Pseudomonas sp. P20 was a bacterial isolate which has the ability to degrade 4-chlorobi- phenyl(4CB) to 4-chlorobenzoic acid via the process of meta-cleavage. The recombinant plasmid pCK1 was constructed by insetting the 14-kb EcoRI fragment of the chromosomal DNA containing the 4CB-degrading genes into the vector pBluescript SK(+). Subsequently, E. coli XL1-Blue was transformed with the hybrid plasmid producing the recombinant E. coli CK1. The recombinant cells degraded 4CB and 2,3-dihydroxybiphenyl(2,3-DHBP) by the pcbAB and pcbCD gene products, respectively. The pcbC gene was expressed most abundantly at the late exponential phase in E. coli CK1 as well as in Pseudomonas sp. P20, and the level of the pcbC gene product, 2,3-DHBP dioxygenase, expressed in E. coli CK1 was about two-times higher than in Pseudomonas sp. P20. The activities of 2,3-DHBP dioxygenase on catechol and 3-methylcatechol were about 26 to 31% of its activity on 2,3-DHBP, but the enzyme did not reveal any activities on 4-methylcatechol and 4-chlorocatechol.
Alcaligenes xylosoxydans strain SMN3 capable of utilizing biphenyl grew not only on phenol, and benzoate, but also on salicylate. Catabolisms of biphenyl and salicylate appear to be interrelated since benzoate is a common metabolic intermediate of these compounds. Enzyme levels in the excatechol 2. 3-dioxygenas which is meta-cleavage enzyme of catechol, but did not induce catechol 1, 2-dioxygenase. All the oxidative enzymes of biphenyl and 2, 3,-dihydroxybiphenyl (23DHBP) were induced when the cells were grown on biphenyl and salicylate, respectively. Biphenyl and salicylate could be a good inducer in the oxidation of biphenyl and 2, 3-dihydroxybiphenyl. The two enzymes for the degradation of biphenyl and salicylate were induced after growth on either biphenyl or salicylate, suggesting the presence of a common regulatory element. However, benzoate could not induce the enzymes responsible for the oxidation of these compounds. Biphenyl and salicylate were good inducers for indigo formation due to the activity of biphenyl dioxygenase. These results suggested that indole oxidation is a property of bacterial dioxygenase that form cis-dihydrodiols from aromatic hydrocarbon including biphenyl.
Ralstonia eutrupha JMP134 is a well-known soil bacterium which can metabolite diverse aromatic compounds and xenobiotics, such as phenol, 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2, 4-D), and trichloroethylene (TCE), etc. Phenol is degraded through chromosomally encoded phenol degradation pathway. Phenol is first metabolized into catechol by a multicomponent phenol hydroxylase, which is further metabolized to TCA cycle intermediates via a meta-cleavage pathway. The nucleotide sequences of the genes for the phenol hydroxylase have previously been determined, and found to composed of eight genes phlKLMNOPRX in an operon structure. The phlR, whose gene product is a NtrC-like transcriptional activator, was found to be located at the internal region of the structural genes, which is not the case in most bacteria where the regulatory genes lie near the structural genes. In addition to this regulatory gene, we found other regulatory genes, the phlA and phlR2, downstream of the phlX. These genes were found to be overlapped and hence likely to be co-transcribed. The protein similarity analysis has revealed that the PhlA belongs to the GntR family, which are known to be negative regulators, whereas the PhlR2 shares high homology with the NtrC-type family of transcriptional activators like the PhlR. Disruption of the phlA by insertional mutation has led to the constitutive expression of the activity of phenol hydroxylase in JMP134, indicating that PhlA is a negative regulator. Possible regulatory mechanisms of phenol metabolism in R. eutropha JMP134 has been discussed.
A bacterial strain which formed a distinct colony on agar plate containing phenol as a vapor phase and grew well in a liquid minimal medium was isolated and identified as Acinetobac- ter sp. GEM2. The optimal temperature and initial pH for the growth of Acinetobacter sp. GEM2 were 30$\circ$C and 7.0, respectively. Cell growth was inhibited by phenol at the concentration over 1500 ppm. Cell growth dramatically increased from 10 hours after cultivation and almost showed a stationary phase within 24 hours at which 95% of phenol was concomitantly degraded. Acinetobac- ter sp. GEM2 was capable of growing on aromatic compounds, such as benzoic acid, phenol, m- cresol, o-cresol, P-cresol, catechol, gentisic acid, and toluene, but did not grow on benzene, salicylic acid, p-toluic acid, and p-xylene. By the analysis of catechol dioxygenase, it seemed that catechol was degraded through both meta- and ortho-cleavage pathway. The growth-limiting log P value of Acinetobacter sp. GEM2 on organic solvents was 2.0.
The oxidative decarboxylation of phenylsulfinylacetic acid (PSAA) by Cr(VI) in 20% acetonitrile -80% water (v/v) medium follows overall second order kinetics, first order each with respect to [PSAA] and [Cr(VI)] at constant [$H^+$] and ionic strength. The reaction is acid catalysed, the order with respect to [$H^+$] is unity and the active oxidizing species is found to be $HCrO_3^+$. The reaction mechanism involves the rate determining nucleophilic attack of sulfur atom of PSAA on chromium of $HCrO_3^+$ forming a sulfonium ion intermediate. The intermediate then undergoes ${\alpha}$,${\beta}$-cleavage leading to the liberation of $CO_2$. The product of the reaction is found to be methyl phenyl sulfone. The operation of substituent effect shows that PSAA containing electron-releasing groups in the meta- and para-positions accelerate the reaction rate while electron withdrawing groups retard the rate. An excellent correlation is found to exist between log $k_2$ and Hammett ${\sigma}$ constants with a negative value of reaction constant. The ${\rho}$ value decreases with increase in temperature evidencing the high reactivity and low selectivity in the case of substituted PSAAs.
A nonconventional yeast strain Y103 capable of degrading several aromatic hydrocarbons was isolated from the wastewater of the Yocheon industrial complex. The strain Y103 was identified as Yarrowia lipolytica on the basis of its unique dimorphic and biochemical characteristics as determined by a Biolog test. Y. lipolytica Y103 was found to degrade phenol and 4-chlorophenol to produce catechol. The catechol then will be further degraded to produce 2-hydroxymuconic semialdehyde via meta-cleavage. These results indicate that strain Y103 degrades 4-chlorophenol, phenol, and catechol through a consecutive reaction to produce 2-hydroxymuconic semialdehyde. The most active degradation of phenol by Y. lipolytica Y103 occurred with a 0.5 mM phenl concentration in an MM2 medium at $30^{\circ}C$ and pH 7.0.
삼척탄전서부지역(三陟炭田西部地域)의 양단부(兩端部)에 해당하는 본연구지역(本硏究地域)은 태백산통(太白山統)을 기저(基底)로 하여 "조선-평안계(朝鮮-平安系)"의 층서(層序)가 해방전(解放前)에 수립(樹立)되었고 정창희(鄭昌熙)에 의하여 "평안계(平安系)"는 대폭 수정(修正)되었다. 특히 이 지역의 지질구조(地質構造)는 층서확립(層序確立)과 함께 "백운산대향사(白雲山大向斜)"구조(構造)가 이미 오래전에 인지(認知)되었으나 동서성(東西性)의 대습곡구조(大褶曲構造)와 남북성(南北性)의 교차습곡구조(交叉褶曲構造)와의 생성시기(生成時期)의 선후관계(先後關係)에 대해서는 다른 견해(見解)가 대립(對立)되어 왔다. 이 지역(地域)을 대향사(大向斜)의 남익부(南翼部)인 녹전구(碌田區), 북익부(北翼部)인 문곡구(文曲區), 비부(鼻部)인 예미구(禮美區)로 나누어 구조요소(構造要素)를 관측해석(觀測解析)하였던 바, 세 지역의 층이면(層理面)에 대한 ${\pi}$도(圖)에서 얻은 대원(大圓)의 극(極)과 선구조(線構造)의 최대치(最大値)는 비교적 잘 일치하는데 남북성(南北性) 교차습곡(交叉褶曲)의 경향(傾向)과 같다. 이는 남북성교차습곡(南北性交叉褶曲)의 형성과정(形成過程)에서 제구조요소(諸構造要素)가 생성(生成)되었고 동서성대향사(東西性大向斜) 구조(構造)와는 무관(無關)하다는 것을 입증(立證)하므로 선남북성교차습곡후동서성대향사(先南北性交叉褶曲後東西性大向斜)의 습곡작용(褶曲作用)이 있었음을 뒷받침하고 있다. 다시 말하면 본역(本域)에 발달(發達)하는 소구조요소(小構造要素)는 대체로 교차습곡(交叉褶曲)에 수반(隨伴)된 것으로 후기(後期)의 백운산향사(白雲山向斜)에 의해서 담란(擔亂)되고 있다. 기반암층(基盤岩層)에는 동사습곡(同斜褶曲)이, 하부고생층(下部古生層) 중의 규암층중(硅岩層中)에는 심한 단열(斷裂)이, 니질암층(泥質岩層) 중에는 각상습곡(角狀褶曲)이, 탄산염암층(炭酸鹽岩層)중에는 조합벽개(組合劈開)가, 상부고생층(上部古生層)중에는 평행습곡(平行褶曲)이 우세하여 층서(層序)에 따른 변형양식(變形樣式)의 차이(差異)를 보이고 있어 구조계층(構造階層)이 성립(成立)한다.
방향족화합물들로 오염되어있는 토양 및 산업폐수를 포함한 각종 시료로부터 phenol에 분해활성이 높은 56균주를 순수분리 하였으며, 이들 분리 균주 중 균체생육과 phenol 분해활성이 가장 높은 균주인 GN13을 선별하였다. 분리균주 GN13은 형태학적, 생리학적 및 생화학적 특성을 조사한 결과 Neisseria 속 세균과 유사한 것으로 판명되어 최종적으로 Neisseria sp. GN13으로 명명하였다. 분리균주 Neisseria sp. GN13의 균체생육 및 phenol 분해를 위한 최적온도와 최적 pH는 각각 $32^{\circ}C$와 7.0였다. 유일 탄소원으로 phenol 1,000 mg/l를 포함하여 최적화된 배지를 사용한 jar-fermentor 배지에서 배양 30시간에 균체생육이 최대에 이르렀으며 배양 27시간째 거의 모든 phenol이 분해되었으며, catechol deoxygenase 활성측정에 의하여 Neisseria sp. GN13은 meta-와 ortho-pathway를 통하여 catechol 분해가 일어났다. Neisseria sp. GN13은 phenol 함유 인공폐수에서의 phenol 분해율은 배양 30시간 만에 97%의 phenol이 분해되는 것으로 나타났으며, 인공폐수에 대한 Neisseria sp. GN13과 활성슬러지 처리구에서의 TOC 제거효율은 각각 83%와 78%였다. 석유화학폐수에 대한 Neisseria sp. GN13의 COD 제거율은 활성슬러지만을 포함한 대조구보다 약 1.3배 높은 효율을 나타내었다. 이러한 결과로 미루어 분리균주 Neisseria sp. GN13은 phenol을 함유하고 있는 여러 폐수에 효과적으로 적용될 수 있을 것으로 생각된다.
2-Hydroxymuconic semialdehyde (2-HMS) dehydrogenase catalyzes the conversion of 2-HMS to 4-oxalocrotonate, which is a step in the meta cleavage pathway of aromatic hydrocarbons in bacteria. A tomC gene that encodes 2-HMS dehydrogenase of Burkholderia cepacia G4, a soil bacterium that can grow on toluene, cresol, phenol, or benzene, was overexpressed into E. coli HB 101, and its gene product was characterized in this study. 2-HMS dehydrogenase from B. cepacia G4 has a high catalytic efficiency in terms of V$_{max}$K$_{max}$ towards 2-hydroxy-5-methyl-muconic semialdehyde followed by 2-HMS but has a very low efficiency for 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde. However, the enzyme did not utilize 2-hydroxy-6-oxo-hepta 2,4-dienoic acid and 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2,4-dienoic acid as substrates. The molecular weight of 2-HMS dehydrogenase from B. cepacia G4 was predicted to be 52 kDa containing 485 amino acid residues from the nucleotide sequence of the tomC gene, and it exhibited the highest identity of 78% with the amino acid sequence of 2-HMS dehydrogenase that is encoded in the aphC gene of Comamonas testosteroni TA441. 2-HMS dehydrogenase from B. cepacia G4 showed a significant phylogenetic relationship not only with other 2-HMS dehydrogenases, but also with different dehydrogenases from evolutionarily distant organisms.sms.
Kim, Ji-Young;Kim, Young-Chang;You, Lim-Jai;Lee, Ki-Sung;Ok, Ka-Jong;Hee, Min-Kyung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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제35권1호
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pp.53-60
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1997
Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 isolated from the polluted environment are capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce benzoic acid and 4-chlorobenzoic acid (4CBA) respectively, by pcbABCD-encoded enzymes. 4CBA can be further degraded by Pseudomonas sp. DJ-12, but not by Pseudomonas sp P20. However, the meta-cleavage activities of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) and 4-chloro-2, 3-DHBP dioxygenases (2, 3-DHBD) encoded by pcbC in Pseudomonas sp. P20 were stronger than Pseudomonas sp. DJ-12. In this study, the pcbC gene encoding 2, 3-DHBD was cloned from the genomic DNA of Pseudomonas sp. P20 by using pKT230. A hybrid plasmid pKK1 was constructed and E. coli KK1 transformant was selected by transforming the pKK1 hybrid plasmid carrying pcbC into E. coli XL1-Blue. By transferring the pKK1 plasmide of E. coli KK1 into Pseudomonas sp. DJ-12 by conjugation, a recombinant strain Pseudomonas sp. P20, Pseudomonas sp. DJ-12, and the recombinant cell assay methods. Pseudomonas sp. DJ12-C readily degraded 4CB and 2, 3-DHBP to produce 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA), and the resulting 4CBA and benzoic acid were continuously catabolized. Pseudomonas sp. DJ12-C degraded 1 mM 4CB completely after incubation for 20 h, but Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 showed only 90% and Pseudomonas sp. DJ-12 had, but its degradation activity to 2, 3-DHBP, 3-methylcatechol, and catechol was improved.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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