Insect cells such as Spodoptera frugiperda Clone 9 (Sf9) cells are widely chosen as the host for heterologous expression of a mammalian sugar transport protein using the baculovirus expression system. Characterization of the expressed protein is expected to include assay of its function, including its ability to transport sugars and to bind inhibitory ligands such as cytochalasin B. It is therefore very important first to establish the transport characteristics and other properties of the endogenous sugar transport proteins of the host insect cells. However, very little is known of the transport characteristics of Sf9 cells, although their ability to grow on TC-100 medium strongly suggested the presence of endogenous glucose transport system. In order to investigate the substrate and inhibitor recognition properties of the Sf9 cell transporter, the ability of pentoses to inhibit 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) transport was investigated by measuring inhibition constants $(K_i)$. To determine the time period over which of sugar into the Sf cells was linear, the uptake of 2dGlc 0.1mM extracellular concentration was measured over periods ranging from 30 seconds to 30 minutes. The uptake was linear for at least 2 minutes at the concentration, implying that uptake made over a 1 minute time course would reflect initial rates of the sugar uptake. The data have also revealed the existence of a saturable transport system for pentose uptake by the insect cells. The transport was inhibited by D-xylose and D-ribose, although not as effective as hexoses. However, L-xylose had a little effect on 2dGlc transport in the Sf9 cells, indicating that the transport is stereoselective. Unlike the human erythrocyte-type glucose transport system, D-ribose had a somewhat greater apparent affinity for the Sf9 cell transporter than D-xylose. It is therefore concluded that Sf9 cells contain an endogenous sugar transport activity that in some aspects resembled the human erythrocyte-type counterpart, although the Sf9 and human transport systems do differ in their affinity for cytochalasin B.
Kamidi, Rahul;HaeYong, Kweon;Hun-bok, Kim;Ji Hae, Lee
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제45권2호
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pp.99-107
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2022
Silkworm pupal extracts (SPE) were prepared in different solvents (water, 30%, 50%, 70%, and 100% ethanol) and their anti-inflammatory effects were evaluated in the RAW264.7 cell line. The SPE composition was initially evaluated by determining the protein content and performing Fourier transform infrared (FTIR) analysis. The protein content of the different SPE ranged from 6.75-130.93 mg/g of extract. FTIR analysis exhibited distinguishable absorption peaks among the extracts and indicated the presence of lipids, proteins, carbohydrates, and nucleic acid moieties. The levels of released nitric oxide (NO) and interleukin-6 (IL-6) expression in lipopolysaccharide (LPS)-induced RAW264.7 cells were only attenuated by 100% ethanolic SPE to 19.44% and 16.77%, respectively. The other solvent extracts were ineffective. Hence, further studies were conducted with 100% ethanolic SPE from three distinct stages of male and female silkworm pupae belonging to four silkworm varieties (Baegokjam; B, GoldenSilk; G, Juhwangjam; J, and YeonNokjam; Y). The best reduction in NO release and interleukin-1β (IL-1β) expression levels was achieved by the SPE of early female pupae belonging to the Baegokjam variety (32.72%) and those of early female pupae belonging to the Baegokjam and GoldenSilk (59.93%) varieties, respectively. The best reduction in IL-6 expression by 49.70% was achieved by SPE from female pupae of the mid-pupal stage belonging to the Baegokjam variety.
The Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) glycoprotein B (gB) gene in the pHLA-21 plasmid was inserted into a baculovirus (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector (lacZ-HcNPV) to construct a recombinant virus gB-HcNPV expressing gB. Spodoptera frugiperda cells infected with this recombinant virus synthesized and processed gB of approximately 120 kDa, which cross-reacted with the monoclonal antibody to gB. The recombinant gB was identified on the membrane of the insect cells using an immunofluorescence assay. Antibodies to this recombinant raised in mice recognize the viral gB and neutralized the infectivity of the HSV-1 in vitro. These results show that the gB gene has the potential to be expressed in insect cells. They also demonstrate that it is possible to produce a mature protein by gene transfer in eukaryotic cells, and indicate the utility of the lacZ-HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins. Furthermore, the neutralizing antibodies would appear to protect mice against HSV. Accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
Human thrombopoietin (hTPO) was expressed to high levels in insect cells using the baculovirus expression system. Full-length hTPO cDNA containing a native signal peptide sequence was amplified by PCR from a human fetal liver cDNA library and cloned into the Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) expression vector. Immunoblot analysis with antiserum against hTPO indicated that an approximately 55 kDa protein was produced in recombinant AcNPV infected insect cells. Recombinant hTPO was produced 4-fold higher in Trichoplusia ni (Tn5) cells than in Spodoptera frugiperda (Sf9) cells. with most of the hTPO produced in Tn5 cells secreted into the culture medium. Addition of tunicamycin in the culture medium resulted in the reduction of the size of hTPO to 35-38 kDa, and most of the protein remained within the cell. These results suggest that N-glycosylation of hTPO is required for the secretion of the protein into the culture medium in insect cells. hTPO produced in insect cells induced proliferation and maturation of megakaryocyte progenitors, indicating that it is in a biologically active form.
Rahul, Kamidi;Kweon, HaeYong;Kim, Hyun-Bok;Lee, Ji Hae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제45권1호
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pp.1-11
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2022
Silkworm pupae, a by-product of the silk industry are known to be valuable resource of nutrients for humans as well as animals besides encompassing diverse bioactive constituents. However, there is a paucity of knowledge on their role in amelioration of oxidative stress and anti-skin aging properties. In the present study, we evaluated the inhibitory effect of aqueous as well as ethanolic (30% and 70%) extracts from distinct stages of male and female silkworm pupae belonging to two silkworm varieties on skin aging-related enzymes. The activities of collagenase, elastase and tyrosinase were effectively inhibited by 70% ethanolic silkworm pupal extracts (SPE), followed by 30% with aqueous extracts exhibiting meager inhibitory potential. SPE were also investigated for their antioxidant activity in oxidative-stressed murine fibroblasts (L929). The intracellular ROS and lipid peroxidation induced by tert-butyl hydroperoxide (t-BHP) in fibroblasts was better attenuated by pre treatment with ethanolic (30%) and aqueous extracts, respectively. The safety of the extracts was determined by studying their effect on fibroblast cell viability and it was found that none of the extracts were cytotoxic. Our findings indicate the potential utility of SPE as anti-aging components in cosmeceuticals.
The present study investigated the feasibility of using the ethanolic extract of Hermetia illucens larvae (HIE) as a whitening improvement material. In cell viability assays using B16F1 melanoma cells, no cytotoxicity was recorded up to 200 ㎍·mL-1 of HIE. Moreover, while tyrosinase inhibitory activity increased, melanin content decreased in a dose-dependent manner, indicating that HIE likely inhibited tyrosine-induced intracellular melanin biosynthesis in B16F1 melanoma cells. Therefore, HIE is expected to serve as a potent whitening improvement material.
This research was performed to screen the cytotoxic activities of some pharmaceutical insect relatives. Cytotoxic activities of total extract and fractions of hexane, ethyl acetate, methanol, water and boiling water were extracted from four pharmaceutical insect relatives: the Chinese gall, the cicada slough, the hornet nest and the batryticated silkworm. These extracts were investigated against the cancer cell lines of L1210, P388 and SNU-1 in vitro tests. Results showed that, ED, , against the cancer cell lines of L1210, P388 and SNU-1 were 0.55, 0.50, and $0.83{\mu}g/ml$ in the ethyl acetate fraction from the Chinese gall; 1.07, 2.19, and $2.24{\mu}g/ml$in the ethyl acetate fraction, 1.51, 1.26, and $1.45{\mu}g/ml$ in the water fraction and 1.48, 2.29, and $1.29{\mu}g/ml$in the boiling water fraction from the cicada slough; 3.31, 2.00, and $6.61\mug/ml$ in the water fraction from the hornet nest and 13.80, 19.95, and $31.62{\mu}g/ml$in the hexane fraction and 33.88, 21.88, and $25.12{\mu}g/ml$in the ethyl acetate fraction from the batryticated silkworm, respectively. All of the fractions mentioned above showed high cytotoxic activities and could be suggested for further studies in vivo tests.
유전자 재조합 단백질 생산을 위한 곤충세포- 배쿨로바이러스 시스템에 있어서, 바이러스에 감염시 키는 시기가 늦을수록 재조합 단백질의 발현이 낮게 나타났다. 이것은 높은 세포농도일수록 단위세포당 낮은 발현율을 의미하므로 재조합 단백질 생산을 위 해 감염시기에 대한 최적화의 필요성을 보여주며, 재조합 단백질의 최대 생산생을 위한 최적 감염시기 의 존재를 실험적으로 업증하였다. 또한 배지에 5% 누에 체액을 보강함으로써 발현율이 증가하였고, 이 것은 누에 체액 첨가로 인해 세포내 바이러스 숫자가 증가하고 감염 후 세포의 생존성이 오래 유지되 는 것에 기 인하는 것으로 생각된다. 고농도 세포배 양을 위해 yeastolate를 첨가하고, 재조합 단백질 발 헌을 위해 누에 체액을 첨가함으로써 ${\beta}$-galactosidase의 생산이 10배 정도 증가하였다.
곤충으로부터 유용 효소생산 미생물의 탐색 과정에서 우수한 lipase 생산균주 9종을 분리하고 lipase 생산능을 조사하였다 16S rDNA 분석 결과 분리된 균주는 주로 Serratia 속, Pseudomonas 속, Burkholderia 속에 속하는 그람음성균들로 분석되었다. 그 중 lipase 생산능이 가장 우수한 균주를 선별하고 16S rDNA 서열분석 및 생리 생화학적 분석 결과를 바탕으로 Burkholderia sp. HY-10으로 동정하였으며 균주의 lipase생산특성을 조사하였다. 이 균주는 톱하늘소의 장으로부터 분리되었으며 olive oil을 탄소원으로 포함하는 배지에서 배양하였을 때 세포밀도에 의존하여 lipase의 생산이 유도되는 특성을 나타내었고 0.5%의 yeast extract와 0.5%의 olive oil이 포함된 M9배지에서 $30^{\circ}C$, 36-42시간의 배양에 의해 lipase의 생산이 최대치에 도달하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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