In canine, oocytes are ovulated at the GV (germinal vesicle) stage and they have to fulfill maturation phase before reaching metaphase II stage. The efficiency of in vitro maturation is still very low. Therefore, the aim of this study was to investigate the effect of in vitro maturation on nuclear changes of immature canine oocytes recovered from different reproductive stages ovaries and different culture conditions. The oocytes were cultured in TCM-199 with supplement at 5% $CO_2$ and $38.5^{\circ}C$ for 72 h. The nuclear maturation of canine oocytes was evaluated with Hoechst 33342 stain under fluorescence microscope (Fig. 1). The results of this study detected differences in in vitro maturation rate between oocytes recovered from follicle status and non-follicle status ovaries. However, these differences were not significant as indicated in Table 1 and Fig. 2. In regard to the effect of culture condition with supplements, we did not found significant differences compared with control group (Table 2, Table 3). One of the reasons for this data could be the conditions that ovaries were exposed during slaughtering process or the long distant transportation of the ovaries. Although these data have not shown clearly significant differences results compared with control, furthermore the different reproductive status ovaries was beneficial for maturation of oocytes in vitro and can be a basic part of knowledge to improve in vitro maturation of canine oocytes.
In vitro culture of murine embryos is an important step for in vitro production systems including in vitro fertilization and generations of genetically engineered mice. M16 is widely used commercialized culture media for the murine embryos. Compared to other media such as potassium simplex optimization medium, commercial M16 (Sigma) media lacks of amino acid, glutamine and antibiotics. In the present study, we optimized M16 based embryo culture system using commercialized antibiotics-glutamine or amino acids supplements. In vivo derived murine zygote were M16 media were supplemented with commercial Penicillin-Streptomycin-Glutamine solution (PSG; Gibco) or MEM Non-Essential Amino Acids solution (NEAA; Gibco) as experimental design. Addition of PSG did not improved cleavage and blastocyst rates. On the other hand, cleavage rate is not different between control and NEAA treated group, however, blastocyst formation is significantly (P<0.05) improved in NEAA treated group. Developmental competence between PSG and NEAA treated groups were also compared. Between two groups, cleavage rate was similar. However, blastocyst formation rate is significantly improved in NEAA treated group. Taken together, beneficial effect of NEAA on murine embryos development was confirmed. Effect of antibiotics and glutamine addition to M16 media is still not clear in the study.
In vitro maturation of denuded porcine immature oocytes can be enhanced by co-incubation with spermatozoa even before fertilization. This study was to determine whether the addition of spermatozoa into the culture medium could influence the nuclear maturation of porcine cumulus-enclosed germinal vesicle (GV) oocytes. Cumulus-oocyte complexes (COCs) were collected from follicles of 3- to 5-mm diameter. Porcine COCs were cultured in tissue culture medium containing spermatozoa. After 48 h culture, oocytes were examined for evidence of GV breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II. The proportion of oocytes reaching at metaphase II was significantly (P < 0.05) increased in the oocytes cultured in media containing spermatozoa compared to those in media without spermatozoa (52.3% vs 12.5%). No difference in the percentage of metaphase II was observed among the different periods of spermatozoa exposure and among the spermatozoa from different species. The proportion of oocytes reaching metaphase II was significantly different between high and low concentrations of spermatozoa. The present study suggests that manunalian spermatozoa contain a substance(s) that improves nuclear in vitro maturation of porcine cumulus-enclosed GV oocytes. Enhancing effect of spermatozoa for in vitro maturation of oocytes is a highly dose-dependent.
Cho, Sangbuem;Kim, Dong Hyun;Hwang, Il Hwan;Choi, Nag-Jin
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.33
no.3
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pp.206-212
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2013
This study was conducted to investigate the effect of biological membrane transfer modifier, lysophospholipd (LPLs) on the parameters from in vitro rumen simulated fermentation. Commercially available LPLs product (Lipidol$^{TM}$) was supplemented into experimental diets which consisted of orchard grass and concentrate diet (60:40) in different levels (0.1%, 0.3% and 0.5%). Then in vitro rumen simulated fermentation was performed. Although, a declining trend of pH was found in treatments, all pH values were detected in a range relevant to normal rumen fermentation. Gas production, ammonia nitrogen and total VFA production were greatly influenced by the supplementation of LPLs. All parameters were increased along with increased levels of LPLs in diet. As a result, 0.1% of Lipidol$^{TM}$ is recommended based on the determined in vitro rumen fermentative parameters in this study.
In the present study, effects of concentration of cryoprotectant solutions on the nuclear maturation of vitrifiedthawed bovine oocytes were examined. Also, the developmental capacity of vitrified-thawed immature oocytes following ICSI was investigated. Oocytes were cultured in TCM-199 medium supplemented with 5% FBS at $38^{\circ}$C in 5% $CO_2$ and air. The in vitro maturation rate of vitrified oocytes was 24.5 ${\pm}$ 4.2%. The in vitro maturation rate of vitrified oocytes was lower than that of the control (72.0 ${\pm}$ 3.5%, p<0.05). The in vitro maturation rate of vitrified${\sim}$thawed oocytes incubated in TCM-199 medium supplemented with 1.0${\sim}$5.0 ug CB were 26.7 ${\pm}$ 3.2%, 35.7 ${\pm}$ 3.2%, 54.0 ${\pm}$ 3.0%, 42.5 ${\pm}$ 3.6%, respectively. The in vitro maturation rate (57.0 ${\pm}$ 3.0%) of the vitrified-thawed oocytes treated with 3.0 ${\mu}$g CB for 20 min was the highest of all vitrification groups, although the maturation rate were significantly (p<0.05) lower than those of fresh oocytes. The in vitro maturation rates of the vitrified-thawed (with EDS and EDT) oocytes were 53.8 ${\pm}$ 3.4%, 51.1 ${\pm}$ 3.5%, respectively. This results were lower than the control group (72.0 ${\pm}$ 3.0%). The in vitro developmental rates of the vitrified-thawed oocytes following ICSI were 28.6 ${\pm}$ 4.5%, 25.6 ${\pm}$ 4.3%, respectively. This results were lower than the control group (40.0 ${\pm}$ 4.0%).
A $2{\times}2{\times}4$ factorial study was conducted to examine the possibility of improving estimates of in vitro digestibility, using untreated (UBS) and ammonia-treated (ABS) barley straw, through homogenization of rumen fluid (RF) and by additions of urea (U) and casein (C) as N sources and Xylose + Glucose (XG) as energy sources into artificial saliva. Digestibiltiy of ABS was significantly greater than that of UBS (p < 0.001). There was a significant decrease in digestibility when additions (U, UC, UCXG) were compared with the control (p < 0.001). A 2-way interaction between RF and straw type was significant (p < 0.05) for dry matter digestibility (DMD). Homogenization of RF increased DMD of ABS (p < 0.05) whereas it decreased DMD of UBS (p > 0.05). The study showed that addition of N alone or in combination with energy sources was not better than control, rather the reverse, digestion was inhibited by a combination of U and casein (UC). It was concluded that sufficient N and branched chain fatty acids were supplied in the inoculum from sheep fed high protein grass cubes to support the growth of cellulolytic microbes during in vitro incubation. Further studies are, however, required to explore the potential of homogenization in improving the in vitro method to estimate digestibility of cereal straws.
Phthalate analogues are a plasticizer and solvent used in industry. Phthalates were classified in the category of "suspected" endocrine disruptors. The purpose of our study was to screen and elucidate the endocrine disrupting activity of seven phthalate analogues. E-screen assay was performed in MCF-7 human breast cancer cells with seven phthalate analogues. In this cell proliferation assay, benzyl butyl phthalate (BBP) and dibutyl phthalate (DBP) showed high estrogenic activity. Their relative proliferation efficiencies (RPE) were 109 and 106%, respectively. In vitro estrogen receptor (ER) binding assay, BBP, di-n-octyl phthalate (DOP) and dinonyl phthalate (DNP) showed weak relative binding affinity (RBA: 0.02%) compared to $17{\beta}-estradiol\;(E2)$ (RBA: 100%). In uterotrophic assay, E2 produced a significant increase, whereas four tested phthalate analogues had potential estrogenic effects in vitro did not increased in uterus weight in immature rats. From these results, we demonstrated that phthalate analogues exhibit weak estrogenic activity in vitro assays at high concentrations. Although phthalates induced an increase in MCF-7 cell proliferation by an estrogenic effect, they could not induce a uterus weight increase in vivo. From these, we may suggest that these phthalate analogues are easily metabolized to inactive forms in vivo. Further investigation in other in vitro and in vivo experimental systems might be required.
The objective of this study was to examine maturation, fertilization and developmental rate of the in vitro-grown mouse oocytes, and to compare these results with those of oocytes grown and matured in vivo. The preantral follicles isolated from 12-day-old mice were cultured on Transwell-COL membrane inserts. After in vitro growth and maturation, 72.5 % of oocytes grown in vitro produced polar body which can be comparable to in vivo growth (70.5 %). However, the mean oocyte diameter of the in vitro group (69.6$\pm$2.1$\mu$m) was smaller than that of the in vivo group (73.3$\pm$3.0$\mu$m). The fertilization rate was significantly lower (p<0.05) in the in vitro group (76.5%) than in the in vivo group (90.2%), however, there was no difference in the percentage of monospermic and polyspermic oocytes between two groups. The capacities of in vitro grown ova to cleave and develop to blastocyst were (57.8 and 14.4%, respectively) significantly lower (p<0.001) than those of the in vivo counterpart (84.4 and 56.6%, respectively). Moreover, the mean number of cells per blastocyst was significantly lower (p<0.05) in the in vitro group (39.0$\pm$10.8) than in the in vivo group (60.5$\pm$12.5). Live young were produced from transferred 2-cell embryos derived from in vitro-grown and matured oocytes. In conclusion, the results show that in vitro-grown oocytes did not achieve the developmental capacity of in vitro-grown oocytes.
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.40
no.1
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pp.1-10
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2014
At present, there are few research papers on skin penetration of cosmeceutical ingredients. What is worse is that in vivo studies are hard to find. In this study, we measured skin epidermal penetration of cosmeceutical ingredients using in vivo Raman spectroscopy and compared with the results obtained from experiments using in vitro franz cell. Results showed that ascorbyl-2-glucoside, retinol, retinyl palmitate, and kojic acid were good for penetration ratio in measurement in vitro and retinol, vitamin C, and arbutin were good in measurement in vivo. Among them, retinol was best in skin penetration in vivo experiment using Raman spectroscopy and ascorbyl-2-glucoside was best in skin penetration in vitro experiment using Franz cell system. It is estimated that the differences were originated from the experimental procedures of two different methods; in vivo Raman experiment can be sensitive to the effect of epidermis and dermis as characteristics of matter by estimating the stratum corneum and in vitro measurement is evaluation of material to penetrate skin of hairless mouse. However, most penetration barrier is the stratum corneum, thus it is important to examine movement of material in the stratum corneum. We expect that these results provided useful information for many cosmetic related research.
Plant tissue culture techniques offer quick methods of regeneration of plants of medicinal importance but the survival chances of such plants are always questionable when shifted to the in vivo conditions. The present study enumerates the micromorphological developments in the leaves of in vitro regenerated and field transferred plantlets of Oldenlandia umbellata. The leaves developed in vitro after $4^{th}$ subcultures of multiplication phase and after 6 weeks of field transferred plants were used. Statistically significant differences in the number of stomata, veins, raphides, crystals and trichome density per square mm were observed. The improvements in stomatal apparatus and density (decreased from 41.85 to 32.20), developments in leaf architectural parameters and emergence of defense mechanism through increased numbers of raphides (8 to 15), crystals and trichomes (13.5 to 18.2) proved acclimation of tissue culture raised plantlets from in vitro to the in vivo environments lead to 100 % success in field establishment of the plantlets. The in vitro induced foliar abnormalities (changes in stomata, venation pattern, vein density, trichomes, crystals etc.) were repaired while hardening of plantlets in the greenhouse and finally in the field. The observed micromorphological response of leaves under altered environmental conditions could help in determination of proper stage of field transfer and prediction of survival percentage of in vitro regenerated O. umbellata plantlets.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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