This research was conducted to investigate the interrelationship among methods of injection of PMSG-hCG to the number of ovulated eggs, percentage of matured oocytes and in vitro fertilization using out-bred ICR mice. The results obtained are as follows, 1) The optimurn dose was 5 IU for both PMSG and hCG, while the number of ovulated eggs was 42$\pm$8, percentage of M II was 73% and in vitro fertilization rate was 81 %. 2) The optimum injection interval of PMSG-hCG was 48 hours, while the number of ovulated eggs was 48 $\pm$ 8, percentage of M II was 80% and in vitro fertilization rate was 81%. 3) The optimum time for collecting eggs was between 16 and 18 hours after hCG injection, while the numbers of ovulated eggs were 44$\pm$8, 42$\pm$7 and 43$\pm$7 in 14,16 and 18 hours after hCG injection respectively, and percentages of M II were 79 and 81 %, and in vitro fertilization rates were 81 and 80% in 16 and 18 hours after hCG injection, respectively. 4) The repeat of superovulation decreased with the number of ovulated eggs, percentage of M II and in vitro fertilization rate, than in control. But it was recovered by increasing the repeat interval.
In the present study, effects of concentration of cryoprotectant solutions on the nuclear maturation of vitrified-thawed porcine oocytes were examined. Also, the developmental capacity of vitrified-thawed immature porcine oocytes following ICSI was investigated. Oocytes were cultured in NCSU-23 medium supplemented with 5% FBS at $38^{\circ}C$ in 5% $CO_2$ and air. The in vitro maturation rate of vitrified-thawed oocytes ($24.1{\pm}2.5%$) was lower than that of the control ($46.0{\pm}3.2%$, p<0.05). The in vitro maturation rate of vitrified-thawed oocytes treated with $1.0{\sim}5.0\;ug$ CB + NCSU- 23 medium were $22.2{\pm}3.0%$, $30.7{\pm}3.2$, $46.3{\pm}3.1%$, $38.5{\pm}3.2%$, respectively. The in vitro maturation rate ($46.3{\pm}3.4%$) of the vitrified-thawed oocytes treated with $3.0\;{\mu}g$ CB for 30 min was the highest of all vitrification groups. When the in vitro developmental rates of the vitrified-thawed (with EDS and EDT) oocytes following ICSI were $18.5{\pm}2.5%$, $16.4{\pm}2.1%$, respectively. This results were lower than the control group ($24.0{\pm}2.5%$).
Background: This study was investigated the effects of culture media conditions on production of eggs fertilized in vitro of embryos from ovaries of high grade Korean native cow, Hanwoo. Methods: The IVMD 101 and IVF 100 were used for in vitro maturation of selected Hanwoo oocytes and In vitro embryo culture after in vitro fertilization, respectively. The IVMD 101 and IVD 101 were used for in vitro culture and completely free of serum. Results: The cleavage rates of 2-cell embryos in reference to Hanwoo oocytes were 86.7, 92.9, and 90.1 % in the control group, IVDM101 medium and IVD101 medium, respectively which indicates that the IVDM101 medium and IVD101 medium may result favorable outcomes. The in vitro development rates of blastocysts were 12.4, 38.4 and 32.4 % in the control group, serum free IVMD101 medium and IVD101 medium, respectively. For hatched blastocysts, it was 5.3, 33.9, and 28.6 % in the control group, serum free IVMD101 medium and IVD101 medium, respectively. Hence, more favorable results were expected for the hatched blastocysts in which the IVMD101 medium and IVD101 medium were used than the control group. Average cell numbers of blastocysts were 128.3, 165.7, and 163.6 in the groups of TCM-199 + 10 % FBS medium, IVMD 101 medium, and IVD 101 medium, respectively which clearly show that the IVMD 101 and IVD 101 medium consequence significantly higher cell numbers compared to the control group (i.e., TCM-199 +10 % FBS medium). Pregnancy rate after embryo transfer was 39.6 % when the serum free medium was used which is higher than that of the medium supplemented with serum (32.8 %). In addition, stillbirth rates were 4.9 % in the group of serum free medium whereas it was 13.6 % in the serum supplemented medium (13.6 %). Conclusions: Taken altogether, serum free media, the IVMD 101 and IVD 101 represented more favorable results in the embryo development rate of embryos, cell numbers of blastocyst, and pregnancy rate. Of note, the IVMD 101 medium showed better outcomes hence, it might be a better option for future applications for in vitro culture of bovine embryos.
These studies were conducted to evaluate developmental competence of follicular oocyte collected from the ovaries of Hanwoo cows with the high offspring meat quality (1++ and 1+ grade). Cumulus oocyte complexes from individual cows were matured, fertilized and cultured using protocols of in-vitro maturation (IVM), invitro fertilization (IVF) and in-vitro culture (IVC). The rates of blastocyst development from Hanwoo cows with the offspring meat quality grades of 1++ and 1+ were 18.6 and 21.2%, respectively. The rates of blastocyst development were 26.3, 20.7, 20.7, 17.2 and 31.2% from Hanwoo cows with the meat quality grades of 1++, 1+, 1, 2 and 3, respectively. Fiftyseven transferable embryos were recovered from 11 Hanwoo donor cows (5.2/head) with the high offspring meat quality grades of 1++ and 1+ in vivo, and the pregnancy rate after embryo transfer was 61.1%. In conclusion, these results suggest that in vitro embryo production from the ovaries of cows with the high meat quality grades using individual culture system can be used an efficient method for livestock improvement. In addition, for the successful industrialization of embryo transfer, conception rate should be improved.
Recent 2 decades, including in vitro maturation (IVM), assisted reproductive technologies (ARTs) achieved noteworthy development. However the efficiency of ARTs with in vitro matured oocytes is still lower than that with in vivo oocytes. To overcome those limitations, many researchers attempted to adapt co-culture system during IVM and consequently maturation efficiency has been increased. The beneficial effects of applying co-culture system is contemplated base on communication and interaction between various somatic cells and oocytes, achievement of paracrine factors, and spatial effects of extracellular matrix (ECM) from somatic cell surface. The understanding of co-culture system can provide some information to narrow the gap between in vitro and in vivo. Here we will review current studies about issues for understanding cu-culture system with various somatic cells to improve in vitro maturation microenvironment and provide bird view and strategies for further studies.
Since the turn of the century, scientists have earnestly sought to develop a single laboratory assay or combination of laboratory assays which accurately predict the fertility of a semen sample. Most of these assays have focused on evaluating physical characteristics of sperm such as motility, viability, acrosomal integrity and morphology. In recent years new approches have been used to assess the functional aspects of a sperm that are needed to reach the oocyte, fertilize it and contribute to successful embryo development. Among these techniques are the ability of sperm to undergo a heparin induced acrosome reaction and in vitro fertilization, and the affinity of sperm to bind heparin binding protein. Intensification of research efforts in the area of control of sperm fertilizing ability should be a high priority, in view of undoubted benifits both to our basic understanding of sperm fertilizing ability and to our ability to modify it for Al industry.
The post-thaw survival of mouse embryos of the various developmental stages was determined after cryopreservation by vitrification in a solution containing ethylene glycol, Ficoll and sucrose (EFS). All the embryos were equilibrated for 2 minutes just prior to freezing. The number of blastomeres during in vitro development was counted by nuclei higher rates of post-thaw survival were obtained from the embryos of 2-cell(92.2%), 8-cell(77.2%) or morula stage(90.0%) than those of blastocyst stage(62.7%). The number of blastomeres per embryo following in vitro culture for 24 hours was significantly(P<0.05) smaller as 66.0f22.3 in vitrified and thawed morulae than fresh morulae(91.7$\pm$12.2).
The aims of this study are to establish a stable isolation method of blastomeres from bovine early embryos and examine their developmental potential in vitro Early embryos were produced by maturation and fertilizaion in vitro of bovine follicular oocytes. Blastomeres were isolated from 2~8-cell embryos in $Ca^2$+-, $Mg^2$+-free PBS+EDTA after removing the zonae pellucidae Isolated blastomeres were cultured in CZB containing BOEC for upto 240 hpi. Cleavage rates of them were 18.5%(10 /54) in 1 /2 blastomeres, 33.3%(16/48) in 1/4 blastomeres and 34.2%(14 /41) in 1/8 blastomeres, respectively. The rates of blastocystic vesicle formed were 8.7%(4 /46) in 1/2 blastomeres, 26.6% (17/64) in 1/4 blastomeres and 10.3%(8 /78) in 1/8 blastomeres, respectively. Blastomeres developed into various types of blastocystic vesicles and trophoblastic vesicles as evidenced by the Hoechst 33258 staining and morphology. This results suggest that the isolation method used and subsequent culture of isolated blastomeres from bovine early embryos should be useful to obtain extra embryonic cells for various analyses such as PCR and putative ES cell culture.
Over the past decades, in vitro culture media have been developed to successfully support IVF embryo growth in a variety of species. Advanced reproductive technologies, such as somatic cell nuclear transfer (SCNT), challenge us with a new type of embryo, with special nutritional requirements and altered physiology under in vitro conditions. Numerous studies have successfully reconstructed cloned embryos of domestic animals for biomedical research and livestock production. However, studies evaluating suitable culture conditions for SCNT embryos in wildlife species are scarce (for both intra- and interspecies SCNT). Most of the existing studies derive from previous IVF work done in conventional domestic species. Extrapolation to non-domestic species presents significant challenges since we lack information on reproductive processes and embryo development in most wildlife species. Given the challenges in adapting culture media and conditions from IVF to SCNT embryos, developmental competence of SCNT embryos remains low. This review summarizes research efforts to tailor culture media to SCNT embryos and explore the different outcomes in diverse species. It will also consider how these culture media protocols have been extrapolated to wildlife species, most particularly using SCNT as a cutting-edge technical resource to assist in the preservation of endangered species.
Cho, Jung Hyun;Won, Hyung Jae;Kim, Mi Kyoung;Park, Ju Hee;Hwang, Ju Youn
한국발생생물학회지:발생과생식
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제22권1호
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pp.105-109
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2018
A 40-year-old G1 P0 L0 A1 woman was referred to our clinic with 6-year history of infertility. Before visiting the clinic, she had 3 cycles of In-Vitro Fertilization (IVF) procedures (2 cycles of Controlled Ovarian Stimulation-IVF and 1 cycle of frozen-thawed Embryo Transfer (ET)) at other clinic. She had medical history of abortion at early gestation following FET (frozen-thawed-ET). The patient had complete type of septate uterus, double cervix and longitudinal vaginal septum. Vaginal septotomy was done first and 1 month later, hysteroscopic septoplasty was followed using ballooning filled with dye. After septoplasty, we inserted ballooning and left for several days to compress septal endometrium on the septectomy area. All procedures were done in the ambulatory operating room without laparoscopy or admission. 3 months later, she had in vitro fertilization-embryo transfer (IVF-ET) and FET procedures in our clinic. She had successful pregnancy and now is at 22 weeks of gestation. New ambulatory septoplasty using dye-filled ballooning is easy, safe and minimally invasive surgery for treatment of complete septate uterus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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