Vibrio vulnificus is an opportunistic pathogen that causes septicemia in humans. To identify the genes associated with its pathogenicity, in vivo expression technology (IVET) was used to select genes specifically expressed in a host, yet not significantly in vitro. Random lacZ-fusions in the genome of V vulnificus strain MO6-24/O were constructed using an IVET vector, pSG3, which is a suicide vector containing promoterless-aph and -lacZ as reporter genes. A total of ${\sim}18,000$ resulting library clones were then intraperitoneally injected into BALB/c mice using a colony forming unit (CFU) of $1.6{\times}10^6$. Two hours after infection, kanamycin was administered at $200{mu}g$ per gram of mouse weight. After two selection cycles, 11 genes were eventually isolated, which were expressed only in the host. Among these genes, VV20781 and VV21007 exhibiting a homology to a hemagglutinin gene and tolC, respectively, were selected based on having the highest frequency. When compared to wild-type cells, mutants with lesions in these genes showed no difference in the rate of growth rate, yet a significant decrease in cytotoxicity and the capability to form a biofilm.
.betha.-galactosidase activity of Escherichia coli cells containing operon fusion nhaA'-'lacZ was monitored to study the regulation of expression of nhaA gene under various conditions. The expression of the fusion was enhanced only by chemicals containing Na$^{+}$ or Li$^{+}$. This Na$^{+}$ or Li$^{+}$. This Na$^{+}$(Li$^{+}$)-specific enhancement of .betha.-galactosidase activity represented the increase in the rate of synthesis of .betha.-galactosidase rather than the decrease in the breakdown rate. The induction pattern was influenced by copy numbers of the gene. Induction by Na$^{+}$ or Li$^{+}$ was concentration and time dependent, reaching maximum 5-6 fold induction after 2 hours at 0.4-0.5 M for Na$^{+}$ or at 0.25-0.35 M for Li$^{+}$, Although the expression was induced at much lower concentration of Na$^{+}$ at alkaline pH values than at neutral pH in the presence of Na$^{+}$, alkaline pH itself did ot induced the expression of the fusion in the absence of Na$^{+}$. Temperature shift and growth phase of culture did not affect the level of induction.he level of induction.
The deletion of sti from the Streptomyces plasmid pIJ101 made its derivative pHZ1358 an efficient vector for gene disruption and replacement. Here, pHZ1358 was further optimized by the construction of a derivative plasmid pJTU1278, in which a cassette carrying multiple cloning sites and a lacZ selection marker were introduced for convenient plasmid construction in E. coli. In addition, the oriT region of pJTU1278 was also deleted, generating a vector (pJTU1289) that can be used specifically for PCR-targeting. The efficient usage of these vectors was demonstrated by the deletion of the gene involved in avermectin biosynthesis in S. avermitilis.
Viral and non-viral vectors have been used in the delivery of genetic materials into animal cells and tissues, with each approach having pros and cons. Non-viral vectors have many useful merits such as easy preparation, low immunity and size tolerance of a transgene when compared to those of viral vectors. Delivery specificity may be achieved by complex formation between receptor ligands and a non-viral vector. In the present study, non-viral vector systems are investigated in an effort to find a practical delivery means for gene therapy, Receptor-ligand interaction between transferrin-receptor and transferrin was utilized for efficient gene transfer into cancer cells. A plasmid vector, pcDNA3 (LacZ) was ligated with a small duplexed oligo fragment in which a Biotin- VN$^{TM}$ phosphoramidite was placed in the middle of the oligo. The plasmid vector labeled by biotin was then conjugated with biotin-labeled transferrin via streptavidin. This trimeric conjugates were delivered to a hepatoma cell line, HepG2. The delivery efficiency of the trimeric conjugate was 2-fold higher than that of cationic liposomes used for transfection of a plasmid vector. These results demonstrate that a plasmid vector can be efficiently transferred into cells by forming a trimeric complex of plasmid vector-linker-ligand.
Kim, Young-Chan;Lee, Sun;Lee, Kyung-Mi;Im, Sung-Young;Park, Yong-Geun;Baek, Hyung-Seok;Park, Kyung-Ryang;Lee, In-Soo
Journal of Life Science
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v.9
no.2
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pp.169-175
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1999
Salmonella typhimurium can encounter a wide variety of environments during its life cycle. In nature, S. typhimurium can experience and survive dramatic acid stresses that occur in diverse ecological niches ranging from pond water to phagolysosomes. These survival mechanism is aquired by the Acid Tolerance Response(ATR) in Salmonella. The ATR of S. typhimurium is a complex inducible phenomenon in which exposures to slight or moderate low pH will produce a stress response capable of protecting the organism against more severe acid challenges. ATR in Salmonella has two different systems that are called RpoS dependent and independent. We found that ATR in anaerobic was showed RpoS independent because rpoS$\Omega$AP had ATR as S. typhimurium UK1. Using the P22 MudJ(Km, lacZ) operon fusion technique and a lethal selection procedure combining low pH(pH4.5) and sodium acetate(10mM, pH4.5), we isolated LF487 aatA::MudJ which showed acid sensitive in anaerobic condition. aatA locus was determined at 12 min on Salmonella Genetic Map. The survival rate of aatA mutant was showed significantly diminished at pH4.3 than virulent wild type Salmonella in anaerobic condition(5% $CO_2$, 5% H$_2$, 90% $N_2$). Therefore isolated gene was confirmed important gene for anaerobic ATR system.
Integrase MJ1 from the bacteriophage ${\Phi}FC1$ carries out recombination between two DNA sequences (the phage attachment site, attP and the bacterial attachment site, attB) in NIH3T3 mouse cells. In this study, the integration vector containing attP, attB and the integrase gene MJ, was constructed. The integration mediated by integrase MJ1 in Escherichia coli led to excision of LacZ. Therefore, the frequency of integration was measured by the counting of the white colony, which is detectable on X-Gal plates. The extrachromosomal integration in NIH3T3 mouse cells was monitored by the expression of the green fluorescent protein (GFP) as a reporter. To demonstrate integration mediated integrase MJ1 in NIH3T3 cells, vectors containing attP and attB were co-transfected into NIH3T3 cells. The integration was confirmed by fluorescent microscopy. The expression of GFP was induced in NIH3T3 cells expressing MJ1 without accessory factors. By contrast, the excision mediated by the MJ1 between attR and attL had no effect on the expression of GFP. These results suggest that integrase MJ1 may enable a variety of genomic modifications for research and therapeutic purposes in higher living cells.
Kim Do-Yeon;Cha Choon-Hwan;Oh Wan-Seok;Yoon Young-Jun;Kim Jung-Wan
Journal of Microbiology
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v.42
no.4
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pp.319-327
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2004
An additional amylase, besides the typical $\alpha-amylase,$ was detected for the first time in the cytoplasm of B. subtilis SUH4-2, an isolate from Korean soil. The corresponding gene (bbmA) encoded a maltogenic amylase (MAase) and its sequence was almost identical to the yvdF gene of B. subtilis 168, whose function was unknown. Southern blot analysis using bbmA as the probe indicated that this gene was ubiquitous among various B. subtilis strains. In an effort to understand the physiological function of the bbmA gene in B. subtilis, the expression pattern of the gene was monitored by measuring the $\beta-galactosidase$ activity produced from the bbmA promoter fused to the amino terminus of the lacZ structural gene, which was then integrated into the amyE locus on the B. subtilis 168 chromosome. The promoter was induced during the mid-log phase and fully expressed at the early stationary phase in defined media containing $\beta--cyclodextrin\;(\beta-CD),$ maltose, or starch. On the other hand, it was kept repressed in the presence of glucose, fructose, sucrose, or glycerol, suggesting that catabolite repression might be involved in the expression of the gene. Production of the $\beta-CD$ hydrolyzing activity was impaired by the spo0A mutation in B. subtilis 168, indicating the involvement of an additional regulatory system exerting control on the promoter. Inactivation of yvdF resulted in a significant decrease of the $\beta-CD$ hydrolyzing activity, if not all. This result implied the presence of an additional enzyme(s) that is capable of hydrolyzing $\beta-CD$ in B. subtilis 168. Based on the results, MAase encoded by bbmA is likely to be involved in maltose and $\beta-CD$ utilization when other sugars, which are readily usable as an energy source, are not available during the stationary phase.
Constructions of a transfer vector and a recombinant baculovirus using the thymidine kinase gene of the Herpes simplex virus type 1 strain F (HSV -1) were carried out. Newly cloned transfer vector, pHcgXIIIB, was constructed by insertion of the glycoprotein gX gene signal peptide sequence of Pseudorabies virus into the baculovirus vector pHcEV-IV. The gX sequence was inserted just downstream from the promoter for the polyhedrin gene of the Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus (HcNPV). HSV-1 thymidine kinase(tk) gene (1.131 kb) was used as a candidate gene for transferring into the baculovirus expression system. The tk gene was inserted into a BamHI site downstream from the gX sequence-promoter for the polyhedrin gene in the pHcgXIIIB transfer vector and was transferred into the infectious lacZ-HcNPV expression vector. Recombinant virus was isolated and was named gX-TK-HcNPV. The recombinant virus produced a 45 kDa gX-TK fusion protein in Spodoptera frugiperda cells, which was confirmed by Western blot analysis. Microscopic examination of gX-TK-HcNPV-infected cells revealed normal multiplication. Fluorescent antibody staining indicated that the gX-TK fusion protein was present in the cytoplasm. These results indicated that the transfer vector successfully transferred the gX-tk gene into the baculovirus expression system.
A novel gene, designated mgt-6, containing four splicing variants, was isolated from a gene trap clone library of C3H/10T1/2 cells transfected with retroviral promoterless gene-trap vector, ROSAFARY. The transcript variants were differentially expressed in murine tissues and cell lines and differentially responded to diverse stimuli including TGF-${\beta}1$ and mitogen-activated protein kinase (MAPK) inhibitors. The mgt-6 gene encoded a protein of 37 or 11 amino acid residuals with cytoplasmic distribution. However, when C3H/10T1/2 cells were treated with 5-azacytidine, the protein translocated into cell nucleus as indicated by fused LacZ or C-terminally tagged EGFP. Our preliminary results suggest that further study on the role of mgt-6 gene in cell transformation and differentiation may be of significance.
In Escherichia coli, CRP forms a complex with cAMP and acts as a transcriptional regulator of many genes, including sugar metabolism operons. The E. coli MK2001, which is introduced the altered crp, is functional in the expression of lac, ara and man, in the absence of cAMP. However, the expression of mal gene is fully activated by the addition of cAMP or cGMP. The object of the study is cloning of the sfs (sugar fermentation stimulation) genes, which was involved in regulation of mal gene expression with the altered crp gene, and structural analysis and characterization of the genes at the molecular level. We have cloned 5 different E. coli genes which stimulate the maltose metabolism in a crp, cya::km (MK2001) background. Newly identified genes were designated as sfs. One of the sfs genes (pPC1), located at the 53.2 min map position on the E. coli chromosome, was further analyzed. Expression of the genes, which is involved in maltose metabolism, malQ (amylomaltase), was increased to 5.8-fold in the presence of a plasmid, pAP5, containing the subcloned sfs4 gene. The nucleotide seguence of a common 2,126 bp segment of the pPCM1 was determined and two open reading frames (ORF1 and ORF2) were detected. The ORF1 encodes the sfs4 gene and ORF2 encodes a truncated protein. Potential CRP binding site is located in the upstream of the putative promoter in the regulatory region. Expression of the cloned sfs4 gene was positively regulated by the cAMP-CRP complex.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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