Kim, Se-Kyu;Kim, Eun-Soo;Kim, Woo-Kap;Lee, Kwang-Woong
Applied Microscopy
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v.25
no.4
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pp.71-82
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1995
The ultrastructure and storage reserves of the Capsicum annuum seeds were studied in order to identify structure and to localize storage components in the endosperm using light microscopy, scanning and transmission electron microscopy. The seed coat was composed of one cell layer which contained a large number of lipid bodies, while most of the endosperm cells did not showed many lipid bodies. During seed maturation, the endosperm cells were continuously degenerated by the autophagy. Various types of plastids were also distinguished in the endosperm cells. They contained starch grains surrounded by electron-dense tiny particles, plastoglobuli, and vasicular bodies.
The purpose of this study is to investigate the hemp (Cannabis sativa cv. Chungsam) seed structure and ultrastructure of food reserves by scanning and transmission electron microscopy. We examined the seed coat and embryo consisting of a hypocotyl-radicle axis and two cotyledons. The seed coat consisted of exotesta and endotesta. The exotesta was a mechanical layer with lignified and elongated cells, while endotesta of the underlying layers of the exotesta was consisted of two separated cell layers. The collapsed outer layer of endotesta showed the unique reticulate structures. In cotyledon cells, protein and lipid bodies occupied most of cytoplasm. Protein bodies varied in diameter from 1.8 to $5.0{\mu}m$ and possessed a protein matrix containing electron-dense globoid crystals. Numerous lipid bodies ranged from 0.8 to $3.0{\mu}m$ in diameter were distributed around the protein bodies. During the early stages of breakdown, protein bodies rapidly changed their shape into the granular feature, however, lipid bodies were gradually degradated and fused each other. The degeneration process of protein bodies and lipid bodies of cotyledon cells might be correlated with the reports which hemp seeds rapidly lose their ability to germinate.
Ultrastructural changes of the pericarp in Citrus reticulata has been investigated during hesperidium abscission. The pericarp was composed of compactly arranged parenchyma cell layers during early stages of fruit development. The outermost exocarp was green and active in photosynthesis. However, cells in the exocarp soon changed into collenchyma cells by developing unevenly thickened walls within a short time frame. As the fruit approached maturation, the chlorophyll gradually disappeared and chloroplasts were transformed into carotenoid-rich chromoplasts. In the mature fruit the exocarp consisted of large, lobed collenchyma cells with primary pit fields and numerous plasmodesmata. The immature mesocarp was a relatively hard and thick layer, located directly under the exocarp. With development, the deeper layers of the exocarp merged into the white, spongy mesocarp. Before separation of the hesperidium from the plant, some unusual features were detected in the plasma membrane of the exocarp cells. The number of small vacuoles and dark, irregular osmiophilic lipid bodies also increased enormously in the exocarp collenchyma after the abscission. They occurred between the plasma membrane and the wall, and invaginated pockets of the plasma membrane containing double-membraned vesicles were also frequently noticed. The lipid bodies in the cytoplasm were often associated with other organelles, especially with plastids and mitochondria. The plastids, which were irregular or amoeboid in shape, contained numerous large lipid droplets, and occasional clusters of phytoferritin, as well as few loosely -oriented peripheral lamellae. Myelin-like configurations of membrane were frequently observed in the vacuoles, as was the association of lipid bodies with the vacuolar membrane. Most vacuoles had an irregular outline, and lipid bodies were often connected to the tonoplast of the vacuoles. The structural changes underlying developmental, particularly to senescence, processes in various hesperidium will be reported in the separate paper.
This work was conducted to investigate dietary supplementation of oyster mushroom fruiting bodies on biochemical and histological changes in hyper and normocholesterolemic rats. Six-week old female Sprague-Dawley albino rats were divided into three groups of 10 rats each. Feeding a diet containing a 5% powder of Pleurotus ostreatus fruiting bodies to hypercholesterolemic rats reduced plasma total cholesterol, triglyceride, low-density lipoprotein (LDL), total lipid, phospholipids, and LDL/high-density lipoprotein ratio by 30.18, 52.75, 59.62, 34.15, 23.89, and 50%, respectively. Feeding oyster mushrooms also significantly reduced body weight in hypercholesterolemic rats. However, it had no adverse effects on plasma albumin, total bilirubin, direct bilirubin, creatinin, blood urea nitrogen, uric acid, glucose, total protein, calcium, sodium, potassium, chloride, inorganic phosphate, magnesium, or enzyme profiles. Feeding mushroom increased total lipid and cholesterol excretion in feces. The plasma lipoprotein fraction, separated by agarose gel electrophoresis, indicated that P. ostreatus significantly reduced plasma ${\beta}$ and pre-${\beta}$-lipoprotein but increased ${\alpha}$-lipoprotein. A histological study of hepatic cells by conventional hematoxylin-eosin and oil red O staining revealed normal findings for mushroom-fed hypercholesterolemic rats. These results suggest that a 5% P. ostreatus diet supplement provided health benefits by acting on the atherogenic lipid profile in hypercholesterolemic rats.
This study was carried out to investigate the localization of lipids and lipase activity with lipid staining and cytochemical technique in endosperm cells of Panax ginseng C.A. Meyer seed. In endosperm cells of indehiscent seed, protein bodies facing the umbiliform layer are different in electron density during the various degraded processes. Gradually, protein matrix near the cell wall was lysed and electron lucent inclusions appeared on umbiliform layer. The protein body with high electron density and the spherosome with low electron density were observed in endosperm cells. As a result of lipid staining, electron density of spherosome is more intense than those of the protein matrix within the protein body in endosperm cells of indehiscent seed. Free spherical spherosomes within the umbiliform layer have a high electron density. The spherical spherosomes were more electron densed and were uniform in comparison with the cytoplasmic proteinaceous granules in endosperm cells of seed with red seed coat. The major component of spherosome was determined to be lipid. Lipase activity occurs in the spherosome and near the endosperm cell wall facing the umbiliform layer. Cytochemical reaction products of lipase were observed in the spherosome membrane and in the inner regions of spherosome. After protein bodies were digested, lipase activities were observed in free spherosomes and near the cell wall of endosperm cells. Umbiliform layer composing of fibrillized wall and digested materials of the endosperm cell showed a little lipase reaction products.
The changes of protein bodies in endosperm cells of both seeds with red seed coat and indehiscent seeds of Panax ginseng C.A. Meyer have been investigated in relation to the embryo development. In the early stage of seeds with red seed coat, spherical spherosomes were distributed in endosperm cells. Protein bodies were formed from vacuoles containing the storage protein. Cell organelles were hardly observed in the cytoplasm. In the late stage of the seed with red seed coat, the endosperm was filled with spherosomes and protein bodies. The protein bodies consisted of amorphous inclusions with high electron density or proteinaceous matrix with even electron density. In the seed of in dehiscence, the protein body in endosperm cells contained globoids and protein crystalloids. The globoid of protein body had a electron dense materials. Umbiliform layer was formed between embryo and endosperm. The deformation patterns of endosperm cell wall and the cellulose microfibril were observed in endosperm cells near the umbiliform layer. Umbiliform layer consisted of lipid body and autolyzed cell debris. The protein body of endosperm cell near the umbiliform layer showed various degenerative patterns, and so electron density of proteinaceous matrix was gradually decreased.reased.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.12
no.4
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pp.1770-1774
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2011
This paper was to characterize the transfer of diacylglycerol(DAG) from lipophorin to Manduca sexta larval fat bodies. $[^3H]$-DAG-labeled Lp($[^3H]$-DAG-Lp) was incubated with the larval fat bodies under different times and the time of DAG transfer was determined. Incubation of fat bodies with $[^3H]$-DAG-Lp resulted in accumulation of DAG and TAG in the tissue. The transfer of $[^3H]$-DAG was inhibited in the presence of suramin and unlabeled lipophorin, which would be consistent with a lipophorin receptor. The effects of suramin may be complex because it can change membrane properties when bound to the lipophorin receptor and affect the rate of DAG transfer. To investigate the lipid uptake via receptor-mediated endocytosis, we treated with endocytosis inhibitors, ammonium chloride and chloroquine. The results show that the transfer process of lipid by lipophorin and fat bodies is receptor-mediated endocytosis.
The mobilization of food reserves and ultrastructural changes in th cotyledons of germinating soybean seeds (Glycine max L. Mer. Cultivar Amsoy) and seedlings were studied by using light and transmission electron microscopy. When germinating began, the cotyledon tissues were packed with protein an lipid bodies. Mobilization of the reserves started in epidermis and vascular bundles. After three days of seedling growth, significant reductions of protein and lipid bodies were observed; concurrently, the numbers of starch grains, glyoxysoms, and mitochondria were increased. These ultrastructural changes are discussed with reference to the metabolism of the germinating soybean seeds and seedlings.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.31
no.2
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pp.351-354
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2002
The objective of this study was to analyze fatty acid composition in lipids extracted from bullfrogs (Rana catesbeiana Shaw) inhabiting in Korea. Lipid contents in bullfrog legs and bodies were less than 1% (w/w, wet basis) and seasonal variation of the lipid contents was not observed. Lipids in bullfrog legs consisted of 26~31% (w/w) saturated fatty acids, 16~24% monounsaturated fatty acids, and 30~40% polyunsaturated fatty acids. Lipids in bullfrog bodies consisted of 23~28% saturated fatty acids, 29~44% monounsaturated fatty acids, and 16~30% polyunsaturated fatty acids. The major fatty acids in lipids extracted from bullfrogs were palmitic acid, oleic acid, and linoleic acid. Lipids in leg muscles contained 3~8% eicosapentaenoic acid (EPA) and 6~10% docosahexaenoic acid (DHA). Lipids in bodies had 1~3% EPA and 1~3% DHA.
Preventive effect of red ginseng saponin on experimentally-induced hyperkeratosis was investigated by ultrastructural observation, skin weight and epidermal lipid analysis. Hexadecane increased skin weight per unit area and epidermal lipids, free fatty acids, cholesterol and triglyceride in guinea pig skin. Topical application of ginseng saponin reduced these hyperkeratotic responses regradless of the concentration and the purity of ginseng saponin. Ultrastructurally, lipids and empty space-containing multiple horny cells were piled and nuclear remnants, desmosome, desmosomal bodies, tight junction were shown in the stratum corneum of hexadecane-treated skin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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