Although various raw plant materials have been demonstrated to exert anti-obesity effects to a greater or lesser extent in both humans and animals when they are used to supplement the diet, it has not been shown extensively that they influence adipocyte cell differentiation involving lipid metabolic gene expressions. Using a well-established 3T3-L1 preadipocyte differentiation system, we decided to look into molecular and cellular event occurring during adipocyte differentiation when raw plant materials aye included in the process, in an effort to demonstrate the potential use of a screening system to define the functions of traditionally well-known materials. To these ends, the effects of ethanol (EtOH) or EtOH/distilled water (DW) extracts of Wax Gourd were examined using cytochemical and molecular analyses to determine whether components of the extracts modulate adipocyte differentiation of 3T3-Ll preadipocytes in vitro. The cytochemical results demonstrated that EtOH or EtOH/DW extracts did not affect lipid accumulation and cell proliferation, although the degree of lipid accumulation was influenced slightly depending on the extract. EtOH extract was highly effective in apoptotic induction during differentiation of 3T3-Ll preadipocytes (p<0.05). Reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis of lipoprotein lipase (LPL), Uncoupling protein (Ucp) 2, 3 and 4 also showed that while LPL expression was not influenced, Ucp2, 3 and 4 were up regulated in the EtOH extract-treated group and down regulated in the EtOH/DW extract-treated group. These changes in gene expressions suggest that the components in different fractions of Wax Gourd extracts may modulate lipid metabolism by either direct or indirect action. Taking these results together, it was concluded that molecular and cellular analyses of adipocyte differentiation involving lipid metabolic genes should facilitate understanding of cellular events occurring during adipocyte differentiation. Furthermore, the experimental scheme and analytical methods used in this study should provide a screening system for the functional study of raw plant materials in obesity research.
Objective : Adipose tissue is derived from the embryonic mesoderm and contains a heterogenous stromal cell population. Authors have tried to verify the characteristics of stem cell of adipose derived stromal cells (ADSCs) and to investigate immunohistochemical findings after transplantation of ADSC into rat brain to evaluate survival, migration and differentiation of transplanted stromal cells. Methods : First ADSCs were isolated from human adipose tissue and induced adipose, osseous and neuronal differentiation under appropriate culture condition in vitro and examined phenotypes profile of human ADSCs in undifferentiated states using flow cytometry and immunohistochemical study. Human ADSCs were transplanted into the healthy rat brain to investigate survival, migration and differentiation after 4 weeks. Results : From human adipose tissue, adipose stem cells were harvested and subcultured for several times. The cultured ADSCs were differentiated into adipocytes, osteoctye and neuron-like cell under conditioned media. Flow cytometric analysis of undifferentiated ADSCs revealed that ADSCs were positive for CD29, CD44 and negative for CD34, CD45, CD117 and HLA-DR. Transplanted human ADSCs were found mainly in cortex adjacent to injection site and migrated from injection site at a distance of at least 1 mm along the cortex and corpus callosum. A few transplanted cells have differentiated into neuron and astrocyte. Conclusion : ADSCs were differentiated into multilineage cell lines through transdifferentiation. ADSCs were survived and migrated in xenograft without immunosuppression. Based on this data, ADSCs may be potential source of stem cells for many human disease including neurologic disorder.
Regenerative therapy holds great promise in the development of cures of some untreatable diseases such as cardiovascular diseases, and pluripotent stem cells (PSCs) including induced PSCs (iPSCs) are the most important regenerative seed cells. Recently, differentiation of human PSCs into functional tissues and cells in vitro has been widely reported. However, although porcine reports are rare they are quite essential, as the pig is an important animal model for the in vitro generation of human organs. In this study, we reprogramed porcine embryonic fibroblasts into porcine iPSCs (piPSCs), and differentiated them into cluster of differentiation 31 (CD31)-positive endothelial cells (ECs) (piPSC-derived ECs, piPS-ECs) using an optimized single-layer culture method. During differentiation, we observed that a combination of GSK3β inhibitor (CHIR99021) and bone morphogenetic protein 4 (BMP4) promoted mesodermal differentiation, resulting in higher proportions of CD31-positive cells than those from separate CHIR99021 or BMP4 treatment. Importantly, the piPS-ECs showed comparable morphological and functional properties to immortalized porcine aortic ECs, which are capable of taking up low-density lipoprotein and forming network structures on Matrigel. Our study, which is the first trial on a species other than human and mouse, has provided an optimized single-layer culture method for obtaining ECs from porcine PSCs. Our approach can be beneficial when evaluating autologous EC transplantation in pig models.
An in vitro construct of three dimensional artificial skin equivalent has been engineered using human cervical epithelial cells and human foreskin fibroblasts with a matrix of bovine type I collagen. Two cell lines were established from cervical uteri cancer tissues which have the HPV(human papillomavirus)18 genome. These two cell lines came from the same origin but have slight differencies in growth rate and tumorigenicity. The organotypic raft culturing of epithelial cells were accomplished at air-liquid interface. The differentiation related characteristics were examined by immunohistochemistry using monoclonal antibodies against EGFreceptor, cytokeratin 5/6/18 as proliferation markers and against filaggrin, involucrin, and cytokeratin 10/13 as differentiation marker. We have obtained the stratification and the differentiation in the artificial skin equivalent, and differentiation-related proteins were expressed more in the C3-artificial skin, and proteins of proliferation were expressed more in the C3N-artificial skin, relatively. We found that reconstituted artificial skin have the same characteristics of differentiation proteins of original tissue or cells of human body.
Jang, Ji-Hyun;Lee, Hyeon-Woo;Cho, Kyu Min;Shin, Hee-Woong;Kang, Mo Kwan;Park, Sang Hyuk;Kim, Euiseong
Restorative Dentistry and Endodontics
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v.41
no.4
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pp.283-295
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2016
Objectives: In this study, we characterized human dental pulp cells (HDPCs) obtained by different culture methods to establish the most suitable methodology for dental tissue engineering and regenerative endodontic applications. Materials and Methods: HDPCs were isolated by the outgrowth method (HDPCs-OG), the enzymatic digestion method (collagenase/dispase/trypsin, HDPCs-ED), or the combination of both methods (HDPCs-Combined). The expression of mesenchymal stem cell markers (CD105, CD90, and CD73) was investigated. In vitro differentiation capacities of HDPCs into adipogenic, osteogenic, and chondrogenic lineages were compared. Differentiation markers were analyzed by quantitative reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and western blotting. Results: Our data indicated that whole HDPCs-ED, HPDCs-OG, and HDPCs-Combined could be differentiated into adipogenic, chrondrogenic, and osteogenic cell types. However, we found that the methods for isolating and culturing HDPCs influence the differentiation capacities of cells. HDPCs-OG and HDPCs-ED were preferably differentiated into adipogenic and osteogenic cells, respectively. Differentiation markers shown by RT-PCR and western blotting analysis were mostly upregulated in the treated groups compared with the control groups. Conclusions: Our findings confirmed that cell populations formed by two different culture methods and the combined culture method exhibited different properties. The results of this study could provide an insight into regenerative endodontic treatment using HDPCs.
Extracellular matrix (ECM) proteins play a crucial role in culturing muscle stem cells (MuSCs). However, there is a lack of extensive research on how each of these proteins influences proliferation and differentiation of MuSCs from livestock animals. Therefore, we investigated the effects of various ECM coatings-collagen, fibronectin, gelatin, and laminin-on the proliferation, differentiation, and maturation of porcine MuSCs. Porcine MuSCs, isolated from 14-day-old Berkshire piglets, were cultured on ECM-coated plates, undergoing three days of proliferation followed by three days of differentiation. MuSCs on laminin showed higher proliferation rate than others (p<0.05). There was no significant difference in the mRNA expression levels of PAX7, MYF5, and MYOD among MuSCs on laminin, collagen, and fibronectin (p>0.05). During the differentiation period, MuSCs cultured on laminin exhibited a significantly higher differentiation rate, resulting in thicker myotubes compared to those on other ECMs (p<0.05). Also, MuSCs on laminin showed higher expression of mRNA related with maturated muscle fiber such as MYH1 and MYH4 corresponding to muscle fiber type IIx and muscle fiber type IIb, respectively, compared with MuSCs on other ECM coatings (p<0.05). In summary, our comparison of ECMs revealed that laminin significantly enhances MuSC proliferation and differentiation, outperforming other ECMs. Specifically, muscle fibers cultured on laminin exhibited a more mature phenotype. These findings underscore laminin's potential to advance in vitro muscle research and cultured meat production, highlighting its role in supporting rapid cell proliferation, higher differentiation rates, and the development of mature muscle fibers.
Saururus chinensis is a commonly used folk herb for the treatment of edema and liver diseases in Korea. To study the biological activity of Saururus chinensis in bone metabolism, we evaluated the effect of its extracts on osteoclast differentiation in vitro using primary mouse bone marrow-derived macrophages. Methanol extract (ME) from dried roots of Saururus chinensis was partitioned into methylene chloride (MF), ethyl acetate (EF), n-butanol (BF) and water fractions (WF). Tartrate-resistance acid phosphatase (TRAP) activity assay and western blot analysis were performed to determine the effect on osteoclast differentiation and mitogen-activated protein (MAP) kinases activation. ME, MF and EF dramatically inhibited receptor activator of ${NF-kB}$ ligand (RANKL)-induced formation of multinucleated osteoclasts and activation of MAP kinases. This study firstly demonstrated that ME, MF and EF of Saururus chinensis have the potential to inhibit the osteoclast differentiation, which results from the inhibition of MAP kinases activations in part.
Human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hBMMSCs) must differentiate into osteogenic cells to allow for successful bone regeneration. In this study, we investigated the effects of different combinations of three soluble osteogenic differentiation-inducing factors [L-ascorbic acid (AC), ${\beta}$-glycerophosphate (${\beta}G$), and bone morphogenic protein-2 (BMP-2)] and the presence of a hydroxyapatite (HA) substrate on hBMMSC osteogenic differentiation in vitro. hBMMSCs were cultured in medium containing various combinations of the soluble factors on culture plates with or without HA coating. After 7 days of culture, alkaline phosphatase (ALP) activity, calcium deposition, and osteoprotegerin (OPG) and osteopontin (OPN) expression were measured. The effects of individual and combined factors were evaluated using a factorial analysis method. BMP-2 predominantly affected expression of early markers of osteogenic differentiation (ALP and OPG). HA had the highest positive effect on OPN expression and calcium deposition. The interaction between AC, ${\beta}G$, and HA had the second highest positive effect on ALP activity.
Osteoclasts are bone-resorbing cells of monocyte/macrophage origin and are culprits of bone destruction associated with osteoporosis, rheumatoid arthritis, and cancer bone metastasis. Recent advances in osteoclast biology revealed central roles of various cytokines in regulating osteoclastogenesis both in vitro and in vivo. However, exact underlying mechanisms including signaling pathways downstream of receptor ligation are still under pursuit. In the present review, the role of Jak/STAT proteins and their regulators will be discussed in connection with osteoclastogenesis, since growing evidence indicates that a number of cytokines and growth factors utilizing Jak/STAT signaling pathways affect osteoclastogenesis. A better understanding on the role of Jak/STAT pathways in osteoclast differentiation will not only strengthen our knowledge on osteoclast biology but also provide invaluable insights into the development of anti-resorptive strategies for treating bone-lytic diseases.
In vitro propagation of Neoregeria carorinae 'Tricolor' was achieved by using immature flowers and lateral buds, and the plantlets from tissue culture were transplanted and cultivated in greenhouse. The picking times of explants to decrease disappearance of stripes, and in vivo the growth and flowering of regenerated plantlets as influenced by in vivo healed nun were investigated. The normal plantlet were obtained at a frequency of 67%, in the culture of immature flowers picked at 4 weeks after flower bud differentiation, while all leaf stripes disappeared in the culture of immature flowers picked 1 and 5 weeks after flower bud differentiation. In vivo growth of plantlet from immature flower buds was better than those from lateral buds, and the flowering of 27.8% showed in the greenhouse culture of plantlet from immature culture, but the plantlets from lateral buds did not flower at all. The plantlets rooted on the medium with 0.5 mg/L IBA were the most favorable in green house culture, and the kinds and concentrations of auxin in vitro did not have any influence on variation of plane cultured in greenhouse.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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