An immunochromatography (ICG) strip test using a nanocolloidal gold-antibody probe was developed and optimized for the rapid detection of aflatoxin B1 (AFB1). A monoclonal antibody specific to AFB1 was produced from the cloned hybridoma cell (AF78), coupled with nanocolloidal gold, and distributed on the conjugate pad of the ICG strip test. The visual detection limit of the ICG strip test was 0.5 ng/ml, and this method showed a cross-reaction to aflatoxin B2, G1, and G2. In total, 172 grain and feed samples were collected and analyzed by both the ICG strip test and HPLC. The results of the ICG strip test showed a good agreement with those obtained by HPLC. These results indicated that the ICG strip test has a potential use as a rapid and cost-effective screening tool for the determination of AFB1 in real samples and could be applied to the preliminary screening of mycotoxin in food and agricultural products, generating results within 15 min without complicated steps.
For the quantitative detection of algal toxin, microcystin, a chemiluminescence immunochromatographic assay method was developed. The developed system consists of four parts, chemiluminescence assay strip (nitrocellulose membrane), horse radish peroxidase labeled microcystin monoclonal antibodies, chemiluminescence substrate (luminol and hydrogen peroxide), and luminometer. The performance of the chemiluminescence immunochromatographic assay system was compared with high performance liquid chromatography (HPLC) detection. The detection limit of chemiluminescence immunochromatographic assay system is several orders of magnitude lower than with HPLC. The chemiluminescence immunochromatography and HPLC results correlated very well with the correlation coefficient ($r^2$) of 0.979.
A new chemiluminescence immunochromatographic analysis system with high sensitivity and high reproducibility was developed for the determination of microcystins (MCs) in water. Horse radish peroxidase (HRP) labeled microcystin monoclonal antibody was used for the sensitive chemiluminescence detection. The chemiluminescence immunochromatographic analysis system was composed of microcystin LR (MCLR)-monoclonal antibody (mAb)-Horse Radish Peroxidase (HRP) conjugate, MCLR-BSA conjugate, luminol, hydrogen peroxide mixture solution, an immunochromatographic assay strip and luminometer. To detect the concentration of microcystins in water, we utilized one spot analysis of the strip instead of flow type analysis. We could detect the microcystins in water at a concentration as low as 9.45 pg/mL with the chemiluminescence (CL) detection.
An immunochromatography (ICG) strip test based on a monoclonal antibody for the rapid detection of L. monocytogenes in meat and processed-meat samples was developed in this study. A monoclonal antibody (MAb) specific to L. monocytogenes was produced from cloned hybridoma cells (FKLM-3B12-37) and used to develop an ICG strip test. The antibody showed a stronger binding to L. monocytogenes than other Listeria species, and a weak cross-reaction to S. aureus based on an ELISA. The detection limit of the ICG strip test was $10^5\;cell/ml$. In total, 116 meat and processed-meat samples were collected and analyzed using both the ICG strip test and a PCR. The ICG strip test and PCR indicated L. monocytogenes contamination in 34 and 27 meat samples, respectively. The 7 meat samples not identified as L. monocytogenes positive by the PCR were also tested using an API kit and found to be contaminated by Listeria species. In conclusion, the ICG strip test results agreed well with those obtained using the PCR and API kit. Thus, the developed ICG has potential use as a primary screening tool for L. monocytogenes in various foods and agricultural products, generating results within 20 min without complicated steps.
A fluorescent microsphere-based immunochromatographic strip test (FICT) was developed for the rapid, sensitive, and quantitative detection of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) antibodies at the pen-side. The assay was based on the formation of a sandwich immune-complex (anti-pig IgG-PRRSV antibodies-NSP7/N), which was validated by a comparison with IDEXX-ELISA using 3325 clinical specimens. The diagnostic specificity, sensitivity, and accuracy of FICT were 97.28, 93.41, and 94.95%, respectively. FICT showed a good correlation with the virus neutralization assay. Overall, a promising pen-side diagnostic tool was developed for the rapid and quantitative detection of PRRSV antibodies within 15 min.
Immunoassays have become indispensable tools and achieved great importance in scientific and medical research. However, typical immunoassays are time-consuming and use complex, multi-step procedures. In this study, we introduce a new immunoassay system for the quantification of several analytes at a time without any washing steps. It is comprised of a detector solution with fluorescence-labeled antibodies and a test strip with immobilized capture antibodies. Using a micro-array scanner, the antigen-antibody complex was quantitatively determined by measuring the intensities of fluorescence on the capture lines or dots of nitrocellulose membrane. This method demonstrated its rapid quantitative determination of analytes without many processing steps as well as specific identification of multiple analytes in biological specimens.
Kim, Hyung Su;Kim, Hee La;Park, Ki Hyung;Cho, Kyung Soon
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.51
no.10
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pp.1071-1076
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2008
Purpose : Respiratory syncytial virus (RSV) is the most frequent cause of lower respiratory infections in infants and young children. Early detection allows quarantining of infected inpatients to prevent nosocomial transmission and to choose a treatment. To achieve rapid reporting, to facilitate prompt antiviral therapy, and to avoid unnecessary use of antibiotics, an easy, rapid diagnostic method for RSV is needed. We evaluated a lateral flow immunochromatography (RSV Respi-Strip test) and EIA (Enzyme immuno assay) compared to RT-PCR. Methods : From April 2007 to March 2008, 112 consecutive respiratory specimens (nasopharyngeal aspirates, throat swabs, tracheal aspirates, sputum) from patients who were suffering from the clinical signs and symptoms of respiratory tract infection were enrolled in Busan. A total of 112 patients were tested with RSV Respi-Strip (Corio-BioConcept, Belgium), EIA, and RT-PCR at the same time. Results : Of the 112 specimens tested, the number of children who showed positive results at RT-PCR and Respi-Strip were 45 and 42, respectively. The Respi-Strip rapid antigen test had a sensitivity of 88% and a specificity of 94%. The positive and negative predictive values were 90% and 92%, respectively. The agreement was 83%. Conclusion : In our study, the rapid antigen test had as much sensitivity as any method for detection of RSV. The test has many advantages such as easy performance, simple interpretation, and rapid results. If the rapid antigen test is widely applied in the clinical setting, the may be useful for diagnostic and epidemiological studies of RSV infection.
Shim, Won-Bo;Dzantiev, Boris B.;Eremin, Sergei A.;Chung, Duck-Hwa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.1
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pp.83-92
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2009
Individual immunochromatographic assays (ICG) for ochratoxin A (OTA) and zearalenone (ZEA) were optimized and used in the development of a one-step simultaneous immunochromatographic assay (OS-ICG) for the rapid multianalysis of two mycotoxins in corn samples. The nitrocellulose membrane of the OS-ICG was treated with OTA-bovine serum albumin (BSA), ZEA-ovalbumin (OVA), and anti-mouse IgG in the OTA test, ZEA test, and control zones, respectively. Monoclonal antibody-gold conjugates (OTA3 MAb-gold and ZEA2C5 MAb-gold) were sprayed onto the conjugate pad. The visual detection limits were 2.5 and 5 ng/ml for OTA and ZEA, respectively, and the results were obtained within 15 min after starting the analysis. An efficient, simple, and rapid extraction method using 30% MeOH/PBS was established and validated by analyzing the corn samples spiked with OTA/ZEA mixtures (0/0, 5/10, 10/20, and $20/30\;{\mu}g/kg$). The cut-off values of the OS-ICG for the spiked corn were 5 and $10\;{\mu}g/kg$ for OTA and ZEA, respectively. Natural corn samples were analyzed by OS-ICG, direct competitive enzyme-linked immunosorbent assay (DC-ELISA), and HPLC. Results of the OS-ICG were in good agreement with those obtained by DC-ELISA and HPLC. The developed OS-ICG offers a rapid, easy-to-use, and portable analytical system and can be used as a convenient qualitative tool for the on-site simultaneous determination of OTA and ZEA in cereals, food, and agricultural products in one analytical cycle.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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