An efficient protocol for in vitro organogenesis was achieved from callus-derived immature and mature leaf explants of Momordica charantia, a very important vegetable and medicinal plant. Calluses were induced from immature leaf explants excised from in vitro (15-day-old seedlings) mature leaf explants of vivo plants (45 days old). The explants were grown on Murashige and Skoog (MS) medium with Gamborg (B5) vitamins containing 30 g $1^{-1}$ sucrose, 2.2 g $1^{-1}$ Gelrite, and 7.7 lM naphthalene acetic acid (NAA) with 2.2 ${\mu}M$ thidiazuron (TDZ). Regeneration of adventitious shoots from callus (30-40 shoots per explant) was achieved on MS medium containing 5.5 ${\mu}M$ TDZ, 2.2 ${\mu}M$ NAA, and 3.3 ${\mu}M$ silver nitrate ($AgNO_3$). The shoots (1.0 cm length) were excised from callus and elongated in MS medium fortified with 3.5 ${\mu}M$ gibberellic acid ($GA_3$). The elongated shoots were rooted in MS medium supplemented with 4.0 ${\mu}M$ indole 3-butyric acid (IBA). Rooted plants were acclimatized in the greenhouse and subsequently established in soil with a survival rate of 90%. This protocol yielded an average of 40 plants per leaf explant with a culture period of 98 days.
Conditions for somatic embryogenesis and plant regeneration from stem tissues of Euphorbia pulcherrima were esta-blished. Explants from leaf, petiole, stem were examined for their embryogenesis on MS solid medium supplemented with plant growth hormones in combination at various concentrations. From leaf or petiole explants, callus was indu-ced well but never proceeded to the embryonic stage in our expermental conditions. From stem explants, however, multiple shoots following callus induction emerged in about 6 to 8 weeks on MS agar medium supplemented with 1.5 mg/L of benzyladenine. Upon transfer, roots were developed on hormone-free MS solid medium.
This study was investigated to establish a regeneration system of plant via adventitious bud formation from leaf explant cultures of strawberry (Fragaria ananassa Duch). Effects of plant growth regulators (2,4-D, BAP), agar sucrose and myo-inositol on adventitious bud formation were investigated. When the leaf explants were cultured on MS medium supplemented with 0.1 mg/L 2,4-D and 3 mg/L BAP, the adventitious bud formation was most promoted. The adventitious bud formation was not induced from leaf explants cultured on MS medium containing 2,4-D alone. Adventitious bud formation was enhanced to almost 3 times on medium with low level of agar concentration (0.4%) in comparison with those on the medium with high level of agar (1%), but almost of shoot was vitrificated on the medium. Therefore, the normal adventitious bud formation from leaf explants was most effective on the medium containing 0.05 mg/L 2,4-D,1 mg/L BAP, 0.8% agar, 30 g/L sucrose and 100 mg/L myo-inositol. Thus, the mass propagation of healthy strawberry could be established using leaf explants.
Mishra Ramya Ranjan;Behera Motilal;Kumar Deep Ratan;Panigrahi Jogeswar
Journal of Plant Biotechnology
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v.8
no.1
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pp.27-35
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2006
Plantlet regeneration in Asteracantha longifolia(L.) Nees (Acanthaceae), a medicinal herb has been achieved from seedling explants on basal MS medium. Three different seedling explants including node, internode and leaf segments on used. Of these three explant, leaf explants gave better response for both callus mediated organogenesis and direct multiple shoot induction. Number of explants showing differentiation of shout buds was higher on MS media supplemented with BA compared to kinetin. MS medium fortified with BA ($2.0mgl^{-1}$) and NAA ($0.5mgl^{-1}$) was found to be most suitable for both callus mediated organogenesis and elongation of shouts. The elongated shoots were successfully routed on MS medium fortified with NAA or IBA. Among them $0.1mgl^{-1}$ NAA or $0.2mgl^{-1}$ IBA provides better response for rhizogenesis. Regenerated plantlets were successfully established in soil where 85.4% or them developed into morphologically normal and fertile plants. RAPD profiling using four decamer primers confirmed the genetic uniformity of the regenerated plantlets and substantiated the efficacy and suitability of this protocol for in vitro propagation of A. longifolia.
The halophyte Leymus chinensis (Trin.) is a perennial rhizome grass (tribe Gramineae) that is widely distributed throughout China, Mongolia and Siberia. This study was conducted to investigate an optimal condition for plant regeneration from mature seeds, leaf base segments, and root segments in L. chinensis. Plant growth regulators affecting embryogenic callus induction and plant regeneration were investigated by four-factor-three-level [L9 (34)] orthogonal test in this study. The effects of explants types (mature seeds, leaf base segments and root segments), callus types, medium types were examined in this study. Wild type (WT) and Jisheng No. 1 plants (JS) were used for primary callus induction. A clear explants difference was seen during callus induction; mature seeds were considered as the preferred explants; and the highest frequency of callus induction was obtained in Medium 6 using mature seeds as explants in WT. Plant regeneration ability was evaluated by frequencies of green callus forming, shooting, rooting, and shooting with roots. Effect of α-naphthalene acetic acid (NAA) on shoot regeneration was remarkable with the highest frequency of 70.8% in WT after 2-month culture. The medium with 0.2- 0.5 mg/L NAA was found to have the highest shoot induction. All regenerated shoots were successfully rooted when transferred on half-strength Murashige and Skoog (MS) basal medium. The acclimatized plantlets were grown to mature with flowering and seeds setting in green house conditions.
A method for plant regeneration via organogenesis from Pelagonium inquinans leaf disc has been developed. Mature leaf explants were collected from field-grown plants and used for the induction of adventitious shoot regeneration on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 3% (w/v) sucrose plus plant growth regulators. Maximum shoot organogenesis, with $11.8{\pm}1.5$ shoots (98.6%) per leaf disc, was obtained with $2\;mg/l$$N^6-benzyladenine$ (BA) and $0.5\;mg/l$${\alpha}-naphthyleneacetic$ acid (NAA) in 30 days. For rooting, the in vitro proliferated and elongated shoots were excised into 1.5-2 cm in length microcutting, which were plated individually on an half-strength MS (1/2MS) medium supplemented with 2% (w/v) sucrose plus various concentrations of indole-3-butyric acid (IBA). Shoots rooted with a frequency of 100% following culture on 1/2MS medium containing $0.5\;mg/l$ IBA.
Digitalis purpurea L. is a medicinal herb and have been used to congestive heart failure, mycocardial infarction, edema, angina etc. A protocol has been developed for in vitro propagation of adventitious shoot buds directly from leaf segments of D. purpurea Leaf explants of D. purpurea directly formed shoot buds when cultured on a MS medium supplemented with $2\;mg/l$ BA and $0.1\;mg/l$ IAA for 5 weeks. Adventitious shoots were multiplied by subculturing on the $B_5$ medium and shoot elongation was developed by subculturing on the WPM medium. Root formation from the shoot regenerated was achieved on MS basal medium containing 1 mg/ IBA.
Transformation system of rolC gene, dwarf gene in Lycium chinenese Mill. established by using system. Pin-punctured leaves induced numerous adventious buds in abaxial side when cultured on 3/2 MS medium containing 2.0 mg/L zeatin. Survival rate and shoot regeneration frequency of leaf explants decreased as kanamycin sulfate level increased. Shoot buds were not regenerated on 3/2 MS medium containing 10 mg/L kanamycin sulfate and 2.0 mg/L zeaein. Of the level tested, 10 mg/L of kanamycin sulfate was optimum in selection of kanamycin sulfate resistant plant. Co-culture time of bacteria and leaf explants was affected at the frequency of shoot regeneration and survival of leaf explants. Leaf explants co-cultivated during above 48hr severely decreased survival rate and shooting rate. Best result on survival rate and shooting rate were obtained when exposed for 24 h. 80 explants of 105 leaf explants survived on 3/2 MS medium containing 2.0 mg/L zeatin and 10 mg/L kanamycin sulfate, and 15 shoots was regenerated on the same medium. To select kanamycin sulfate resistant plant, regenerate as cultured on 3/2 MS medium containing 10 mg/L kanamycin sulfate, and obtained 5 kanamycin resistant plants. Southern blot analysis conformed that the rolC gene was incorporated into the genomic DNA of kanamycin resistant plants.
The efficient system for plant regeneration from cotyledon and primary feat explants of lettuce was established. Plant regeneration efficiency was shown 91.3% from cotyledon and 85.9% from primary leaf explants of variety 'Jungtongpogi' in KN medium. Plant regeneration efficiency was also estimated with various plant regeneration media in variety' Chungchima', which was lowest plant regeneration efficient showing 35.4% from cotyledon and 30.3% from prima leaf explants in KN medium. Kl medium increased 77.9% and 80.7% of plant regeneration efficiencies from cotyledon and primary leaf explants of variety 'Jungtongpogi' were cultured on KN medium. In case of varie쇼 ‘Chungchima', efficient plant regeneration was shown when primary leaf explants were cultured on SH and KI media.
Kim, Hyun A.;Utomo, Setyo Dwi;Kwon, Suk Yoon;Min, Sung Ran;Kim, Jin Seog;Yoo, Han Sang;Choi, Pil Son
Plant Biotechnology Reports
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v.3
no.4
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pp.277-283
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2009
One of the limitations to conducting maize Agrobacterium-mediated transformation using explants of immature zygotic embryos routinely is the availability of the explants. To produce immature embryos routinely and continuously requires a well-equipped greenhouse and laborious artificial pollination. To overcome this limitation, an Agrobacterium-mediated transformation system using explants of type II embryogenic calli was developed. Once the type II embryogenic calli are produced, they can be subcultured and/or proliferated conveniently. The objectives of this study were to demonstrate a stable Agrobacterium-mediated transformation of maize using explants of type II embryonic calli and to evaluate the efficiency of the protocol in order to develop herbicide-resistant maize. The type II embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strain C58C1 carrying binary vector pTF102, and then were subsequently cultured on the following media: co-cultivation medium for 1 day, delay medium for 7 days, selection medium for $4{\times}14$ days, regeneration medium, and finally on germination medium. The T-DNA of the vector carried two cassettes (Ubi promoter-EPSPs ORF-nos and 35S promoter-bar ORF-nos). The EPSPs conferred resistance to glyphosate and bar conferred resistance to phosphinothricin. The confirmation of stable transformation and the efficiency of transformation was based on the resistance to phosphinothricin indicated by the growth of putative transgenic calli on selection medium amended with $4mg\;1^{-1}$ phosphinothricin, northern blot analysis of bar gene, and leaf painting assay for detection of bar gene-based herbicide resistance. Northern blot analysis and leaf painting assay confirmed the expression of bar transgenes in the $R_1$ generation. The average transformation efficiency was 0.60%. Based on northern blot analysis and leaf painting assay, line 31 was selected as an elite line of maize resistant to herbicide.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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