rhizosphere soil, rhizoplane and inside of root were distributed $9.0{\times}10^6$ CFU/g, $7.0{\times}10^6$ CFU/g, and $1.4{\times}10^3$ CFU/g, respectively. Phylogenetic analysis of the 24 EPS producing isolates based on the 16S rRNA gene sequences, EPS producing isolates from rhizosphere soil (RS) belong to genus Arthrobacter (6 strains) and Rhizobium (1 strain). EPS producing bacteria from rhizoplane (RP) were Arthrobacter (6 strains), Rhodococcus (1 strain) and Pseudomonas (1 strain). EPS producing bacteria from inside of root (IR) were categorized into Rhzobium (6 strains), Bacillus (1 strain), Rhodococcus (1 strain), and Pseudomonas (1 strain). Phylogenetic analysis indicated that Arthrobacter may be a member of representative EPS producing bacteria from ginseng rhizosphere soil and rhizoplane, and Rhizobium is typical EPS producing isolates from inside of ginseng root. The yield of EPS was 10.0 and 4.9 g/L by Rhizobium sp. 1NP2 (KACC 17637) and Arthrobacter sp. 5MP1 (KACC 17636). The purified EPS were analyzed by Bio-LC and glucose, galactose, mannose and glucosamine were detected. The major EPS sugar of these strains was glucose (72.7-84.9%).
The induction of growth promotion on numerous crops by rhizobacteria is a well documented phenomenon. In case of tomato (Lycopersicon esculentum), fruit yield is higher in replant soil than that in fresh soil. To investigate what kind of rhizobacterium is involved, microbial community in rhizosphere and on rhizoplane of tomato plants from each soil was analyzed by dilution plating on selective media. Many Gram-negative bacteria and actinomycetes were isolated from tomato in replant soil. One Gram-negative rhizobacterium isolated was identified as Pseudomonas putida based on its biochemical characteristics, fatty acid methyl ester analysis and 16S rDNA sequence. This bacterium designated strain 17 inhibited the growth of Pseudomonas corrugata, and increased growth of tomato seedlings. In addition, its culture filtrate inhibited conidial germination of plant-pathogenic fungi such as Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici, F. oxysporum f. sp. cucumerinum, and Nectria radicicola. Scanning electron microscopy revealed strain 17 colonized and persisted on the epidermal surfaces of tomato radicles and roots. These results suggest that P. putida strain 17 may serve as a biological control agent to suppress multiple soil-borne diseases for tomato plants. Increased microbial populations that suppress deleterious microorganisms including pathogens could be one of the major factors in increased tomato yield in replant soil.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.36
no.1
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pp.42-48
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2014
In this study, variations of the organic and nitrogenous compounds in wastewater were investigated in a single reactor with intermittent aeration. Over 90% of organic and nitrogen removals are accomplished with C/N ratio of 3 : 1 and 20/20 min of aeration/non-aeration period. Longer non-aeration period on the aeration/non-aeration cycle showed more stable nitrogen removal, showing various microbial community in the reactor. From PCR-DGGE analysis, it is conclusive that Dysgonomonas mossii strain Melo40, Eubacterium sp. oral clone JN088, Uncultured bacterium clone SPESB2_718, and Bacterium enrichment culture clone LE are related with the organics and nitrogen oxidation. Uncultured Acidobacteria bacterium clone AKYG487, Lactobacillus harbinensis strain FQ003, Erythrobacter litoralis strain Gi-3, Phytobacter diazotrophicus strain Ls8, and Mycobacterium sp. enrichment culture clone GE10037biofNNA are distinctly appeared under denitrification condition.
The present study describes the formation of succinic acid by a nonvirulent, highly osmotolerant Klebsiella pneumoniae strain SAP (succinic acid producer), its profile of metabolites, and enzymes of the succinate production pathway. The strain produced succinate along with other metabolites such as lactate, acetate, and ethanol under aerobic as well as anaerobic growth conditions. The yield of succinate was higher in the presence of $MgCO_3$ under $N_2$ atmosphere as compared with that under $CO_2$ atmosphere. Analysis of intracellular metabolites showed the presence of a smaller PEP pool than that of pyruvate. Oxaloacetate, citrate, and $\alpha$-ketoglutarate pools were considerably larger than those of isocitrate and fumarate. In order to understand the synthesis of succinate, the enzymes involved in end-product formation were studied. Levels of phosphoenolpyruvate carboxykinase, fumarate reductase, pyruvate kinase, and acetate kinase were higher under anaerobic growth conditions. Based on the profiles of the metabolites and enzymes, it was concluded that the synthesis of succinate took place via oxaloacetate, malate, and fumarate in the strain under anaerobic growth conditions. The strain SAP showed potential for the bioconversion of fumarate to succinate under $N_2$ atmosphere in the presence of $MgCO_3$. At an initial fumarate concentration of 10 g/l, 7.1 g/l fumarate was converted to 7 g/l succinate with a molar conversion efficiency of 97.3%. The conversion efficiency and succinate yield were increased in the presence of glucose. Cells grown on fumarate contained an 18-fold higher fumarate reductase activity as compared with the activity obtained when grown on glucose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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