Preservation of liquid semen is an important factor for breeding management in swine industry. Oxidative stress of spermatozoa during liquid preservation has a detrimental effect on sperm quality and decreases fertility. Objective of this study was to determine the effect of antioxidant, Quercetin, on capability of porcine liquid semen preservation. Freshly collected porcine semen from boars (n=3), having proven fertility was counted, diluted to $3{\times}10^7/mL$ and divided into 5 different semen extenders. Aliquots of diluted semen with different extenders were subjected to measure the pH, motility, viability and sperm DNA structure status on elapse time after preservation for 10 days. For the first 3 days, semen preserved in all 5 different extenders maintained their initial pH and either gradually decreased or increased thereafter, indicating lipid peroxidation has started. Sperm motility (r=0.52, p=0.01) and viability (r=0.55, p=0.03) had positive correlation with semen pH. Sperm motility was maintained well (p<0.05) in especially 2 extenders containing Tris and antioxidant compared to other extenders, suggesting both Tris and antioxidant worked as pH regulator and had beneficial effects on sperm characteristic during preservation. Sperm DNA structure status accessed by sperm chromatin structure assay on elapsed time after preservation, tended to be higher in semen preserved without antioxidant. Taken together, addition of antioxidant to extender prevents the sperm from oxidative stress during storage in mechanism by which antioxidant slows the lipid peroxidation, and thus reduced the reactive oxygen species in preserved porcine semen resulted in maintaining semen pH, sperm motility and viability for 7~10 days.
The objective of this study was to investigate the effect of storage time on fresh boar semen in Androhep and Beltsville Thawing Solution (BTS). Boar semen samples extended in each extender were stored at $17^{\circ}C$ up to 4 days. Sperm motility kinematics was evaluated by computer assisted sperm analyzer (CASA) and capacitation status by chlortetracycline (CTC)/Hoechst 33258 staining. Sperm motility (%) was not decreased during storage in BTS and Androhep. No significant difference between extenders was observed. Only significant differences in kinematic parameters on linearity during storage were found. The percentage of dead sperm significantly decreased during storage (p<0.05). Also the percentage of noncapacitated, capacitated, and acrosome-reacted sperm significantly modified during storage (p<0.05). However, there was no significant difference between extenders except proportion of capacitated sperm. This finding supported that modification in these parameters was not significantly different between extenders during this short-term storage. Our finding strongly indicated that both Androhep and BIS maintained favorable conditions for motility, motility kinematics, and capacitation status during short-term storage. Despite modifications in some parameters were apparent during sperm storage in extenders, these may not affect the fertilizing capacity of boar semen.
Objective: This study was conducted to investigate the effect of L-carnitine on the pig semen characteristics during storage. Methods: Spermatozoa samples were examined for spermatozoa quality and then randomly divided into 5 groups: 0 (control), 12.5, 25, 50, and 100 mM L-carnitine. Sperm motility, plasma membrane integrity and antioxidant parameters (total reactive oxygen species, total antioxidant capacity, and malondialdehyde) were evaluated after 0, 3, 5, and 10 day cooled-storage at 17℃. Moreover, ATP content, mitochondria activity as well as sperm-binding and in vitro fertilizing ability of preserved boar sperm were also investigated. Results: Supplementation with 50 mM L-carnitine could effectively maintain boar sperm quality parameters such as sperm motility and membrane integrity. Besides, we found that L-carnitine had positive effects on boar sperm quality mainly through improving antioxidant capacities and enhancing ATP content and mitochondria activity. Interestingly, by assessing the effect of L-carnitine on sperm fertility and developmental potential, we discovered that the extender containing L-carnitine could improve sperm quality and increase the number of sperms bounding to zona pellucida, without improving in vitro fertility and development potential. Conclusion: These findings suggested that the proper addition of L-carnitine to the semen extender improved boar sperm quality during liquid storage at 17℃.
This study was undertaken to find out the effect of cholesterol and serum albumin on sperm ability and lipid peroxidation levels period to the liquid storage of miniature pig sperm. Ejaculated semen from miniature pigs was collected by gloved-hand method into a pre-warmed ($37^{\circ}C$) thermos bottle, and extended with Modena solution {with and without BSA, methyl-beta-cyclodextrin (-cholesterol) and cholesterol loaded cyclodextrin (+cholesterol)}. Each semen was assessed for viability (SYBR-14/PI staining) and acrosome intactness, intensity and capacitation status by chlorotetracycline (CTC) staining at 1, 3, 5, 7 and 10 days of storage. At for the effects of cholesterol and serum albumin on lipid peroxidation, semen were incubated with $H_2O_2$ ($10\;{\mu}M$), and lipid peroxidation level were measured by flow cytometry using the lipid peroxidation reporter probe $C_{11}-BODIPY^{581/591}$. The result, lipid peroxidation level in sperm added with cholesterol were lower in $10\;{\mu}M$$H_2O_2$ compared to the added sperm with serum albumin. Also, added cholesterol to sperm had significant (p<0.05) higher viability when storage for 7 and 10 days and lower when 10 days of storage percentage of acrosome-reacted sperm (AR pattern) in acrosome state as say result compared to other treated groups. In conclusion, role of cholesterol during lipid storage in miniature pig spermatozoa was protected boar spermatozoa from lipid peroxidation prior to lipid storage. Addition serum albumin during lipid storage in sperm may be induce sperm membrane damage by lipid peroxidation. Therefore, addition of cholesterol to miniature pig sperm will be lead to extension of liquid storage periods.
돼지 인공수정센터에서 사육중인 인공수정용 종모돈을 이용하여 1995년부터 2000년까지 보존액 종류, 보존온도 및 보존기간에 따른 정액성상 변화와 번식성적을 조사하여 돼지 인공수정시 번식성적 향상과 실용화에 기여코자 본 연구를 실시하였다. 1. 돼지 액상정액의 보존액 종류에 따른 보존기간별 활력은 Androhep 보존액은 3일째부터, BTS 및 Modena는 5일째부터 현저하게 감소하는 경향을 보였고 (P<0.05), pH변화는 6.24~7.06 범위에서 변이가 심하게 관찰되었으며 Androhep 보존액이 산도가 낮은 경향을 보였으나 전반적으로 규칙 적 인 경향을 나타내었다. 보존액 종류별 보존기간에 따른 분만율은 BTS, Modena 및 Androhep 보존액 모두 5일 보존까지 차이가 없었다. 보존액별 분만율은 Androhep 보존액이 BTS 보존액과는 차이가 없었으나 1일 보존과 5일 보존에서 Modena보존액 보다 우수하였다 (P<0.05). 산자수는 보존 기간별 보존액간에 차이는 없었으나 Androhep 보존액은 3일 보존부터 산자수가 유의적으로 감소하였다 (P<0.05). 2. 보존온도에 따른 액상정액의 운동성과 정상첨체 비율에서 17$^{\circ}C$ 보존정액의 운동성은 3일째부터, 정상 첨체율은 4일째부터 감소하였으나 5$^{\circ}C$ 보존정액은 4일 보존까지 정액성상의 변화가 크지 않은 것으로 나타났다. 17$^{\circ}C$에 보존한 액상정액이 5$^{\circ}C$에 보존한 것보다 분만율은 현저히 높았으나 산자수는 비슷한 경향을 보였고, 분만율은 보존 2일째부터 산자수는 3일째부터 감소하였다. 5$^{\circ}C$ 보존정액은 4일까지 분만율에 큰 변화가 없었으나 산자수는 다소 감소하는 경향을 보였다.
This study was designed to analyze boar sperm to compare motility, acrosome morphology, viability and ATP by various preservation methods between Duroc boar A with cold shock resistance sperm and Duroc boar B with cold shock sensitivity sperm. Semen volume, sperm concentration, motility and normal acrosome between Duroc boar A and B did not show any differences within 2 h after collection. There were no differences in sperm motility and normal acrosome between boar A and B at 1 day of preservation at $17^{\circ}C$ and $4^{\circ}C$, respectively. However, sperm motility and normal acrosome from 2 day of preservation at $17^{\circ}C$ and $4^{\circ}C$, respectively, were higher for boar A than boar B. The frozen-thawed sperm motility and normal acrosome were higher for boar A than boar B. The sperm viability and ATP concentration according to storage period of liquid semen at $17^{\circ}C$ and $4^{\circ}C$ were higher for boar A than boar B. Also, the sperm viability and ATP concentration of frozen-thawed semen were higher for boar A than boar B. In conclusion, we found out that the original quality of boar semen with cold shock resistance sperm played an important role.
Bhakat, M.;Mohanty, T.K.;Raina, V.S.;Gupta, A.K.;Pankaj, P.K.;Mahapatra, R.K.;Sarkar, M.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제24권10호
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pp.1348-1357
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2011
The objective of this study was to compare the effect of Butylated Hydroxy Toluene (BHT), Pentoxifylline (PTX) and ${\alpha}$-tocopherol (Vit E) on semen quality parameters of Karan Fries bulls. The fortification of extender by various semen additives improves motility as well as fertility of spermatozoa. Split samples of 24 ejaculates of four Karan Fries bulls were extended in extender with or without various additives such as BHT, PTX and Vit E, and performance was evaluated at an interval of 0, 24, 48 and 72 h at refrigerated temperature (4-$7^{\circ}C$). Results of the present study revealed that addition of BHT, PTX and Vit E in extender improved sperm cell function, such as motility, viability, HOST, and acrosome integrity, as compared to the control during liquid storage up to 48 h of preservation at refrigerated temperature. There was no significant (p<0.05) difference between any of the additives up to 48 h of preservation. Overall, the results showed a significant (p<0.05) deterioration in motility after each storage interval. The results showed a significant deterioration in the acrosome integrity and plasma membrane integrity up to 48 h; subsequently, there was not much degradation of both the semen quality parameters. There was a significant increase in spermatozoal tail and total abnormality after each storage interval at refrigerator temperature (4 to $7^{\circ}C$); however, the head and mid-piece abnormalities were almost unaffected. Tail and total abnormality were least in extender fortified with BHT, PTX and Vit E at different hours of incubation as compared to the control. The addition of 1.5 mM BHT, 3.6 mM PTX and 1 mg/ml Vit E in the semen extender has more beneficial effect in terms of semen quality and preservability of spermatozoa.
본 연구는 인공수정 센터에서 이용되고 있는 종모돈의 인공수정 분만율의 차이를 기준으로 하여 정액의 보존 일에 따른 정자의 생존율, CASA, HOST, IVP 및 SCSA를 조사하여 이들 정자의 분석법들과 인공수정 분만율과의 상관관계를 조사하여 종모돈의 수정 능력을 예측할 수 있는 정액 평가법을 개발하고자 실시하였다. 종모돈의 액상정액을 대상으로 CASA, HOST, IVP 및 SCSA 기법을 적용한 정액의 평가 결과는 다음과 같았다. 정액의 보존 일별 HOST 결과는 보존 일이 경과함에 따라 유의적으로 감소하였고(P<0.05), IVP 결과 난자 당 침투 정자 수는 보존 3일째에 유의적으로 감소하였다(P<0.05). 보존 0일과 6일에 HOST는 분만율이 80% 이상인 종모돈 군이 70% 미만인 종모돈 군 보다 유의적으로 높았고, 3일에서는 80% 이상인 종모돈 군이 다른 종모돈 군에 비하여 높았다(P<0.05). IVP는 보존 0일에 분만율이 80% 이상인 종모돈 군이 70% 미만인 종모돈 군보다 난자당 침투 정자 수가 유의적으로 많았다(P<0.05). %Red는 보존 0일과 3일에는 분만율이 80% 이상과 70% 미만인 종모돈 군 간에 유의적인 차이를 보였으나 보존 6일에서는 모든 종모돈 군간에 유의적인 차이가 있었다(P<0.05). %Red(r=0.79, P<0.01 ; r=0.86, P<0.01 ; r=0.88, P<0.01)는 정액의 보존 일이 증가함에 따라 분만율과의 부의 상관 계수가 증가하였다. 이상의 결과를 종합해 보면 SCSA는 정액의 수정 능력을 평가하는데 있어서 매우 유용한 방법이며, 정액의 보존 일은 여러 가지 정자 기능과 SCSA 결과에 크게 영향을 주는 것으로 나타났다. 정액의 수정 능력을 평가함에 있어서 정액의 보존 일령을 고려하고 정자 기능 검사와 SCSA를 병행하여 실시할 경우 종모돈의 수정 능력 평가 시 정확성을 더욱 높일 수 있는 유용한 방법이 될 수 있을 것으로 사료된다.
Artificial insemination technique has been contributed immensely for production of livestock worldwide as a critical assisted reproductive technique to preserve and propagate excellent genes in domestic animal industry. In the past decade, methods for semen preservation have been improved mostly in liquid preservation method for boar semen and freezing method for bull semen. Among many factors affecting semen quality during preservation, reactive oxygen species, produced by aerobic respiration in sperm for survival and motility, are unfavorable to sperm physiology. In mammalian cell as well as in the sperm, antioxidant system plays a role in degradation of reactive oxygen species. Magnetized water forms smaller stabilizing water clusters, resulting in high absorption and permeability of the cell for water, implicating its application for semen preservation. Therefore, this review focuses on preservation methods of boar and bull semen with respect to improvement of extender and reduction of reactive oxygen species by using magnetized water and supplementation of antioxidants.
1. Diluted chicken semen can be preserved at 2 to 5$^{\circ}C$ for 24 to 48 hr with resultant fertility of greater than 90% of that of fresh semen. Turkey semen can be preserved at 10 to 15$^{\circ}C$ for 6 to 24 hr and provide economical fertility. 2. Frozen chicken semen has given variable results; a 21 to 93% fertility ranges as compared to 92 to 94% expected with fresh semen. Highest fertility levels obtained with frozen turkey semen intravaginally inseminated have been 61 and 63% using DMSO and glycerol, respectively, as cryoprotectants. 3. The use of glycerol as a cryoprotectant reauires that its concentration in semen be reduced to less than 2% either by dialysis or centrifugation after thawing and before intravaginal insemination if optimal fertility is to be obtained. 4. The temperature at which cryoprotectants are added to semen and the time allowed for equilibration are important for subsequent fertility pre- and post-freezing. 5. The type of container used for packaging the semen, freeze or cooling rates, thaw rates and level of cryoprotectant all interact in affecting cell survival. 6. Plastic freeze straws as a packaging device for semen offers the following advantages: easy to handle, require minimal storage space, offer a wide range of freeze and thaw rates, and insemination can be made directly from them upon thawing. 7. Controlled slow cooling rates of 1 to 8$^{\circ}C$/min have thus far provided the best results for cooling chicken semen throught the transition phase change (liquid to solid) or critical temperature range of +5 to -20 or -35$^{\circ}C$. 8. Highest fertilities have been achieved with frozen chicken semen where a slow thaw rate (2。 to 5$^{\circ}C$) has been used regardless of the freeze rate. 9. To maintain a constant high level of fertility throughout a breeding season with frozen semen, a higher absolute number of spermatozoa must be inseminated (2 to 3 times as many) as compared to fresh semen since a, pp.oximately 50% are destroyed during processing and freezing. 10. The quality of semen may vary with season and age of the male. Such changes in sperm quality could be accentuated by storage effects. Thus, the correct number of spermatozoa may very well vary during the course of a breeding period. 11. As to time of insemination, it is best to avoid inseminating chicken hens within 1-2 hr after or 3-5 hr before oviposition; and turkey hens during or 7-10 hr before oviposition. 12. The physiological receptiveness of the oviduct at the time of insemination is a very important biological factor influencing fertility levels throughout the breeding season.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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