아세토인(acetoin)은 식품과 화학산업에서 플랫폼 물질로 이용되며 산업적으로 다양한 응용이 가능한 물질이다. 본 연구에서는 대사공학(metabolic engineering)을 이용하여 아세토인의 생산량이 증가한 재조합 Klebsiella pneumoniae를 구축하였다. 우선 2,3-부탄디올(2,3-butanediol)생산을 위해 제작되었던 재조합 K. pneumoniae (KMK-05)에서 두 가지 2,3-butanediol dehydrogenase (budC, dhaD)를 유전체에서 제거하여 아세토인 생산량을 늘리고, 전사인자 중 하나인 AcoK를 제거하여 아세토인을 분해하는 효소의 발현량을 줄였다. 그리고 NADH oxidase를 발현시켜 세포 내 산화 환원 균형(redox balance)을 맞춰 대사흐름을 개선하였다. 이렇게 대사공학을 통해 구축된 재조합 Klebsiella pneumoniae(KJW-03-nox)로 아세토인 생산량과 수율을 높였고, 36시간 동안의 유가식 배양을 진행하여 51 g/L의 아세토인 농도와 최대 생산성 2.6 g/L/h을 달성하였다.
Mac-2BP is a ligand of the galectin family that has been suggested to affect tumor proliferation and metastasis formation. We assessed Mac-2BP expression at the transcriptional and translational levels to evaluate nerve growth factor (NGF)-induced Mac-2BP expression. A time kinetic analysis using reverse transcription-polymerase chain reaction showed that NGF-induced Mac-2BP transcript levels were 4-5 times higher than in controls. Mac-2BP enzyme-linked immunosorbent assay and immuno-fluorescence staining showed a 2-3-fold increase in intracellular and secreted Mac-2BP as a result of NGF stimulation. This increase was regulated by Akt activation and NF-${\kappa}B$ binding. p65 and p50-NF-${\kappa}B$ are major transcriptional factors in the Mac-2BP promoter region, and were shown to be regulated in accordance with the Akt activation states. Collectively, these results suggest that NGF induces Mac-2BP expression via the PI3K/Akt/NF-${\kappa}B$ pathway.
Xylitol을 당수용체로하여 당알콜 올리고당 gluosyl-xylitol을 생산하기 위하여 갭술고정화 전세포 CGTase를 제조하고자 하였다. CGTase를 생산하기 위하여 Bacillus macerans를 배양하는 경우 organic form의 질소원을 사용하는 경우 inorganic form의 질소원을 사용하는 경우보다 더 많은 CGTase를 생산하였고 배양도중 탄소원인 starch가 분해되는 동안 CGTase가 생성되었다. B. macerans에 의하여 생산된 CGTase는 80% 이상이 extracellular cnzyme 이며, intracellular enzyme은 20% 이내이었다. E. coh, C. glutamicum, S. cerevisiae 등과 달리 캡슐내부에 B. macerans를 접종하고 캡슐내부에서 고농도로 배양할 수 없었다. 배양액속에 존재하는 CGTase는 다른 이온성 물질들로 인하여 활성탄, Ambolite, Sephadex 등의 흡착제에 흡착시킬 수 없었다. 미생물을 배양한 배양책 전체를 10배로 농축하여 캡슐내에 고정화함으로써 캡슐고정화 전세포 CGTase를 제조할 수 있었다. 농축배양액을 이요하여 제조된 캡슐고정화 전세포 CGTase는 hydrolysis, intermolecular transglycosylation을 수행하였으며, xylitol을 당수용체로 하고 dextrin을 당공여체ㅗ 하여 glucosyl-xylitol을 생산하였다.
Ewe, Joo-Ann;Wan-Abdullah, Wan-Nadiah;Alias, Abdul Karim;Liong, Min-Tze
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권7호
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pp.947-959
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2012
This study was aimed at an evaluation of the potential inheritance of electroporation effects on Lactobacillus fermentum BT 8219 through to three subsequent subcultures, based on their growth, isoflavone bioconversion activities, and probiotic properties, in biotin-supplemented soymilk. Electroporation was seen to cause cell death immediately after treatment, followed by higher growth than the control during fermentation in biotin-soymilk (P<0.05). This was associated with enhanced intracellular and extracellular ${\beta}$-glucosidase specific activity, leading to increased bioconversion of isoflavone glucosides to aglycones (P<0.05). The growing characteristics, enzyme, and isoflavone bioconversion activities of the first, second, and third subcultures of treated cells in biotin-soymilk were similar to the control (P>0.05). Electroporation affected the probiotic properties of parent L. fermentum BT 8219, by reducing its tolerance towards acid (pH 2) and bile, lowering its inhibitory activities against selected pathogens, and reducing its ability for adhesion, when compared with the control (P<0.05). The first, second, and third subcultures of the treated cells showed comparable traits with that of the control (P>0.05), with the exception of their bile tolerance ability, which was inherited to the treated cells of the first and second subcultures (P<0.05). Our results suggest that electroporation could be used to increase the bioactivity of biotin-soymilk via fermentation with probiotic L. fermentum BT 8219, with a view towards the development of functional foods.
Chlamydia trachomatis has now shown that this interesting intracellular parasite is a cause of nongonococcal urethritis, infantile pneumonia, pelvic inflammatory disease and epididymitis, in addition to lymphogranuloma venerum and inclusion conjunctivitis. There are several diagnostic methods for C. trachomatis, but the method using monoclonal antibody is the most sensitive and specific. The hybride cell were prepared by fusion of myeloma cell($P_3X_{63}\;Ag_8{\cdot}V_{653}$) of mouse and lymphocyte of mouse(BALB/c) that were immunized with formalin killed C. trachomatis serotype D. The cell mixtures after fusion were dispensed into 640 wells of the 96 well culture plates and continuously cultured in HAT medium for 2 weeks. The supernatants of culture media in 83(13%) wells were reacted with C. trachomatis, which were determined by enzyme-linked immunosorbent assay in 96 well microplate. The clones that secreted antibody to C. trachomatis were cloned by limiting dilution. Only six monoclones secreted antibody to C. trachomatis. The antibody titer of ascitic fluid that collected from same BALB/c mice bearing hybridoma cells was above 1:100,000. These monoclonal antibodies that were IgG reacted with elementary and reticulate bodies of all serotypes(Ba, D, E, F, G, H, J and LGV type-I) using ELISA and indirect immunofluorescence stain, but there were no cross reaction with other bacteria(coagulase negative Staphylococcus, Proteus and E. coli). We concluded these six monoclones secreted the same monoclonal antibody to C. trachomatis. The sensitivity and specificity of the monoclonal antibody compared with Microtrak(confirmatory test of C. trachomatis, Syva) was 100%, respectively.
Glutamate toxicity-mediated mitochondrial dysfunction and neuronal cell death are involved in the pathogenesis of several neurodegenerative diseases as well as acute brain ischemia/stroke. In this study, we investigated the neuroprotective mechanism of dieckol (DEK), one of the phlorotannins isolated from the marine brown alga Ecklonia cava, against glutamate toxicity. Primary cortical neurons ($100{\mu}M$, 24 h) and HT22 neurons (5 mM, 12 h) were stimulated with glutamate to induce glutamate toxic condition. The results demonstrated that DEK treatment significantly increased cell viability in a dose-dependent manner ($1-50{\mu}M$) and recovered morphological deterioration in glutamate-stimulated neurons. In addition, DEK strongly attenuated intracellular reactive oxygen species (ROS) levels, mitochondrial overload of $Ca^{2+}$ and ROS, mitochondrial membrane potential (${\Delta}{\Psi}_m$) disruption, adenine triphosphate depletion. DEK showed free radical scavenging activity in the cell-free system. Furthermore, DEK enhanced protein expression of heme oxygenase-1 (HO-1), an important anti-oxidant enzyme, via the nuclear translocation of nuclear factor-like 2 (Nrf2). Taken together, we conclude that DEK exerts neuroprotective activities against glutamate toxicity through its direct free radical scavenging property and the Nrf-2/HO-1 pathway activation.
Vu, Thom Thi;Dieterich, Peter;Vu, Thu Thi;Deussen, Andreas
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제23권5호
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pp.345-356
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2019
Docosahexaenoic acid (DHA), an omega-3-fatty acid, modulates multiple cellular functions. In this study, we addressed the effects of DHA on human umbilical vein endothelial cell calcium transient and endothelial nitric oxide synthase (eNOS) phosphorylation under control and adenosine triphosphate (ATP, $100{\mu}M$) stimulated conditions. Cells were treated for 48 h with DHA concentrations from 3 to $50{\mu}M$. Calcium transient was measured using the fluorescent dye Fura-2-AM and eNOS phosphorylation was addressed by western blot. DHA dose-dependently reduced the ATP stimulated $Ca^{2+}$-transient. This effect was preserved in the presence of BAPTA (10 and $20{\mu}M$) which chelated the intracellular calcium, but eliminated after withdrawal of extracellular calcium, application of 2-aminoethoxy-diphenylborane ($75{\mu}M$) to inhibit store-operated calcium channel or thapsigargin ($2{\mu}M$) to delete calcium store. In addition, DHA ($12{\mu}M$) increased ser1177/thr495 phosphorylation of eNOS under baseline conditions but had no significant effect on this ratio under conditions of ATP stimulation. In conclusion, DHA dose-dependently inhibited the ATP-induced calcium transient, probably via store-operated calcium channels. Furthermore, DHA changed eNOS phosphorylation suggesting activation of the enzyme. Hence, DHA may shift the regulation of eNOS away from a $Ca^{2+}$ activated mode to a preferentially controlled phosphorylation mode.
PURPOSE: This study was to investigate the Glycolysis mediated sarcoplasmic reticulum (SR) $Ca^{2+}$ signal regulates mitochondria $Ca^{2+}$ during skeletal muscle contraction by using glycolysis inhibitor. METHODS: To examine the effect of Glycolysis inhibitor on SR and mitochondria $Ca^{2+}$ content, we used skeletal muscle fiber from gastrocnemius muscle. 2-deoxy glucose and 3-bromo pyruvate used as glycolysis inhibitor, it applied to electrically stimulated muscle contraction experiment. Intracellular $Ca^{2+}$ content, SR, mitochondria $Ca^{2+}$ level and mitochondria membrane potential (MMP) was detected by confocal microscope. Mitochondrial energy metabolism related enzyme, citric acid synthase activity also examined for mitochondrial function during the muscle contraction. RESULTS: Treatment of 2-DG and 3BP decreased the muscle contraction induced SR $Ca^{2+}$ increase however the mitochondria $Ca^{2+}$ level was increased by treatment of inhibitors and showed and overloading as compared with the control group. Glycolysis inhibitor and thapsigargin treatment showed a significant decrease in MPP of skeletal muscle cells compared to the control group. CS activity significantly decreased after pretreatment of glycolysis inhibitor during skeletal muscle contraction. These results suggest that regulation of mitochondrial $Ca^{2+}$ levels by glycolysis is an important factor in mitochondrial energy production during skeletal muscle contraction CONCLUSIONS: These results suggest that mitochondria $Ca^{2+}$ level can be regulated by SR $Ca^{2+}$ level and glycolytic regulation of intraocular $Ca^{2+}$ signal play pivotal role in regulation of mitochondria energy metabolism during the muscle contraction.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Patients with chronic kidney disease (CKD) have a high concentration of uremic toxins in their blood and often experience muscle atrophy. Indoxyl sulfate (IS) is a uremic toxin produced by tryptophan metabolism. Although an elevated IS level may induce muscle dysfunction, the effect of IS on physiological concentration has not been elucidated. Additionally, the effects of ursolic acid (UA) on muscle hypertrophy have been reported in healthy models; however, it is unclear whether UA ameliorates muscle dysfunction associated with chronic diseases, such as CKD. Thus, this study aimed to investigate whether UA can improve the IS-induced impairment of mitochondrial biogenesis. MATERIALS/METHODS: C2C12 cells were incubated with or without IS (0.1 mM) and UA (1 or 2 μM) to elucidate the physiological effect of UA on CKD-related mitochondrial dysfunction and its related mechanisms using real-time reverse transcription-polymerase chain reaction, western blotting and enzyme-linked immunosorbent assay. RESULTS: IS suppressed the expression of differentiation marker genes without decreasing cell viability. IS decreased the mitochondrial DNA copy number and ATP levels by downregulating the genes pertaining to mitochondrial biogenesis (Ppargc1a, Nrf1, Tfam, Sirt1, and Mef2c), fusion (Mfn1 and Mfn2), oxidative phosphorylation (Cycs and Atp5b), and fatty acid oxidation (Pdk4, Acadm, Cpt1b, and Cd36). Furthermore, IS increased the intracellular mRNA and secretory protein levels of interleukin (IL)-6. Finally, UA ameliorated the IS-induced impairment in C2C12 cells. CONCLUSIONS: Our results indicated that UA improves the IS-induced impairment of mitochondrial biogenesis by affecting differentiation, ATP levels, and IL-6 secretion in C2C12 cells. Therefore, UA could be a novel therapeutic agent for CKD-induced muscle dysfunction.
Jaewoo Hong;Hyunjhung Jhun;Yeo-Ok Choi;Afeisha S. Taitt;Suyoung Bae;Youngmin Lee;Chang-seon Song;Su Cheong Yeom;Soohyun Kim
IMMUNE NETWORK
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제21권1호
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pp.8.1-8.17
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2021
The global crisis caused by the coronavirus disease 2019 (COVID-19) led to the most significant economic loss and human deaths after World War II. The pathogen causing this disease is a novel virus called the severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARSCoV-2). As of December 2020, there have been 80.2 million confirmed patients, and the mortality rate is known as 2.16% globally. A strategy to protect a host from SARS-CoV-2 is by suppressing intracellular viral replication or preventing viral entry. We focused on the spike glycoprotein that is responsible for the entry of SARS-CoV-2 into the host cell. Recently, the US Food and Drug Administration/EU Medicines Agency authorized a vaccine and antibody to treat COVID-19 patients by emergency use approval in the absence of long-term clinical trials. Both commercial and academic efforts to develop preventive and therapeutic agents continue all over the world. In this review, we present a perspective on current reports about the spike glycoprotein of SARS-CoV-2 as a therapeutic target.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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