Chang, Mira;Lee, Jeong-Woong;Koo, Deog-Bon;Shin, Sang Tae;Han, Yong-Mahn
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.23
no.6
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pp.806-813
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2010
Animal bioreactors have been regarded as alternative tools for the production of limited human therapeutic proteins. The mammary glands of cattle are optimal tissues to produce therapeutic proteins that cannot be produced in large amounts in traditional systems based on microorganisms and eukaryotic cells. In this study, two knock-in vectors, pBCTPOKI-6 and pBCTPOKI-10, which target the hTPO gene on the bovine beta-casein locus, were designed to develop cloned transgenic cattle. The pBCTPOKI-6 and pBCTPOKI-10 vectors expressed hTPO protein in culture medium at a concentration of 774 pg/ml and 1,867 pg/ml, respectively. Successfully, two targeted cell clones were obtained from the bovine fibroblasts transfected with the pBCTPOKI-6 vector. Cloned embryos reconstructed with the targeted nuclei showed a lower in vitro developmental competence than those with the wild-type nuclei. After transfer of the cloned embryos into recipients, 7 pregnancies were detected at 40 to 60 days of gestation, but failed to develop to term. The results are the first trial for targeting of a human gene on the bovine milk protein gene locus, providing the potential for a large-scale production of therapeutic proteins in the animal bioreactor system.
Several gene delivery therapies are being developed for treatment of serum protein deficiency. EPO is one of the most promising therapeutic agent for this treatment which is currently being investigated in depth. This study has the ultimate purpose of improving the gene delivery system for an increase of red blood cell production. A plasmid DNA was constructed smaller than other plasmids for an increase in penetration into animal cells, and two genes were cloned into each vector as a co-delivery system to express erythropoietin, and interluekin-3 or thrombopoietin, which can act on erythroid cell, thus activating hematopoiesis synergically. This co-delivery system has an advantage of decreasing the labour required for industrial production of DNA vaccine. A new plasmid vector, pVAC, in size 2.9 kb, was constructed with the essential parts from PUC 19 and pSectagB, which is much smaller than other plasmid vector and is the size of 2.9 kb. Co-delivery system was constituted by cloning human erythropoietin with each of human interluekin-3 gene or human thrombopoietin gene into both pVAC and pSectagB. As a result, the transfection efficiency of pVAC was higer than that of pSectagB in vitro, and hematocrit level of the mice injected with pVAC is higher than that of other mice. And co-delivery system, made of several plasmid DNAs, was expressed in vitro.
Wee G.;B. H Sohn;Park, J. S.;D. B. Koo;Lee, K. K.;Y. M. Han
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.27
no.1
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pp.25-34
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2003
Human thrombopoietin (hTPO) is a cytokine that plays a central role in megakaryopoiesis. To direct hTPO expression in the mammary gland, an expression vector was constructed by combining the promoter of bovine beta-casein gene, cDNA of hTPO and neomycin resistance gene (pBT-L neo). Fibroblast cells derived from cow's ear skin tissue were transfected with the expression vector (pBT-L neo) using Lipofectamine. Transfected cells resistant to G418 trea?nt were cultured to form the colonies for more than 2 weeks. The transformed colonies identified by PCR were further expanded prior to nuclear transfer. Reconstructed oocytes with transformed cells were electrofused, activated using calcium ionophore and 6-DMAP, and cultured in vitro for 7 days. Of 35 cell colonies analyzed by PCR, 29 colonies (82.9%) were positive for the hTPO gene. Cleavage and developmental rates to the blastocyst stage of reconstructed embryos with the transformed cells were 65.1% and 23.8%, respectively Of 29 blastocysts that developed from reconstructed embryos with the transformed cells, 27 embryos (93.1%) were transgenic. These results indicate that transgenic bovine embryos can be efficiently produced by somatic cell nuclear transfer using transformed cells.
In this study, we constructed and tested retrovirus vectors designed to express the human thrombopoietin gene under the control of the tetracycline-inducible promoters. To increase the hTPO gene expression at him-on state, WPRE sequence was also introduced into retrovirus vector at downstream region of either the hTPO gene or the sequence encoding reverse tetracycline-controlled transactivator (rtTA). Primary culture cells (PFF, porcine fetal fibroblast; CEF, chicken embryonic fibroblast) infected with the recombinant retrovirus were cultured in the medium supplemented with or without doxycycline for 48hr, and induction efficiency was measured by comparing the hTPO gene expression level using RT-PCR, western blot and ELISA. Higher hPTO expression and tighter expression control were observed from the vector in which the WPRE sequence was placed at downstream of the hTPO (in CEF) or rtTA(in PFF) gene. This resulting tetracycline inducible vector system may be helpful in solving serious physiological disturbance problems which have been a major obstacle in successful production of transgenic animals.
When 3 recombinant Chinese hamster ovary (rCHO) cell lines, CHO/dhfr-B-22-4, $CS13-1.00^{\ast}$ and $CSl3-0.02^{\ast}$, were cultivated in hyperosmolar media resulting from NaCl addition, their specific foreign protein productivity increased with medium osmolality. Glycine betaine was found to have a strong osmoprotective effect on all 3 rCHO cell lines. Inclusion of 15 mM glycine betaine in hyperosmolar medim enabled rCHO cell lines to grow at 557-573 mOsm/kg where they could not grow in the absence of glycine betaine. However, effect of glycine betaine inclusion in hyperomolar medium on foreign protein production differed among rCHO cell lines. CHO/dhfr-B22-4 cells retained enhanced specific human thrombopoietin (hTPO) productivity in the presence of glycine betaine, and thereby, the maximum hTPO titer obtained at 573 mOsm/kg was increased by 72% over that obtained in the control culture with physiological osmolality (292 mOsm/kg). On the other hand, enhanced specific antibody productivity of $CSl3-1.00^{\ast}$ and $CSl3-0.02^{\ast}$ at elevated osmolality decreased significantly in the presence of glycine betaine at a cost of the recovery of cell growth. As a result, the maximum antibody titer at 557 mOsm/kg was similar to that obtained in the control culture with physiological osmolality. Taken together, efficacy of the simultanous use of hyperosmotic pressure and glycine betaine as a means to improve foreign protein production was variable among different rCHO cell lines.
Kim, Myoung Ok;Kim, Sung Hyun;Shin, Mi Jung;Lee, Dong Beom;Kim, Tae Won;Kim, Kil Soo;Ha, Ji Hong;Lee, Sanggyu;Park, Yong Bok;Kim, Sun Jung;Ryoo, Zae Young
Molecules and Cells
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v.23
no.1
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pp.17-22
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2007
We have expressed human erythropoietin (EPO) in transgenic mice using a recombinant EPO cDNA combined with a partial TPO construct. The gene was microinjected using standard techniques and five mice were detected as transgenic by PCR and further used as founders. The life span of the transgenic founders was much shorter than that of their normal littermates. Most of the tissues of the transgenic founders contained human EPO transcripts as judged by RT-PCR. Especially high expression levels were seen in the liver and lung. EPO protein levels in serum were examined by ELISA and ranged from 266-414 mIU/ml. The number of red blood cell, white blood cell and hemoglobin in the hEPO transgenic mice was higher than in normal mice. These results indicate that overexpression of hEPO is deleterious and can provoke lung failure and erythrocytosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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